Isoquinoline compounds including berberine enhance L-DOPA-induced cytotoxicity in PC12 cells. In this study, the effects of berberine on L-DOPA therapy in unilateral 6-hydroxydopamine (6-OHDA)-induced rat models of parkinsonism were investigated. Rats were prepared for the models of Parkinson's disease by 6-OHDA-lesioning for 14 days and then treated with L-DOPA (10 mg/kg) with or without berberine (5 and 30 mg/kg, i.p.) for 21 days. Treatment with berberine (5 and 30 mg/kg, i.p.) showed a dopaminergic cell loss in substantia nigra of 6-OHDA-lesioned rats treated with L-DOPA: 30 mg/kg berberine was more intensive neurotoxic. The levels of dopamine were also decreased by berberine (5 and 30 mg/ kg) in striatum-substantia nigra of 6-OHDA-lesioned rats treated with L-DOPA. These results suggest that berberine aggravates cell death of dopaminergic neurons in L-DOPA-treated 6-OHDA-lesioned rat models of Parkinson's disease. Therefore, the long-term L-DOPA therapeutic patients with isoquinoline compounds including berberine may need to be checked for the adverse symptoms.
The effects of chelidonine, a benzophenanthridine isoquinoline alkaloid, on L-DOPA-induced cytotoxicity in PC12 cells were investigated. The treatment of PC12 cells with chelidonine $(1-4\;{\mu}M)$ decreased dopamine content in a dose-dependent manner (30.2% inhibition at $4\;{\mu}M)$. Chelidonine was not cytotoxic up to $4\;{\mu}M)$. However, chelidonine at concentrations higher than $5\;{\mu}M$ caused a cytotoxicity in PC12 cells. L-DOPA at concentrations higher than $50\;{\mu}M$ led to cell damage by oxidative stress in PC12 cells. Chelidonine at non-cytotoxic concentration ranges of $1-4{\mu}M$ aggravated L- DOPA $(20-50\;{\mu}M)$-induced cytotoxicity in PC12 cells. The L-DOPA-induced cytotocxicity was synergistically stimulated by chelidonine at concentrations grader than $5\;{\mu}M$. These data demonstrate that chelidonine exacerbates L-DOPA-induced cytotoxicity. Therefore, it is proposed that the long-term L-DOPA therapeutic patients with chelidonine may need to be checked for the adverse symptoms.
The enzymatic synthesis of 3, 4-dihydroxyphenyl-L-alanine (L-DOPA) was examined for the effects of the reaction additives such as sodium borate, alcohol, and organic solvents. The enzyme used was tyrosine phenol-lyase of Citrobacter freundii KCTC 2006 produced in Escherichia coli. The amounts of tyrosine phenol-lyase and pyridoxal-5-phosphate were optimized to 2.0 units/ml and 0.1 mM, respectively, for the synthetic reaction. Sodium borate, a substance that forms a complex with pyrocatechol, reduced the enzyme deactivation by pyrocatechol although it seriously inhibited the enzyme activity. Among the organic solvents tested, dimethylsulfoxide, dimethylformamide, and alcohol increased the productivity of the L-DOPA synthesis. In a reaction system with 5% methanol, L-DOPA concentration increased up to 210 mM after 24 hours, and 77.1% of which was separated as precipitates. The L-DOPA was purified to 99.96% by solubilizing and recrystallyzing the precipitates.
리간드 증감 유발 형광법을 이용하여 Tb(III)-L-dopa (L-3,4-dihydroxyphenyl alanine) 착이온의 방출세기를 측정함으로써 수용액 중의 L-dopa를 정량하는 방법에 대하여 연구하였다. 들뜸파장, pH, 보조 형광증가제의 선택, Tb(III) 이온의 농도, 보조 형광증가제로 사용된 Lu(III) 이온의 농도 및 방출파장의 방출세기에 대한 영향을 조사하였다. 보조 형광증가제로서 Lu(III) 이온을 첨가하였을때 Tb(III) 이온의 방출세기가 현저히 증가함을 관찰하였고, L-dopa의 검출한계를 낮출 수 있었다. 보조 형광증가제를 첨가하지 않았을 경우에 L-dopa 검정곡선의 직선감응범위는 들뜸파장, pH 및 Tb(Ⅲ) 이온의 농도가 각각 300 nm, 8.0 및 $1.0{\times}10^{-4}$ M였을때, $5.0{\times}10^{-7}$ M~$1.0{\times}10^{-4}$ M였다. 이 조건에서의 검출한계는 $4.0{\times}10^{-8}$ M였다. 보조 형광증가제를 첨가하였을 경우에는 들뜸파장, pH, Tb(III) 이온의 농도, 보조 형광증가제로 사용된 Lu(III) 이온의 농도 및 방출파장이 각각 300 nm, 8.5, $1.0{\times}10^{-5}$ M, $1.0{\times}10^{-5}$ M 및 545 nm였을 때, 직선감응범위가 1.0×$10^{-8}$ M~2.0{\times}10^{-4}$ M였고, 이 때의 검출한계는 $1.0{\times}10^{-9}$ M였다.
A thermostable tyrosine phenol-lyase gene of a thermophilic Symbiobacterium species was cloned and overexpressed in Escherichia coli in order to produce the biocatalyst for the synthesis of 3, 4-dihy-droxyphenyl-L-alanine (L-DOPA). The substrates used for the synthetic reaction were pyrocatechol, so-dium pyruvate, and ammonium chloride. The enzyme was stable up to $60^{\circ}C$, and the optimal temperature for the synthesis of L-DOPA was $37^{\circ}C$ . The optimal pH of the reaction was about 8.3. Enzyme activity was highly dependent on the amount of ammonium chloride and the optimal concentration was estimated to be 0.6 M. In the case of pyrocatechol, an inactivation of enzyme activity was observed at con-centrations higher than 0.1 M. Enzyme activity was increased by the presence of ethanol. Under op-timized conditions, L-DOPA production was carried out adding pyrocatechol and sodium pyruvate to the reaction solution intermittently to avoid substrate depletion during the reaction. The concentration of L-DOPA reached 29.8 g/l after 6 h, but the concentration didn t increase further because of the formation of byproducts by a non-enzymatic reaction between L-DOPA and pyruvate.
I have conducted two testings to find out which water is better for drinking water. First, I made 20 mM L-DOPA solutions by solving L-DOPA (3,4-Dihydroxyphenylalanine) in tap water, Waters' mineral water and reverse osmotic water. Then I measured activities after adding Tyrosinase (purifide enzyme, step 3), which was extracted from Salanum melongena(mad apple), in each L-DOPA solution. Second, I solved 0.1, 0.5 and 0.9% salt in each 20 mM L-DOPA distilled water to measure activity of each salt solution. The results of the testings are as follows: 1. 10 minutes after adding Salanum melongena(mad apple) tyrosinase in each L-DOPA solution, activity of Waters' mineral water was 0.867 tap water 0.777 and reverse osmotic water 0.742. 2. Activity of Waters' mineral water was higher than that of tap water by 10.4% and higher then reverse osmotic by 14.4%. 3. Activity of Waters' mineral water was much higher than that of 0.9% salt water by 41.8%. 4. The optimum pH of Salanum melongena (mad apple) tyrosinase is 9.0. Most enzymes working in the human metabolism are alkaline and body fluids' pH also alkaline. In conclusion, an alkaline water is believed better than an acidic water for drinking.
Ceruloplasmin (CP), the blue oxidase present in all vertebrates, is the major copper-containing protein of plasma. It has been proposed that oxidation of L-3,4-dihydroxyphenylalanine (DOPA) may contribute to the pathogenesis of neurodegenerative disorders. The effect of the oxidized products of DOPA on the modification of human CP was investigated. When CP was incubated with the oxidized L-DOPA, the protein was induced to be aggregated and ferroxidase activity was decreased in a time-dependent manner. Radical scavengers and catalase significantly inhibited the oxidized DOPA-mediated CP aggregation. Copper chelatrors, Diethylenetriaminepenta acetic acid (DTPA) and Diethyldithiocarbamic acid (DDC), also inhibited the oxidative modification of CP. The results suggested that DOPA oxidation led to the formation of free radical and induced the CP aggregation.
Levodopa or L-3,4-dihydroxyphenylalanine (L-DOPA) is the precursor of the neurotransmitter dopamine. L-DOPA is a famous treatment for Parkinson's disease symptoms. In this study, electroenzymatic synthesis of L-DOPA was performed in a three-electrode cell, comprising a Ag/AgCl reference electrode, a platinum wire auxiliary electrode, and a glassy carbon working electrode. L-DOPA had an oxidation peak at 376 mV and a reduction peak at -550 mV. The optimum conditions of pH, temperature, and amount of free tyrosinase enzyme were pH 7, $30^{\circ}C$, and 250 IU, respectively. The kinetic constant of the free tyrosinase enzyme was found for both cresolase and catacholase activity to be 0.25 and 0.4 mM, respectively. A cyclic voltammogram was used to investigate the electron transfer rate constant. The mean heterogeneous electron transfer rate ($k_e$) was $5.8{\times}10^{-4}$ cm/s. The results suggest that the electroenzymatic method could be an alternative way to produce L-DOPA without the use of a reducing agent such as ascorbic acid.
The effects of BHSH on L-DOPA-induced increase in dopamine content in PC12 cells were investigated. L-DOPA treatment at $20\;or\;50\;{\mu}M$ increased dopamine content after both 24 and 48 h of incubation in PC12 cells. However, the co-treatments of BHSH $(10-50\;{\mu}M)$ with L-DOPA $(20\;or\;50\;{\mu}M)$ significantly inhibited the increase of dopamine content induced by L-DOPA. BHSH treatment at $10-50\;{\mu}M$ significantly inhibited basal aromatic L-amino acid decarboxylase (AADC) activity in a concentration-dependent manner at 15 min, and then AADC activity was rapidly recovered to the control level at about 2 h. These results indicate that the inhibition of AADC activity by BHSH was, in part, contributed to the early-stage decrease of dopamine content induced by LDOPA in PC12 cells. Taken together, it is proposed that the short-term inhibition of dopamine biosynthesis by BHSH was mediated by the regulation of tyrosine hydroxylace (TH).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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