Conventional molecular detection methods cannot distinguish between viable and dead Escherichia coli O157 cells. In this study, the loop-mediated isothermal amplification (LAMP) method combined with propidium monoazide (PMA) treatment was developed to selectively detect viable E. coli O157 cells. Four primers, including outer primers and inner primers, were specially designed for the recognition of six distinct sequences on the serogroups (O157) of the specific rfbE gene of the E. coli O157 genome. PMA selectively penetrated through the compromised cell membranes and intercalated into DNA. Amplification of DNA from dead cells was completely inhibited by $3.0{\mu}g/ml$ PMA, whereas the DNA derived from viable cells was amplified remarkably within 1 h by PMA-LAMP. Exhibiting high sensitivity and specificity, PMA-LAMP is a suitable method for evaluating the inactivation efficacy of slightly acidic electrolyzed water in broth. PMA-LAMP can selectively detect viable E. coli O157 cells. This study offers a novel molecular detection method to distinguish between viable and dead E. coli O157 cells.
본 논문은 양식 어류에게 많은 경제적 피해를 입히고 있는 다양한 어류질병세균 중에서 연쇄구균증에 대한 일반적인 특성과 종류, 진단 방법에 대하여 기존에 연구 보고된 논문을 기반으로 알아보고자 한다. 대표적인 어류연쇄구균증의 원인체로는 Lactococcus garvieae, Streptococcus iniae, S. parauberis가 있다. 연쇄구균증에 감염 시 나타나는 증상으로는 체색변화, 안구이상, 아가미 퇴색, 출혈, 복부팽만, 신장과 비장의 종대 등의 보이다 폐사가 일어난다. 또한 수온이 상승하는 6월부터 10월까지 주로 일어나며 집단적으로 발병하여 폐사가 일어난다. 현재 연쇄구균증을 진단하기 위한 기술로는 16S rRNA, 16S-23S rRNA intergenic spacer region (ISR), Random Amplified polymorphic DNA (RAPD), Ribotyion (RT), Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) 등이 있다. 이중에서 현장에서 적용 가능성이 높은 LAMP법이 각광을 받고 있지만 결과 확인 등의 문제로 인하여 현재는 어려움을 겪고 있는 실정이다. 이에 현장에서 진단부터 결과 확인까지 손쉽게 사용할 수 있도록 문제점을 보완하면 연쇄구균증에 대한 경제적 손실을 최소화 할 것으로 사료된다.
Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) developed by Notomi et al. (2000) has made it possible to amplify DNA with high specificity, efficiency and rapidity under isothermal conditions. The ultimate products of LAMP are stem-loop structures with several inverted repeats of the target sequence and cauliflower-like patterns with multiple loops shaped by annealing between every other inverted repeats of the amplified target in the similar strand. Because the amplification process in LAMP is achieved by using four to six distinct primers, it is expected to amplify the target region with high selectivity. However, evaluation of reaction accuracy or quantitative inspection make it necessary to append other procedures to scrutinize the amplified products. Hitherto, various techniques such as turbidity assessment in the reaction vessel, post-reaction agarose gel electrophoresis, use of intercalating fluorescent dyes, real-time turbidimetry, addition of cationic polymers to the reaction mixture, polyacrylamide gel-based microchambers, lateral flow dipsticks, fluorescence resonance energy transfer (FRET), enzyme-linked immunosorbent assays and nanoparticle-based colorimetric tests have been utilized for this purpose. In this paper, we reviewed the best-known techniques for evaluation of LAMP amplicons and their applications in molecular biology beside their advantages and deficiencies. Regarding the properties of each technique, the development of innovative prompt, cost-effective and precise molecular detection methods for application in the broad field of cancer research may be feasible.
살모넬라는 음식과 식수에서 흔히 나오는 중요한 병원체로 세계 곳곳에서 급성 위장염과 같은 감염증을 일으키며, 일반적으로 인간의 혈청형 임상종으로는 Salmonella enterica의 혈청형인 S. Typhimurium과 S. Enteritidis가 있다. 일반적인 검출 방법으로 살모넬라를 기본으로 하여 선택적인 배양으로 샘플을 수집하였고 살모넬라를 일으키는 군체의 특징을 생화학과 혈청학상인 테스트를 하였으나 이러한 방법들은 일반적으로 시간이 걸리고 높은 감도를 보이지 않았다. 최근, 등온증폭반응법과 real-time PCR법을 이용하여 높은 감도, 특이성으로 현재 병원성 박테리아에 빠르게 수행할 수 있게 되었다. 본 연구에서는 등온증폭반응과 real-time PCR법을 사용하여 S. Typhimurium과 S. Enteritidis의 검출하였다. 선택적인 타겟 유전자로, invA를 살모넬라종의 염기서열에 특이적으로 임의복제 하였다. 등온증폭반응과 real-time PCR은 살모넬라종으로부터 임의의 염기서열을 증폭하여 검출하였고, invA는 S. Typhimurium과 S. Enteritidis의 두 가지 종을 모두 검출하였다. 이러한 등온증폭반응과 real-time PCR법으로 S.Typhimurium과 S. Enteritidis의 검출 가능성을 보였으며, 살모넬라 종에 대한 특이성, 민감성을 갖춘 유용한 검출방법을 제시하였다.
Siwon Lee;Junhwa Kwon;Su Hyang Kim;Jin-Ho Kim;Jaewon Jung;Kyung-Jin Lee;Ji-Yeon Park;Taek-Kyun Choi;Jun-Gu Kang;Tae Uk Han
대한의생명과학회지
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제28권4호
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pp.334-339
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2022
African swine fever virus (ASFV) is a highly contagious and lethal pathogen that poses a threat to the global pork industry. The World Organization for Animal Health (WOAH) has placed strict surveillance measures for ASFV. The possibility of long-term survival of ASFV in raw meat or undercooked pork has been reported. Accordingly, the problem of secondary infection in food waste from households or waste disposal facilities has emerged, raising the need for ASFV monitoring of food waste. However, most of the previously reported ASFV gene detection methods are focused on clinical monitoring of pigs. There are very few cases in which their application in waste has been verified. Since ASFV diagnosis requires rapid monitoring and immediate action, loop-mediated isothermal amplification (LAMP) may be suitable, but this requires conformity assessment for LAMP to be used as a diagnostic technique. In this study, six LAMP methods were evaluated, and two methods (kit and manual) were recommended for use in diagnosing ASFV in food waste.
Zhang, Xuzhi;Ji, Xinming;Cui, Zhengguo;Yang, Bing;Huang, Jie
Bulletin of the Korean Chemical Society
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제33권1호
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pp.69-75
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2012
Five-channel electrochemical chips were fabricated based on the Micro-electromechanical System (MEMS) technology and were used as platforms to develop DNA arrays. Different kinds of thiolated DNA strands, whose sequences were related to white spot syndrome virus (WSSV) gene, were separately immobilized onto different working electrodes to fabricate a combinatorial biosensor system. As a result, different kinds of target DNA could be analyzed on one chip via a simultaneous recognition process using potassium ferricyanide as an indicator. To perform quantitative target DNA detection, a limit of 70 nM (S/N=3) was found in the presence of 600 nM coexisting noncomplementary ssDNA. The real samples of loop-mediated isothermal amplification (LAMP) products were detected by the proposed method with satisfactory result, suggesting that the multichannel chips had the potential for a high effective microdevice to recognize specific gene sequence for pointof-care applications.
Salmonella is a common zoonotic and foodborne pathogen that causes high morbidity and mortality in developing countries. In this study, we established and validated a polymerase spiral reaction (PSR) assay which targeted the conserved invasion gene (invA) of Salmonella by SYBR Green I indicator methods. Subsequently, assays for determination of the optimal conditions for optimal specificity and sensitivity of PSR were performed. We performed comprehensive evaluations using loop-mediated isothermal amplification (LAMP) and real-time PCR. A total number of 532 samples of daily food were analyzed by PSR. Twenty-seven bacterial strains were tested in the specificity assay, from which positive results were obtained only for 14-Salmonella strains. However, none of the 13 non-Salmonella strains was amplified. Similarly with LAMP and real-time PCR, the detection limit of the PSR assay was 50 CFU/ml. The PSR method was also successfully applied to evaluate the contamination with Salmonella in 532 samples of daily food, corroborating traditional culture method data. The novel PSR method is simple, sensitive, and rapid and provides new insights into the prevention and detection of foodborne diseases.
Mycobacterium (M.) bovis, a member of the M. tuberculosis complex (MTC), is a re-emerging, zoonotic agent of bovine tuberculosis whose prevalence probably depends on variations in direct exposure to cattle and ingestion of raw milk. Accurate species differentiation of M. bovis and M. tuberculosis is needed to distinguish between human and zoonotic tuberculosis. This study successfully developed a loop-mediated isothermal amplification (LAMP) assay for rapid detection and differentiation of M. bovis and M. tuberculosis, however showed negative reactions in eight non-tuberculous mycobacteria (NTM) samples and ten other bacterial species. Sensitivity of this assay for detection of genomic M. bovis DNA was 10 $fg/{\mu}l$. And this assay successfully detected M. bovis in bovine clinical specimens. In conclusion, the LAMP assay is a simple and powerful tool for rapid detection of M. bovis in both pure bacterial culture and in clinical samples.
Rapid, early, accurate detection and identification of the various pathogenic agents associated with the development of biological weapons is critical in preventing loss of life and limiting the impact of these organisms when used against civilian or military targets. The aim of this study was to produce a system for the simple, rapid, accurate and simultaneous detection and identification of Ricin, Botulinum toxin B and Staphylococcal enterotoxin B as a proof of principle for developing field appropriate reverse transcription loop-mediated isothermal amplification systems for the accurate identification of potential biological threats. These systems were designed to facilitate the identification of potential threats even in remote or resource-limited locations.
Meat source fraud and adulteration scandals have led to consumer demands for accurate meat identification methods. Nucleotide amplification assays have been proposed as an alternative method to protein-based assays for meat identification. In this study, we designed Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) assays targeting species-specific mitochondrial DNA to identify and discriminate eight meat species; cattle, pig, horse, goat, sheep, chicken, duck, and turkey. The LAMP primer sets were designed and the target genes were discriminated according to their unique annealing temperature generated by annealing curve analysis. Their unique annealing temperatures were found to be $85.56{\pm}0.07^{\circ}C$ for cattle, $84.96{\pm}0.08^{\circ}C$ for pig, and $85.99{\pm}0.05^{\circ}C$ for horse in the BSE-LAMP set (Bos taurus, Sus scrofa domesticus and Equus caballus); $84.91{\pm}0.11^{\circ}C$ for goat and $83.90{\pm}0.11^{\circ}C$ for sheep in the CO-LAMP set (Capra hircus and Ovis aries); and $86.31{\pm}0.23^{\circ}C$ for chicken, $88.66{\pm}0.12^{\circ}C$ for duck, and $84.49{\pm}0.08^{\circ}C$ for turkey in the GAM-LAMP set (Gallus gallus, Anas platyrhynchos and Meleagris gallopavo). No cross-reactivity was observed in each set. The limits of detection (LODs) of the LAMP assays in raw and cooked meat were determined from $10pg/{\mu}L$ to $100fg/{\mu}L$ levels, and LODs in raw and cooked meat admixtures were determined from 0.01% to 0.0001% levels. The assays were performed within 30 min and showed greater sensitivity than that of the PCR assays. These novel LAMP assays provide a simple, rapid, accurate, and sensitive technology for discrimination of eight meat species.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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