Park, Sol Lee;Cho, Jang Yeon;Kim, Su Hyun;Lee, Hong-Ju;Kim, Sang Hyun;Suh, Min Ju;Ham, Sion;Bhatia, Shashi Kant;Gurav, Ranjit;Park, ee-Hyoung;Park, Kyungmoon;Kim, Yun-Gon;Yang, Yung-Hun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.32
no.1
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pp.27-36
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2022
Ever since bioplastics were globally introduced to a wide range of industries, the disposal of used products made with bioplastics has become an issue inseparable from their application. Unlike petroleum-based plastics, bioplastics can be completely decomposed into water and carbon dioxide by microorganisms in a relatively short time, which is an advantage. However, there is little information on the specific degraders and accelerating factors for biodegradation. To elucidate a new strain for biodegrading poly-3-hydroxybutyrate (PHB), we screened out one PHB-degrading bacterium, Microbulbifer sp. SOL03, which is the first reported strain from the Microbulbifer genus to show PHB degradation activity, although Microbulbifer species are known to be complex carbohydrate degraders found in high-salt environments. In this study, we evaluated its biodegradability using solid- and liquid-based methods in addition to examining the changes in physical properties throughout the biodegradation process. Furthermore, we established the optimal conditions for biodegradation with respect to temperature, salt concentration, and additional carbon and nitrogen sources; accordingly, a temperature of 37℃ with the addition of 3% NaCl without additional carbon sources, was determined to be optimal. In summary, we found that Microbulbifer sp. SOL03 showed a PHB degradation yield of almost 97% after 10 days. To the best of our knowledge, this is the first study to investigate the potent bioplastic degradation activity of Microbulbifer sp., and we believe that it can contribute to the development of bioplastics from application to disposal.
Microbulbifer agarilyticus GP101 was isolated from the gut of a marine invertebrate Turbo cornutus and capable of degrading polysaccharide such as agar, alginate, and ${\kappa}$-carrageenan constituting algal cell wall. To obtain genomic basis of polysaccharide-degrading activity, we sequenced genome of strain GP101. The genome consists of 4,255,625 bp, 3,458 coding sequences with 55.4% G + C contents. BLASTP search revealed the presence of seven agarases, five alginate lyases, ten glucanases, four chitinases, two xylanases, one ${\kappa}$-carrageenase, and one laminarinase. The genomic data of strain GP101 will provide potential uses in the bioconversion process of diverse polysaccharide into bioenergy and biochemicals.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.18
no.3
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pp.527-533
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2017
As the clothing industry has advanced, dyeing technologies using various dyes have been developed. In recent years, interest in natural pigments has been increasing because of the negative impact of synthetic pigment on human health; therefore, development and application of microbial pigments is demanded. In this study, the dyeing effects on multifiber fabrics and biological activity were assessed using violet natural pigment from the marine bacterium, Microbulbifer sp. PPB12. The violet pigment produced by cultivation of Microbulbifer sp. PPB12 using Marine broth 2216 for 3 days was extracted using ethanol. Once dissolved in 20% ethanol, the violet pigment could be used to dye bleached cotton, diacetate, and especially polyamide. The optimal temperature, time, pH, and bath ratio under the dyeing conditions were $80^{\circ}C-90^{\circ}C$, more than 1 hour, pH 4-6, and 1:25, respectively. The mordant treatment was more suitable for color expression when $Na_2SO_4$ was used after 10 minutes of dyeing, but no significant difference was observed from untreated samples. The violet pigment also showed antibacterial activity against B. subtilis. The results of the present study indicate that the marine bacterial pigment could be an alternative for textile dyeing as a natural dye with antibacterial activity.
An agar-degrading enzyme-producing strain was isolated from seawater. The isolate was identified as Microbulbifer sp. SD-1 by 16S rRNA sequencing analysis. The optimal pH and temperature for growth were 6.0 and $30^{\circ}C$, respectively, and growth was possible at pH 9.0 and $60^{\circ}C$. The isolate required 5% NaCl for optimal growth and showed 45% growth activity without NaCl. Agar concentrations of 0-0.4% in the medium did not affect growth. Thin-layer chromatography analysis revealed that this strain could degrade agar into a monosaccharide and oligosaccharide, which may have industrial applications.
$Microbulbifer$ sp. AJ-3 was used to acquire the degrading products from $Capsosiphon$$fulvescens$ (DPCF), which were investigated to determine its physiological activities. A crude enzyme extract from $Microbulbifer$ sp. AJ-3 hydrolyzes polysaccharide substrates such as agar, agarose, alginic acid, fucoidan, laminaran, starch, and chitin. Among them, agarose, laminaran, and alginic acid showed higher activities, especially alginic acid. The antioxidant activity of DPCF was measured by using 2,2-diphenyl-1-picryl-hydrazyl (DPPH) and superoxide dismutase (SOD)-like activities and were about 32% and 93% at 2 mg/ml, respectively. In addition, the nitrite-scavenging activity of DPCF was about 82%, 53%, and 12% at pH levels of 1.2, 3.0, and 6.0, respectively. To determine the influence of DPCF on alcohol metabolism, the generating activity of reduced-nicotinamide adenine dinucleotide (NADH) by alcohol dehydrogenase (ADH) was measured. The facilitating rate of ADH activity by DPCF was 130% at 2 mg/ml. The tyrosinase inhibitory activity of DPCF was slightly increased in a dose-dependent manner and was about 28% at 2 mg/ml. These results indicated that the enzymatic products from DPCF have a strong antioxidant, nitrite scavenging, and alcohol metabolizing activity.
A cold-adapted carbohydrate esterase, CEST, belonging to the carbohydrate esterase family 6, was cloned from Microbulbifer thermotolerans DAU221. CEST was composed of 307 amino acids with the first 22 serving as a secretion signal peptide. The calculated molecular mass and isoelectric point of the mature enzyme were 31,244 Da and pH 5.89, respectively. The catalytic triad consisted of residues Ser37, Glu192, and His281 in the conserved regions: GQSNMXG, QGEX(D/N), and DXXH. The three-dimensional structure of CEST revealed that CEST belongs to the ${\alpha}/{\beta}$-class of protein consisted of a central six-stranded ${\beta}$-sheet flanked by eight ${\alpha}$-helices. The recombinant CEST was purified by His-tag affinity chromatography and the characterization showed its optimal temperature and pH were $15^{\circ}C$ and 8.0, respectively. Specifically, CEST maintained up to 70% of its enzyme activity when preincubated at $50^{\circ}C$ or $60^{\circ}C$ for 6 h, and 89% of its enzyme activity when preincubated at $70^{\circ}C$ for 1 h. The results suggest CEST belongs to group 3 of the cold-adapted enzymes. The enzyme activity was increased by $Na^+$ and $Mg^{2+}$ ions but was strongly inhibited by $Cu^+$ and $Hg^{2+}$ ions, at all ion concentrations. Using p-nitrophenyl acetate as a substrate, the enzyme had a $K_m$ of 0.278 mM and a $k_{cat}$ of $1.9s^{-1}$. Site-directed mutagenesis indicated that the catalytic triad (Ser37, Glu192, and His281) and Asp278 were essential for the enzyme activity.
Kim, Hye-Youn;Cho, Eun-Kyung;Kang, Su-Hee;Bae, Jeong-Mi;Choi, Young-Ju
Journal of Life Science
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v.22
no.6
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pp.751-759
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2012
Microbulbifer sp. was used to acquire the degrading products from Ecklonia cava (DPEC) and the products were investigated to determine the physiological activities. Firstly, 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) activity and superoxide dismutase (SOD) assay were about 84.1% and 89.6% at 2.5 mg/ml, respectively. In addition, nitrite scavenging ability was shown to be 56.3% at 0.5 mg/ml on pH 1.2. ${\alpha}$-Glucosidase inhibitory activity was increased in a dose-dependent manner and was about 58.7% at 2.5 mg/ml. To determine the influence of DPEC on alcohol metabolism, the generating activity of reduced-nicotinamide adenine dinucleotide (NADH) by alcohol dehydrogenase (ADH) and aldehyde dehydrogenase (ALDH) were measured. Facilitating rates of ADH and ALDH activities by DPEC were 123.3% and 215.2% at 2.5 mg/ml, respectively. For analyses of anti-wrinkling and whitening effects, its elastase and tyrosinase inhibitory activities were measured and were about 73.1% and 42.2% at 2.5 mg/ml, respectively. These results indicated that DPEC has valuable biological attributes owing to its antioxidant, nitrite scavenging, and alcohol metabolizing activities and ${\alpha}$-glucosidase, elastase, and tyrosinase inhibitory activities.
Won, Nam-Il;Lee, Ga-Eun;Ko, Keebeom;Oh, Dong-Chan;Na, Yang Ho;Park, Jin-Sook
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.45
no.2
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pp.124-132
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2017
Microbial secondary metabolites of marine organisms are regarded as major sources of structurally and biologically novel compounds with numerous potential uses. Sponge-microbe associations are among the most interesting sources for exploring bioactive compounds. In this study, the bacterial strain Microbulbifer sp. (127CP7-12) was isolated from the Asian marine sponge Hymeniacidon sinapium collected at an intertidal zone on the west coast of Korea. Cultured bacteria produced a violet pigment, and optimal culture conditions for violet pigment production were investigated. Maximum production of the violet pigment from the strain culture was observed under the conditions of $25^{\circ}C$, pH 6.0, and 3% NaCl. Acetone provided better extraction of the pigment from fermented broth compared with ethanol and methanol. The proposed structure of the major component in the extracted crude pigment was determined via high-performance liquid chromatography, nuclear magnetic resonance, mass spectrometry, and UV spectra analyses, which showed that the metabolite was the promising bioactive compound violacein. This study describes the examination of marine bioactive materials from microbe-engaged metabolites and the ecological implications of the sponge-microbe association in a changing ocean.
Agarase can be used in the field of basic science, as well as for production of agar-derived high-functional oligosaccharides and bioenergy production using algae. In 2012, we summarized the classification, origin, production, and applications of agar. In this paper, we briefly review the literature on the recombinant expression of agarases from 2012 to the present. Agarase genes originated from 19 genera, including Agarivorans, Flammeovirga, Pseudoalteromonas, Gayadomonas, Catenovulum, Microbulbifer, Cellulophaga, Saccharophagus, Simiduia, and Vibrio. Of the 47 recombinant agarases, there were only two α-agarases, while the rest were β-agarases. All α-agarases produced agarotetraose, while β-agarases yielded many neoagarooligosaccharides ranging from neoagarobiose to neoagarododecaose. The optimum temperature ranged between 25 and 60℃, and the optimum pH ranged from 3.0 to 8.5. There were 14 agarases with an optimum temperature of 50℃ or higher, where agar is in sol state after melting. Artificial mutations, including manipulation of carbohydrate-binding modules (CBM), increased thermostability and simultaneously raised the optimum temperature and activity. Many hosts and secretion signals or riboswitches have been used for recombinant expression. In addition to gene recombination based on the amino acid sequence after agarase purification, recombinant expression of the putative agarase genes after genome sequencing and metagenome-derived agarases have been studied. This study is expected to be actively used in the application fields of agarase and agarase itself.
Shin, Seung Yeol;Joung, Yochan;Han, Dukki;Jeong, Ji Hye;Jeon, Yi Hyun;Song, Jaeho
Journal of Species Research
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v.11
no.3
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pp.143-154
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2022
To obtain unrecorded bacterial species in Korea, various marine samples were collected from Jeollanam-do Province, Korea in 2021. After plating the samples on marine agar and marine R2A agar, and incubating aerobically and anaerobically, approximately 1200 bacterial strains were isolated and identified using 16S rRNA gene sequences. A total of 30 strains showed ≥98.7% 16S rRNA gene sequence similarity with validly published bacterial species but not reported in Korea, indicating that they are unrecorded bacterial species in Korea. The unrecorded bacterial strains belonged to 4 phyla, 7 classes, 13 orders, 19 families, and 22 genera, which were assigned to Azospirllium, Loktanella, and Pseudovibrio of the class Alphaproteobacteria; Grimontia, Halomonas, Marinobacter, Microbulbifer, Photobacterium, Pseudoalteromonas, Pseudidiomarina, Ferrimonas, Shewanella, Simiduia, Thalassotalea, and Vibrio of the class Gammaproteobacteria; Priestia and Enterococcus of the class Bacilli; Persicobacter of the class Cytophagia; Aureivirga of the class Flavobacteriia; Propionigenium and Psychrilyobacter of the class Fusobacteriia; and Tepidibacter of the class Clostridia. The details of the unreported species including Gram reaction, colony and cell morphology, biochemical characteristics, and phylogenetic position are also provided in the description of the strains.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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