미역(Undaria pinnatifada)은 낮은 칼로리 및 요오드의 원료로써 천연체중조절식품으로 알려져 있다. 미역이 체중조절식품으로 알려져 있음에도 불구하고, 지방세포 분화 및 지방축적에 관한 저해 기작은 연구가 미비하다. 본 연구에서는 3T3-L1에서 지방세포로 분화가 일어나는 단계에서 미역에탄올추출물의 효과 및 기작을 확인하였다. 미역에탄올추출물의 독성과 지방축적저해효과는 MTT assay, Oil red O staining, RT-PCR과 western blot으로 분석하였다. 미역에탄올추출물은 50 ${\mu}g/ml$의 농도에서 독성을 띄지 않았다. 3T3-L1의 분화 및 지방세포에서 triglyceride축적과정동안 50 ${\mu}g/ml$의 미역에탄올추출물을 처리하였으며, 미역에탄올추출물은 지방세포에서 triglyceride의 축적을 40% 감소시켰다. 지방세포 특이적 단백질인 Peroxisome proliferator activated receptor ${\gamma}$ ($PPAR{\gamma}$), leptin과 Hormone sensitive lipase (HSL)의 발현은 RT-PCR과 western blot으로 확인하였다. $PPAR{\gamma}$의 과발현은 지방세포의 분화를 촉진시킨다. 또한 지방세포 크기의 증가와 세포 내 triglyceride의 함량에 따라 leptin은 세포 외로 분비된다. 그러므로 $PPAR{\gamma}$와 leptin은 비만의 지표로 사용된다. 첨가한 미역에탄올추출물의 농도가 높아질수록 $PPAR{\gamma}$와 leptin의 발현이 억제되었다. 이상의 결과를 통하여, 미역의 에탄올 추출물은 지방전구세포의 분화를 억제시키며, 지방세포 내 triglyceride의 축적을 저해하는 것으로 판단된다.
후박추출물은 중국 원산인 당후박에서 제조되며, 항산화 및 항염증 효과로 알려져 있다. 후박의 성분으로는 폴레페놀인 honokiol 및 magnolol 등이 알려져 있다. 이 연구에서, 우리는 후박추출물이 triglyceride (TG)의 축척을 감소시킴으로써 지방세포 분화를 억제한다는 표면적인 결과를 얻었다. 또한, 후박 추출물이 hormone sensitive lipase (HSL) 단백질 수준을 증가시키고 adipocyte에 specific한 transcription factors로 peroxisome proliferator activated receptor (PPAR)-${\gamma}$의 단백질과 mRNA 수준을 억제하였다. 결과적으로, 후박추출물이 항비만제로서 adipogenic transcription factor와 그들의 특이적인 유전자의 발현을 억제함으로써 지방세포 분화를 억제한다고 사료된다.
Objectives: In this study, the lipolytic effects of Eriobotrya folium extract (EFE) on local fat was investigated in high fat diet (HFD)-induced obesity mouse and 3T3-L1 adipocytes. Methods: C57BL/6J mice (5 weeks) were fed HFD for 6 weeks to induce obesity. EFE (20 mg/ml, $100{\mu}l$) or saline ($100{\mu}l$) as a normal control was injected into left inguinal fat pad region, 3 times per a week for last 2 weeks. After sacrifice, body weight, and histological changes of the inguinal fat pad were evaluated. The expressions of hormone-sensitive lipase (HSL) and adipose triglyceride lipase (ATGL) in inguinal fat pad were analyzed by Western blotting. Also, lipid accumulation and lipases release were determined in 3T3-L1 adipocytes by oil red o staining. Results: EFE significantly reduced the weight of inguinal fat pad and the size of adipocytes in HFD-induced obesity mice compared to control. The treatment of EFE up-regulated the expressions of HSL and ATGL in inguinal fat pads of obesity mice, as well as 3T3-L1 adipocytes. In addition, EFE inhibited the lipid accumulation in 3T3-L1 adipocytes in a dose dependent manner. Conclusions: EFE showed lipolytic effect on local fat of HFD-induced obesity mice by up-regulation of the lipases secretion. This suggests that EFE could be considered as anti-obese substance with lipolytic property on local fat.
Effects of methanol extract from turmeric (Curcuma longa L.) (CME) on underlying mechanisms of lipolysis were investigated in 3T3-L1 adipocytes. Compared to the control, lipid accumulation with 72 hr treatment of CME at the concentration $20\;{\mu}g/mL$ was significantly decreased by 19.9% as quantified by Oil red O dye. Intracellular triglyceride (TG) content was also lowered by 19.3%. To determine the mechanism for TG content reduction, glycerol release level was measured. Incubation of 3T3-L1 adipocytes with 15 and $20\;{\mu}g/mL$ of CME significantly elevated the level of free glycerol released into the cultured medium by 20.4 and 28.6%, respectively. In subsequent measurements using quantitative real-time polymerase chain reaction (PCR), mRNA levels of hormone-sensitive lipase (HSL) and adipose triglyceride lipase (ATGL) were significantly increased by 21.2 and 24.9%, respectively, at the concentration $20\;{\mu}g/mL$. Results indicated that CME stimulated lipolysis through induction of HSL and ATGL mRNA expressions, resulting in increased glycerol release.
Objectives: This study aimed to investigate the impact of Ephedra sinica pharmacopuncture on the weight and lipid metabolism of obese mice.Methods: Obesity was induced in male C57BL/6 mice by a 60% fat diet. The animals were divided into three groups (n=5) fed a normal diet, high-fat diet, and high-fat diet with Ephedra sinica pharmacopuncture. After 13 wk, fasting blood sugar levels were measured in each group, and oral glucose tolerance tests were conducted. After 15 wk, body weight, epididymal fat pad weight, subcutaneous fat pad weight, and serum lipid and gene expression of hormone sensitive lipase (HSL), adipose triglyceride lipase (ATGL), monoacylglycerol lipase (MGL), perilipin, and peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR)-γ were measured in each group.Results: In the Ephedra group, body weight, fasting blood sugar, and oral glucose tolerance were significantly decreased. In addition, in the Ephedra group, the gene expression of HSL was significantly increased, whereas that of perilipin was significantly decreased.Conclusions: These results provide evidence that E. sinicapharmacopuncture affects obesity and obesity-induced metabolic syndrome, including insulin resistance and dyslipidemia, by activating lipolysis via the HSL pathway in adipose tissue.
Activities of lipoprotein lipase (LPL) and hormone-sensitive lipase (HSL) in adipose tissue, accumulation of carcass fat, and serum triglyceride have been determined in meal-fed (MF) and ad libitum-fed (AD) rats. At each feeding frequency, the animals received diets providing total fat as 15% or 30% of calories and polyunsaturated fatty acids (PUFA) as 2.5% or 11% of calories. The food intake of the MF rats was 75% of that consumed by the AD rats but MF rat utilized their food more efficiently, as evidenced by weight gain per 100 Kcal consumed. Meal feeding, as contrasted to ad libitum feeding, resulted in greater activities of both LPL and HSL. This suggested a higher turnover of fat in the adipose tissue of MF rats. In AD rats, body fat was significantly correlated with LPL and the ratio of LPL/HSL. Meal feeding significantly increased the ratio of LPL/HSL, indicating a greater capacity for energy storage and fat deposition in the MF rat. However, at the limited caloric intake, MF rats failed to realize this potential; there was no significant difference in percentage of body fat at the two feeding frequencies. Body fat deposition was greater in rats fed the 30% fat diet, as compared with the 15% diet, regardless of the rate of food ingestion. This was coupled with a higher ratio of LPL/HSL. The significant correlation of serum triglycerides with body fat and with the ratio of LPL/HSL in AD rats suggests that LPL activity and fat deposition may be controlled by the concentration of circulating triglycerides. Both serum triglycerides and adipose LPL activity were significantly reduced when the diet contained high levels of PUFA. The percentage of body fat was also lower in animals whose intake of PUFA was high.
Natural pterocarpan Medicarpin (Med) has been shown to have various beneficial biological roles, including inhibition of osteoclastogenesis, stimulation of bone regeneration and induction of apoptosis. However, the effect of the Med on lipolysis in adipocytes has not been reported. Here, we show the effect of Med on lipolysis in different mouse adipocytes and elucidate the underlying mechanism. We observed that Med treatment promoted release of glycerol in the media. Differentiated mouse brown adipose tissue cells were treated with Med. RNA-Seq analysis was performed to elucidate the effect of med and subsequently was confirmed by qRT-PCR and western blotting analyses. Med treatment increased both protein and gene expression levels of hormone-sensitive lipase (Hsl) and adipose triglyceride lipase (Atgl), which are two critical enzymes necessary for lipolysis. Mechanistic study showed that Med activates Protein Kinase A (PKA) and phosphorylates Hsl at PKA target position at $Serine^{660}$. Silencing of PKA gene by short interfering RNA attenuated the Med-induced increase in glycerol release and Hsl phosphorylation. The results unveil that Med boosts lipolysis via a PKA-dependent pathway in adipocytes and may provide a possible avenue of further research of Med mediated reduction of body fat.
Knowledge regarding lipid catabolism has been of great interest in the field of animal sciences. In the livestock industry, excess fat accretion in meat is costly to the producer and undesirable to the consumer. However, intramuscular fat (marbling) is desirable to enhance carcass and product quality. The manipulation of lipid content to meet the goals of animal production requires an understanding of the detailed mechanisms of lipid catabolism to help meticulously design nutritional, pharmacological, and physiological approaches to regulate fat accretion. The concept of a basic system of lipases and their co-regulators has been identified. The major lipases cleave triacylglycerol (TAG) stored in lipid droplets in a sequential manner. In adipose tissue, adipose triglyceride lipase (ATGL) performs the first and rate-limiting step of TAG breakdown through hydrolysis at the sn-1 position of TAG to release a non-esterified fatty acid (NEFA) and diacylglycerol (DAG). Subsequently, cleavage of DAG occurs via the rate-limiting enzyme hormone-sensitive lipase (HSL) for DAG catabolism, which is followed by monoglyceride lipase (MGL) for monoacylglycerol (MAG) hydrolysis. Recent identification of the co-activator (Comparative Gene Identification-58) and inhibitor [G(0)/G(1) Switch Gene 2] of ATGL have helped elucidate this important initial step of TAG breakdown, while also generating more questions. Additionally, the roles of these lipolysis-related enzymes in muscle, liver and skin tissue have also been found to be of great importance for the investigation of systemic lipolytic regulation.
본 연구는 추출용매에 따른 레몬밤 추출물의 중성지방 조절에 대한 논문으로 3T3-L1 지방전구세포를 이용해 지방세포로 분화유도한 뒤 lipid accumulation, triglyceride contents, PKA, HSL, perilipin, ATGL 및 CGI-58 단백질 발현을 확인하였다. 실험결과 네가지 조건의 레몬밤 추출물 중 물 추출 조건인 MOW100 추출물만 lipid accumulation과 triglyceride contents의 유의적 억제 효능을 나타내었으며, MOE70, MOE50, MOE50 추출물은 lipid accumulation과 triglyceride contents의 감소 효과가 없거나 유의적 차이를 나타내지 않는 것이 확인되었다. MOW100 추출물의 세포내 지방 축적 억제는 지방세포 내 lipolysis를 조절하는 효소 조절을 통해 나타난 결과로 판단된다. 따라서 레몬밤 물 추출물은 cAMP-PKA를 활성화시키고, lipolysis를 조절하는 효소의 상승작용을 통해 세포내 중성지방을 조절함으로써 혈중 중성지방을 개선하는 후보소재로의 사용이 가능할 것으로 사료된다.
We evaluated the inhibitory effect of Pueraria lobata root ethanol extract (PLREE) on lipid accumulation during 3T3-L1 differentiation to adipocytes by measuring the intracellular expression of adipogenic, lipogenic, and lipolytic markers and lipid accumulation. The total polyphenol and flavonoid content of PLREE were 47 and 29 mg/g, respectively. The electron donating capacity of PLREE at $1,000{\mu}g/mL$ was 48.8%. Treatment of 3T3-L1 preadipocytes with 100, 250, or $500{\mu}g/mL$ PLREE for 8 days dose-dependently promoted the differentiation of 3T3-L1 cells. In contrast, the lipid content of PLREE-treated cells was significantly reduced by 7.8% (p < 0.05), 35.6% (p < 0.001), and 42.2% (p < 0.001) following treatment with 100, 250, and $500{\mu}g/mL$ PLREE, respectively, as compared to differentiated control cells. PLREE upregulated peroxisome proliferator-activated receptor ${\gamma}$ mRNA and protein, and sterol regulator element-binding protein-1c mRNA levels, but did not affect CCAAT/enhancer binding-protein ${\beta}$ and ${\alpha}$ mRNA levels. PLREE also downregulated acetyl-CoA carboxylase mRNA and protein, fatty acid synthase (FAS) protein, and leptin mRNA levels, but did not affect FAS mRNA expression. PLREE upregulated adipose triglyceride lipase mRNA and protein expression, and hormone-sensitive lipase (HSL) protein expression, but did not affect HSL mRNA expression. In conclusion, we found that PLREE enhanced adipogenesis, but reduced lipogenesis, resulting in decreased lipid accumulation in 3T3-L1 cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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