Ginalska, G.;Lobarzewski, J.;Cho, Nam-Seok;Choi, T.H.;Ohga, S.;Jaszek, M.;Leonowicz, A.
Journal of the Korean Wood Science and Technology
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v.29
no.3
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pp.112-122
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2001
Laccase enzymes from Cerrena unicolor and Trametes versicolor were immobilized on the activated glass beads (CPG), silica gel (SG) and soil (SL). The heterogeneous matrices were activated by ${\gamma}$-aminopropyltriethoxysilane (APTES) and glutaraldehyde (GA), and their surfaces were coated by keratin (KER) on activated or non-activated CPG, SG and SL. The laccase activities were tested in the aqueous solution for the native and immobilized preparations using different pH and temperature conditions. By keratin coating on supports, in the cases of CPG-KER and SL-KER, the immobilization yield was increased from about 80% to 90%. Moreover, much less protein was immobilized in keratin coated matrices than in inorganic ones alone (e.g. on CPG-KER 57.6%, whereas on CPG alone 80.6%). Laccase immobilization on keratin coated inorganic matrices was generally more effective than that of non-coated matrices. Concerned to pH dependency, the optima pH for immobilized laccases generally shifted towards to higher values, 5.5-5.8 and even 5.9 in the case of keratin for C. unicolor and from 5.3 to 5.7 for T. versicolor, respectively, and decreased less gradually both in acidic and alkaline regions. The immobilized laccase was more stable against thermal denaturation. This seems particularly true at $75^{\circ}C$ in the case of C. unicolor, where the activity of immobilized enzyme is > 50% higher than that of the free enzyme. For T. versicolor the respective values were $65^{\circ}C$, and 50%.
In this study, we investigated whether galactooligosaccharide (GOS) can be stably and steadily synthesized using immobilized ${\beta}$-galactosidase (${\beta}$-gal) inclusion body (IB)-containing E. coli cells during long-term repeated-batch operation. To improve the operational stability of this enzyme reactor system, immobilized E. coli cells were crosslinked with glutaraldehyde (GA) after immobilization of the E. coli. When we treated with 2% GA for E. coli crosslinking, GOS production continued to an elapsed time of 576 h, in which seven batch runs were operated consecutively. GOS production ranged from 51.6 to 78.5 g/l ($71.2{\pm}10.5$ g/l, n = 7) during those batch operations. In contrast, when we crosslinked E. coli with 4% GA, GOS production ranged from 31.5 to 64.0 g/l ($52.3{\pm}10.8$, n = 4), and only four consecutive batch runs were operated. Although we did not use an industrial ${\beta}$-gal for GOS production, in which a thermophile is used routinely, this represents the longest operation time for GOS production using E. coli ${\beta}$-gal. Improved stability and durability of the cell immobilization system were achieved using the crosslinking protocol. This strategy could be directly applied to other microbial enzyme reactor systems using cell immobilization to extend the operation time and/or improve the reactor system stability.
A continuous production of fructooligosaccharides from sucrose was investigated by fructosyltransferase immobilized on a high porous resin, Diaion HPA25. The optimum pH(5.5) and temperature(55$^{\circ}C$) of the enzyme for activity was unaltered by immobilization, and the immobilized enzyme became less sensitive to the pH change. The optimal operation conditions of the immobilized enzyme column for maximizing the productivity were as follows: 600g/L of sucrose feed concentration, flow rate of superficial space velocity 2.7h-1. When the enzyme column was run at 50$^{\circ}C$, about 8% loss of the initial activity of immobilized enzyme was observed after 30 days of continuous operation, during which high productivity of 1174g/L$.$h was achieved. The kinds of products obtained using the immobilized enzyme were almost the same as those using soluble enzymes or free cells.
A lipase from Pseudomonas cepacia was immobilized onto single walled carbon nanotubes (SWNTs) in two different ways in each of two solvent systems (buffer and ionic liquid). The most efficient immobilization was achieved in ionic liquid (1-butyl-3-methylimidazolium tetrafluoroborate, BMIM-$BF_4$). In this procedure, carbon nanotubes were first functionalized noncovalently with 1-pyrenebutyric acid N-hydroxysuccinimide ester and then subject to the coupling reaction with the lipase in ionic liquid. The resulting immobilized enzyme displayed the highest activity in the transesterification of 1-phenylethyl alcohol in the presence of vinyl acetate in toluene.
In this study, Bacillus licheniformis cells were immobilized by entrapment in calcium alginate beads and were used for production of alkaline protease by repeated batch process. In order to increase the stability of the beads, the immobilization procedure was optimized by statistical full factorial method, by which three factors including alginate type, calcium chloride concentration, and agitation speed were studied. Optimization of the enzyme production medium, by the Taguchi method, was also studied. The obtained results showed that optimization of the cell immobilization procedure and medium constituents significantly enhanced the production of alkaline protease. In comparison with the free-cell culture in pre-optimized medium, about 7.3-fold higher productivity was resulted after optimization of the overall procedure. Repeated batch mode of operation, using optimized conditions, resulted in continuous production of the alkaline protease for 13 batches in 19 days.
Extracellular keratinase isolated from Aspergillus flavus K-03 was immobilized on calcium alginate. The properties and reaction activities of free and immobilized keratinase with calcium alginate were characterized. The immobilized keratinase showed proteolytic activity against soluble azo-casein and azo-keratin, and insoluble feather keratin. Heat stability and pH tolerance of keratinase were greatly enhanced by immobilization. It also displayed a higher level of heat stability and an increased tolerance toward alkaline pHs compared with free keratinase. During the durability test at $40^{\circ}C$, 48% of the original enzyme activity of the immobilized keratinase was remained after 7 days of incubation. The immobilized keratinase exhibited better stability, thus increasing its potential for use in industrial application.
A new method for immobilization of glucose oxidate by the aerobic gamma radiation of synthetic monomers was developed. The radiocopolymerization was conducted aerobically at -70 to -8$0^{\circ}C$ with the mixture of several polyfunctional esters, acrylates and native enzyme. The retained activity of immobilized glucose oxidase was about 50 to 55% when a NK 23G ester, acrylamide-bis and water mixture (1:1:2) in cold toluene treated with 450 krad of gam-ma radiation. The radiation dose did not influence significantly to the enzyme activity. The solvents used to prepare the beads of glucose oxidase and monomers were toluene, n-hexane, petoleum ether and chloroform. 0.05M tris-gycerol (pH 7.0) was a more suitable bugger solution for immobilizing the enzyme than was 0.02M phosphate. Immobilization of glucose oxidase shifted the optimum pH for its reaction from 6.0 to 6.5. The pH profile for the immobilized enzyme showed a broad range of optimum activity while the native enzyme gave a sharp pick for its optimum pH value. The immobilized enzyme reaction temperature was at the range of 30~4$0^{\circ}C$.
Kim, Hyun-Cheol;Cho, Young-Jai;Gu, Hal-Bon;SaGon, Geon
Proceedings of the Korean Institute of Electrical and Electronic Material Engineers Conference
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2000.05b
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pp.316-319
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2000
In the case of immobilizing of glucose oxidase into polypyrrole (PPy) using electrosynthesis, the glucose oxidase (GOx) forms a coordinate bond with the polymer's backbone. However, because of intrinsic insulation and net-chain of the enzyme, the charge transfer and mass transport are obstructed during the film growth. Therefore, the film growth is dull. We synthesized the enzyme electrode by electropolymerization added some organic solvent, A formative seeds of film growth is delayed by adding the solvent. The delay is induced by radical transfer between the solvent and pyrrole monomer. In the case of adding ethanol, the radical transfer shares the contribution of dopant between electrolyte anion and GOx polyanion. This may lead to increase amount of immobilized the enzyme in ppy. However, adding tetrahydrofuran (THF), the radical transfer is more brisk, resulting in short chained polymer. Therefore, the doping level is lowered and then amount of immobilized of enzyme is decreased. For the UV absorption spectra of synthetic solution before synthesis and after, in the case of ethanol added, the optical density was slightly decreased for the GOx peaks. It suggests amount of GOx in the solution was decreased and amount of GOx in the film was increased. We established qualitatively that amount of immobilization can be improved by adding a little ethanol in the synthetic solution. It is due to radical transfer reaction. The radical transfer shares the contribution of dopant between small and fast electrolyte anion and big and slow GOx polyanion.
Glutathione S-transferase is known to play a crucial role in detoxification in many cases. To develop a herbicide detection biosensor, we in this study attempted to immobilize glutathione S-transferase enzyme on solid supports, polystyrene and agarose, and Na-alginate. These matrixes were attractive materials for the construction of biosensors and might also have utility for the production of immobilized enzyme bioreactors. We also compared the activities of glutathione-S-transferase immobilized OsGSTF3 and free OsGSTF3. The specific activity of the free enzyme in solution was 3.3 higher than the immobilized enzyme. These results suggest that 50% of the enzyme was bound with the catalytic site in polystyrene-alkylamine bead and immobilized enzymes showed 80% remaining activity until 3 times reuse.
Ginalska, Grazyna;Cho, Nam-Seok;Lobarzewski, Jerzy;Piccolo, Alessandro;Leonowicz, Andrzej
Journal of the Korean Wood Science and Technology
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v.29
no.3
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pp.104-111
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2001
There are some evidence that active enzymatic proteins, e.g. fungal laccase, exist in the naturally occured soil humus. This study was performed to investigate the covalent binding of fungal laccase to the humic acid-iron complex, and to measure laccase activity of immobilized ones. Seven methods were adopted to form the covalent binding of fungal laccase with soil humic acids complexed with iron. Using these seven methods it was possible to change the dimension of spacer arm between laccase and support, and also to regulate the mode of covalent binding of this enzyme. The spacer arm was regulated from 2C to 11C. There was not observed any straight relationship between the spacer arm longitude and the laccase activity after immobilization, but the binding mode more effective than the former. Three out of the seven methods gave the high activity of immobilized laccase, and which active products of laccase immobilization was stable up to 10 days after the process. It is indicated that natural soil condition might be prevented the laccase activation by the toxic influence of some phenolic humic compounds. It was shown, for the first time, the possibilities to obtain the high activity of fungal laccase by binding to humic acids, and especially in complex with iron.
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