The advantages of replicon vectors of RNA viruses include a high ability to stimulate innate immunity and exponential amplification of target mRNA leading to high expression of foreign antigens. The present study aimed to construct a DNA-layered nervous necrosis virus (NNV) replicon vector system in which the capsid protein gene was replaced with a foreign antigen gene and to compare the efficiency of foreign antigen expression between the conventional DNA vaccine vector and the present replicon vector. We presented the first report of a nodavirus DNA replicon-based foreign antigen expression system. Instead of a two-vector system, we devised a one-vector system containing both an NNV RNA-dependent RNA polymerase cassette and a foreign antigen-expressing cassette. This single-vector approach circumvents the issue of low foreign protein expression associated with the low co-transfection efficiency of a two-vector system. Cells transfected with a vector harboring hammerhead ribozyme-fused RNA1 and RNA2 (with the capsid gene ORF replaced with VHSV glycoprotein ORF) exhibited significantly higher transcription of the VHSV glycoprotein gene compared to cells transfected with either a vector without hammerhead ribozyme or a conventional DNA vaccine vector expressing the VHSV glycoprotein. Furthermore, the transcription level of the VHSV glycoprotein in cells transfected with a vector harboring hammerhead ribozyme-fused RNA1 and RNA2 showed a significant increase over time. These results suggest that NNV genome-based DNA replicon vectors have the potential to induce stronger and longer expression of target antigens compared to conventional DNA vaccine vectors.
The human polyomavirus JC virus is the etiologic agent of progressive multifocal leukoencephalopathy (PML). As the JC virus early promoter directs cell-specific expression of the viral replication factor large T antigen, transcriptional regulation constitutes a major mechanism of glial tropism in PML. It has been demonstrated that SV4O or JC virus large T antigen interacts with p53 protein and regulates many viral and cellular genes. In this study we founts that p53 represses the JC virus early promoter in both glial and nonglial cells To identify the cis-regulatory elements responsible for p53-mediated repression, deletional and site-directed mutational analyses were performed . Deletion of the enhancer region diminished p53-mediated transcriptional repression. However, point mutations of several transcription factor binding sites in the basal promoter region did not produce any significant changes. In support of this observation, when the enhancer was fused to a heterologous promoter, p53 red reduced the promoter activity about three fold. These results indicate that the enhancer region is important for tole repression of JC virus transcription by p53. Furthermore, coexpression of JC virus T antigen with a p53 protein abolished p53-mediated repression of the JC virus early promoter in non-glial cells, but not in glial cells. This finding suggests that T antigen interacts with p53 and regulates JC virus transcription in a cell-specific manner.
The human polyomavirus JC virus is the etiologic agent of progressive multifocal leukoencephalopathy (PML). The JC virus early promoter directs cell-specific expression of the viral replication factor large T antigen, thus transcriptional regulation constitutes a major mechanism of glial tropism in PML. Here we found that pentanucleotide sequence immediately upstream of the TATA sequence functions as a cell-specific silencer in the JC virus transcription. In vitro binding studies showed that synthetic oligonucleotides spanning a pentanucleotide sequence, designated "oligo 2", interacts with nuclear proteins from non-glial cells in a cell-specific manner. Furthermore, the sequence preferentially repressed the heterologous thymidine kinase promoter activity in non-glial cells. We also tested whether JC virus transcription is controlled by DNA methylation. Transient transfection of in vitro methylated JC virus promoter abolished transcription in both the glial and non-glial cells. The repression fold was much larger in glial cells than in non-glial cells. Taken together, this finding suggests that glial cell-specific expression of the JC virus is controlled by DNA methylation as well as cell-specific silencers.
Roeske, Katarzyna;Stachowiak, Radoslaw;Jagielski, Tomasz;Kaminski, Michal;Bielecki, Jacek
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.28
no.1
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pp.122-135
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2018
Listeriolysin O (LLO), one of the most immunogenic proteins of Listeria monocytogenes and its main virulence factor, mediates bacterial escape from the phagosome of the infected cell. Thus, its expression in a nonpathogenic bacterial host may enable effective delivery of heterologous antigens to the host cell cytosol and lead to their processing predominantly through the cytosolic MHC class I presentation pathway. The aim of this project was to characterize the delivery of a model antigen, chicken egg ovalbumin (OVA), to the cytosol of dendritic cells by recombinant Bacillus subtilis vegetative cells expressing LLO. Our work indicated that LLO produced by non-sporulating vegetative bacteria was able to support OVA epitope presentation by MHC I molecules on the surface of antigen presenting cells and consequently influence OVA-specific cytotoxic T cell activation. Additionally, it was proven that the genetic context of the epitope sequence is of great importance, as only the native full-sequence OVA fused to the N-terminal fragment of LLO was sufficient for effective epitope delivery and activation of $CD8^+$ lymphocytes. These results demonstrate the necessity for further verification of the fusion antigen potency of enhancing the MHC I presentation, and they prove that LLO-producing B. subtilis may represent a novel and attractive candidate for a vaccine vector.
Pichia pastoris, a methylotrophic yeast widely used for the production of heterologous proteins, was used to produce Hepatitis B surface antigen (HBsAg) under the control of the strong, tightly-regulated alcohol oxidase promoter. It is highly induced during the growth on methanol, but the presence of non-methanol carbon sources such as glycerol and glucose repressed fully the expression of alcohol oxidase. In this study, glycerol and sorbitol feedings for the expression of the recombinant HBsAg were compared to examine the potential of sorbitol as a less repressive carbon source in fed-batch fermentation. The sorbitol feeding enhanced the production yield by 12% compared to that in glycerol feeding, although the cell concentration was lower.
Vaccination is the most effective way to prevent influenza virus infections. However, conventional vaccines based on hemagglutinin (HA) have to be annually updated because the HA of influenza viruses constantly mutates. In this study, we produced a 3M2e-3HA2-NP chimeric protein as a vaccine antigen candidate using an Escherichia coli expression system. The vaccination of chimeric protein (15 ㎍) conferred complete protection against A/Puerto Rico/8/1934 (H1N1; PR8) in mice. It strongly induced influenza virus-specific antibody responses, cytotoxic T lymphocyte activity, and antibody-dependent cellular cytotoxicity. To spare the dose and enhance the cross-reactivity of the chimeric, we used a complex of poly-γ-glutamic acid and alum (PGA/alum) as an adjuvant. PGA/alum-adjuvanted, low-dose chimeric protein (1 or 5 ㎍) exhibited higher cross-protective effects against influenza A viruses (PR8, CA04, and H3N2) compared with those of chimeric alone or alum-adjuvanted proteins in vaccinated mice. Moreover, the depletion of CD4+ T, CD8+ T, and NK cells reduced the survival rate and efficacy of the PGA/alum-adjuvanted chimeric protein. Collectively, the vaccination of PGA/alum-adjuvanted chimeric protein induced strong protection efficacy against homologous and heterologous influenza viruses in mice, which suggests that it may be a promising universal influenza vaccine candidate.
A promising application of Lactococcus lactis is its use as live vehicles for production and delivery of heterologous proteins of vaccines and therapeutic substances. Because L. lactis has GRAS ('generally regarded as safe') status, we tested whether L. lactis could function as the carrier of the Ll protein of human papillomavirus (HPV) type 16. The RNA level expression of Ll gene was detected in L. Lactis. The Ll protein was expressed in L. lactis with Ll gene. The growth of strains L. lactis with an empty plasmid (pAMJ328) and L. lactis with Ll-encoding plasmid (pAMJ328-Ll) was slightly decreased in comparison with the growth of strains L. lactis (wild type). However, all the three strains of L. lactis maintained the ability to ferment sugars primarily into lactic acid, indicating that Ll protein did not affect the biochemical property of L. lactis. These results suggest that L. lactis, capable of carrying Ll protein, might be further developed as a biocompatible oral protein delivery system.
Agrobacterium harboring vector pCHBs with hygromycin phosphotransferase(hph) and hepatitis B virus surface antigen(HBsAg)gene was transformed into the mycelial culture of Flammulina velutipes. In particular, mild NaOH solution was treated to the mycelia before Agrobacterium infection step. This was purposed to generate putative surface wounds in the mycelial cell walls. The results showed that hygromycin-resistant($hyg^r$) mycelia could be obtained only from NaOH-treated mycelia but not from intact mycelia. The integration of $hyg^r$ gene in fungal genome was confirmed by PCR. In addition, a single transgene integration and heterologous protein expression in F. velutipes could be verified by Southern blot hybridization and western blot analysis, respectively. This study demonstrated an efficient tool for the Agrobacterium-mediated transformation of F. velutipes mycelia.
Lee, Gunsup;Park, Sang Hyoun;Lee, Haesun;Ji, Soo-Jeong;Lee, Joo Yung;Byun, Sung-June;Hwang, Seongsoo;Kim, Kyung Woon;Ock, Sun A;Oh, Keon Bong
Journal of Embryo Transfer
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v.32
no.3
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pp.73-79
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2017
Transplantation is considered to be a very useful approach to improve human welfare and to prolong life-span. Heterologous organ transplantation using pig organs which are similar to human beings and easy to make mass-production has known as one of the alternatives. To ensure potential usage of the pig organ for transplantation application, it is essentially required to generate transgenic pig modifying immuno-related genes. Previously, we reported production of heterozygous ${\alpha}1,3$-galactosyltransferase (GalT) knock-out and human membrane cofactor protein (MCP) expressing pig ($GalT^{-MCP/+}$), which is enforced for suppression of hyperacute and acute immunological rejection. In this study, we reported generation of homozygous pig ($GalT^{-MCP/-MCP}$) by crossbreeding $GalT^{-MCP/+}$ pigs. Two female founders gave birth to six of $GalT^{-MCP/-MCP}$, and seven $GalT^{-MCP/+}$ pigs. We performed quantitative real-time PCR, western blot, and flow cytometry analyses to confirm GalT and MCP expression. We showed that fibroblasts of the $GalT^{-MCP/-MCP}$ pig do not express GalT and its product Gal antigen, while efficiently express MCP. We also showed no expression of GalT, otherwise expression of MCP at heart, kidney, liver and pancreas of transgenic pig. Taken together, we suggest that the $GalT^{-MCP/-MCP}$ pig is a useful candidate to apply xenotransplantation study.
A vector harboring double cassettes; a heterologous gene expression cassette of pHCE-InaN-antigen and a ghost formation cassette of pAPR-cI-E lysis 37 SDM was constructed and introduced to E. coli DH5a. For the production of a bacterial ghost vaccine, bacterial ghosts from E. coli / Streptococcus iniae with four different types of antigens - enolase, GAPDH, sagA and piaA - were produced by the optimization of fermentation parameters such as a glucose concentration of 1 g/l, agitation of 300 rpm and aeration of 1 vvm. Efficiency of ghost bacteria formation was evaluated with cultures of OD$_{600}$=1.0, 2.0 and 3.0. The efficiency of the ghost bacteria formation was 99.54, 99.67, 99.99 and 99.99% with inductions at OD$_{600}$=3.0, 1.0, 2.0 and 1.0 for E. coli/S. iniae antigens enolase, piaA, GAPDH and sagA, respectively. Ghost bacteria as a vaccine was harvested by centrifugation. The antigen protein expressions were analyzed by SDS-PAGE and western blot analysis, and the molecular weights of the enolase, piaA, GAPDH and sagA were 78, 26, 67 and 26 kDa, respectively. The molecular weights of the expressed antigens were consistent with theoretical sizes obtained from the amino acid sequences.
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