Sericin은 실크를 싸고 있는 고분자 수용성 당단백질로서 세포배양에 사용되며 세포분화를 촉진한다. 본 연구의 목적은 갑상선세포(FRTL-5)에서 thyroglobulin (Tg)의 분비에 sericin이 영향을 주는지를 알려고 한다. Sericin에 의해서 Tg의 분비가 촉진되었지만 Tg-mRNA의 발현은 촉진되지 않았다. 이런 상태에서 소포체 샤페론(Bip & calreticulin)과 소포체 막 단백질(IRE1, PERK & ATF6)의 발현이 증가한 것이 확인되었다. 한편 IRE1의 하부 신호전달자인 XBP1의 mRNA splicing 이 약하게 확인되었지만 PERK의 하부 신호전달자인 $eIF2{\alpha}$의 인산화는 일어나지 않았다. 그리고 sericin은 MTT assay 결과 cell viability을 촉진시키는 것도 확인되었다. 위의 결과는 sericin은 재조합 단백질생산에 유용하게 이용될 수 있는 새로운 생체물질로 증명되었다.
Choi, Dong Wook;Lim, Man Sup;Lee, Jae Won;Chun, Wanjoo;Lee, Sang Hyuk;Nam, Yang Hoon;Park, Jin Myung;Choi, Dae Hee;Kang, Chang Don;Lee, Sung Joon;Park, Sung Chul
Biomolecules & Therapeutics
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제23권2호
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pp.128-133
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2015
Although coffee is known to have antioxidant, anti-inflammatory, and antitumor properties, there have been few reports about the effect and mechanism of coffee compounds in colorectal cancer. Heat shock proteins (HSPs) are molecular chaperones that prevent cell death. Their expression is significantly elevated in many tumors and is accompanied by increased cell proliferation, metastasis and poor response to chemotherapy. In this study, we investigated the cytotoxicity of four bioactive compounds in coffee, namely, caffeine, caffeic acid, chlorogenic acid, and kahweol, in HT-29 human colon adenocarcinoma cells. Only kahweol showed significant cytotoxicity. Specifically, kahweol increased the expression of caspase-3, a pro-apoptotic factor, and decreased the expression of anti-apoptotic factors, such as Bcl-2 and phosphorylated Akt. In addition, kahweol significantly attenuated the expression of HSP70. Inhibition of HSP70 activity with triptolide increased kahweol-induced cytotoxicity. In contrast, overexpression of HSP70 significantly reduced kahweol-induced cell death. Taken together, these results demonstrate that kahweol inhibits colorectal tumor cell growth by promoting apoptosis and suppressing HSP70 expression.
The limited information on differential gene expression in the different serotypes of Actinobacillus pleuropneumoniae has significantly hampered the research on the pathogenic mechanisms of this organism and the development of multivalent vaccines against A. pleuropneumoniae infection. To compare the gene expressions in the A. pleuropneumoniae strains CVCC259 (serotype 1) and CVCC261 (serotype 3), we screened the differentially expressed genes in the two strains by performing representational difference analysis (RDA). Northern blot analyses were used to confirm the results of RDA. We identified 22 differentially expressed genes in the CVCC259 strain and 20 differentially expressed genes in the CVCC261 strain, and these genes were classified into 11 groups: (1) genes encoding APX toxins; (2) genes encoding transferrin-binding protein; (3) genes involved in lipopolysaccharide (LPS) biosynthesis; (4) genes encoding autotransporter adhesin; (5) genes involved in metabolism; (6) genes involved in the ATP-binding cassette (ABC) transporter system; (7) genes encoding molecular chaperones; (8) genes involved in bacterial transcription and nucleic acid metabolism; (9) a gene encoding protease; (10) genes encoding lipoprotein/membrane protein; and (11) genes encoding various hypothetical proteins. This is the first report on the systematic application of RDA for the analysis of differential gene expression in A. pleuropneumoniae serotypes 1 and 3. The determination of these differentially expressed genes will serve as an indicator for future research on the pathogenic mechanisms of A. pleuropneumoniae and the development of a multivalent vaccine against A. pleuropneumoniae infection.
Small heat shock proteins (sHSPs) function as molecular chaperones that protect cells against environmental stresses. In the present study, the genes of hsp17.6 and hsp17.7, cytosolic class I sHSPs, were cloned from a tropical plant, Ageratina adenophorum. Their C-terminal domains were highly conserved with those of sHSPs from other plants, indicating the importance of the C-terminal domains for the structure and activity of sHSPs. The recombinant HSP17.6 and HSP17.7 were applied to determine their chaperone function. In vitro, HSP17.6 and HSP17.7 actively participated in the refolding of the model substrate citrate synthase (CS) and effectively prevented the thermal aggregation of CS at $45^{\circ}C$ and the irreversible inactivation of CS at $38^{\circ}C$ at stoichiometric levels. The prior presence of HSP17.7 was assumed to suppress the thermal aggregation of the model substrate CS. Therefore, this report confirms the chaperone activity of HSP17.6 and HSP17.7 and their potential as a protectant for active proteins.
Baeshen, Mohammed N.;Al-Hejin, Ahmed M.;Bora, Roop S.;Ahmed, Mohamed M. M.;Ramadan, Hassan A. I.;Saini, Kulvinder S.;Baeshen, Nabih A.;Redwan, Elrashdy M.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제25권7호
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pp.953-962
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2015
Escherichia coli is the most preferred microorganism to express heterologous proteins for therapeutic use, as around 30% of the approved therapeutic proteins are currently being produced using it as a host. Owing to its rapid growth, high yield of the product, costeffectiveness, and easy scale-up process, E. coli is an expression host of choice in the biotechnology industry for large-scale production of proteins, particularly non-glycosylated proteins, for therapeutic use. The availability of various E. coli expression vectors and strains, relatively easy protein folding mechanisms, and bioprocess technologies, makes it very attractive for industrial applications. However, the codon usage in E. coli and the absence of post-translational modifications, such as glycosylation, phosphorylation, and proteolytic processing, limit its use for the production of slightly complex recombinant biopharmaceuticals. Several new technological advancements in the E. coli expression system to meet the biotechnology industry requirements have been made, such as novel engineered strains, genetically modifying E. coli to possess capability to glycosylate heterologous proteins and express complex proteins, including full-length glycosylated antibodies. This review summarizes the recent advancements that may further expand the use of the E. coli expression system to produce more complex and also glycosylated proteins for therapeutic use in the future.
Heat shock proteins (HSPs) serve as molecular chaperones and play a role in cell protection from damage in response to stress stimuli. The aim of this article is to investigate whether HSP22 affects IL-8 expression in vascular smooth muscle cells (VSMCs), and which cellular factors are involved in the HSP-mediated IL-8 induction in that cell type in terms of mitogen activated protein kinase (MAPK) and transcription element. Exposure of aortic smooth muscle cells (AoSMCs) to HSP22 not only enhanced IL-8 release but also induced IL-8 transcript via promoter activation. HSP22 activated ERK and p38 MAPK in AoSMCs. HSP22-induced IL-8 release was inhibited by U0126, but not by SB202190. A mutation in the IL-8 promoter region at the binding site of NF-${\kappa}$ B, but not AP-1 or C/EBP, impaired promoter activation in response to HSP22. Delivery of I ${\kappa}$ B, but not dominant negative c-Jun, lowered HSP22-induced IL-8 release from AoSMCs. These results suggest that HS P22 induces IL-8 in VSMCs via ERK1/2, and that transcription factor NF-kB may be required for the HSP22-induced IL-8 up-regulation.
Background: Heat-shock protein70 (HSP70) are intracellular protein chaperones, with emerging evidence of their association with various diseases. We have previously reported significantly elevated plasma-HSP70 (pHSP70) in pancreatic cancer. Current methods of pHSP70 isolation are ELISA-based which lack specificity due to cross-reactivity by similarities in the amino-acid sequence in regions of the protein backbone resulting in overestimated HSP70 value. Materials and Methods: This study was undertaken to develop a methodology to capture all isoforms of pHSP70, while further defining their tyrosine and serine phosphorylation status. Results: The methodology included gel electrophoresis on centrifuged supernatant obtained from plasma incubated with HSP70 antibody-coupled beads. After blocking non-specific binding sites, blots were immunostained with monoclonal-antibody specific for human-HSP70, phosphoserine and phosphotyrosine. Conclusions: Our novel immunocapture approach has distinct advantages over the commercially available methods of pHSP70 quantification by allowing isolation of molecular aggregates of HSP70 with additional ability to precisely distinguish phosphorylation state of HSP70 molecules at serine and tyrosine residues.
Dobo, Cristine;Stavale, Joao Norberto;Lima, Flavio De Oliveira;Ribeiro, Daniel Araki;Arias, Vitor;Gomes, Thiago Simao;Oshima, Celina Tizuko Fujiyama
Asian Pacific Journal of Cancer Prevention
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제14권9호
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pp.5007-5010
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2013
Heat shock proteins are molecular chaperones that may be constitutively present in cells protecting them from various stresses, such as extreme temperature, anoxia or chemical agents. Cervical cancer is the second most prevalent malignancy of women. In this study, we analyzed the expression of Hsp27 by immunohistochemistry in cervical intraepithelial lesions of Brazilian women, along with samples from non neoplasic lesions (NN). Cervical intraepithelial neoplasia I (CIN I), II (CIN II) and III (CIN III)/in situ carcinoma and squamous cell carcinoma (SCC) were included. Immunostaining was observed in 30 (100%) samples of NN, 46 (92%) in CIN I, 50 (100%) in CIN II, 52 (98.11%) in CIN III/CIS, and 46 (98.11%) in SCC. In group NN Hsp27 immunostaining was heterogeneous, more intense in basal and parabasal layers of the epithelium and less or absent in the intermediate and superficial layer. The majority of the samples of CIS and SCC presented strong staining in all epithelial layers. Metaplasic cells, when present, were strongly stained. In this study, Hsp27 protein was found to be commonly expressed in cervical epithelial cells.
Copper-containing compounds are introduced into the environment through agricultural chemicals, mining, and metal industries and cause severe detrimental effects on ecosystems. Certain microorganisms exposed to these stressors exhibit molecular mechanisms to maintain intracellular copper homeostasis and avoid toxicity. We have previously reported that the soil bacterial isolate Achromobacter sp. AO22 is multi-heavy metal tolerant and exhibits a mer operon associated with a Tn21 type transposon. The present study reports that AO22 also hosts a unique cop locus encoding copper homeostasis determinants. The putative cop genes were amplified from the strain AO22 using degenerate primers based on reported cop and pco sequences, and a constructed 10,552 base pair contig (GenBank Accession No. GU929214). BLAST analyses of the sequence revealed a unique cop locus of 10 complete open reading frames, designated copSRABGOFCDK, with unusual separation of copCD from copAB. The promoter areas exhibit two putative cop boxes, and copRS appear to be transcribed divergently from other genes. The putative protein CopA may be a copper oxidase involved in export to the periplasm, CopB is likely extracytoplasmic, CopC may be periplasmic, CopD is cytoplasmic/inner membrane, CopF is a P-type ATPase, and CopG, CopO, and CopK are likely copper chaperones. CopA, B, C, and D exhibit several potential copper ligands and CopS and CopR exhibit features of two-component regulatory systems. Sequences flanking indicate the AO22 cop locus may be present within a genomic island. Achromobacter sp. strain AO22 is thus an ideal candidate for understanding copper homeostasis mechanisms and exploiting them for copper biosensor or biosorption systems.
This experiment was performed to evaluate the effect of TSH (thyroid-stimulating) on the ERp29 (endoplasmic reticulum resident 29 kDa protein) gene expression in the rat thyrocytes of FRTL-5 cells. Although ERp29 mRNA was constantly expressed, its expression began to increase remarkably from 10-9 M TSH. and its maximum expression was at 5×10-9 M TSH (about 3.5 fold). On the other hand, the effect of TSH on the abundance of ERp29 mRNA started within 6 h, and peaked at 8 h (about 2.5 fold). Actinomycin D (transcription inhibitor) strongly blocked this effect while cycloheximide (translation inhibitor) did not. The half-life of ERp29 mRNA was about 4.5 h in the presence or absence of TSH that was not affected by the stability of ERp29 mRNA. The effect of TSH on the ERp29 gene expression was specific, while other growth factors (transfferin, insulin, and hydrocortisone) did not alter its expression. Our data indicate for the first time that the expression of ERp29 is regulated transcriptionally by TSH in the thyrocytes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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