Levodopa or L-3,4-dihydroxyphenylalanine (L-DOPA) is the direct precursor of the neurotransmitter dopamine. L-DOPA is a well-known neuroprotective agent for the treatment of Parkinson's disease symptoms. L-DOPA was synthesized using the enzyme, tyrosinase, as a biocatalyst for the conversion of L-tyrosine to L-DOPA and an electrochemical method for reducing L-DOPAquinone, the product resulting from enzymatic synthesis, to L-DOPA. In this study, three electrode systems were used: A glassy carbon electrode (GCE) as working electrode, a platinum, and a Ag/AgCl electrode as auxiliary and reference electrodes, respectively. GCE has been modified using electropolymerization of pyrrole to facilitate the electron transfer process and immobilize tyrosinase. Optimum conditions for the electropolymerization modified electrode were a temperature of $30^{\circ}C$ and a pH of 7 producing L-DOPA concentration 0.315 mM. After 40 days, the relative activity of an enzyme for electropolymerization remained 38.6%, respectively.
A novel esterase showing high enantioselectivity to (S)-ketoprofen ethyl ester was selected from fosmid environmental DNA library which is provided by Microbial Genomic & Applications Center. As a result of Blast search, the gene wasn't registerated in Gene Bank yet. And as we know, conserved domain region of esterase , G-X-S-X-G, wasn't discovered.$^{4)}$ And it is similar to Beta-lactamase. The DNA sequence of cloned esterase include an open reading frame consisting of 1170 bp, designated as EST-Y29, encoding a protein of 389 amino acids with a molecular mass of about 42.8 kDa. And amino acid sequence analysis revealed only a few identity (28%) to tile known esterases/lipases in the databases containing the conserved sequence motifs of esterases/lipases. when being comparison to other esterase revealed , this enzyme seems to be classified as a new member of esterase family. EST-Y29 was functionally overexpressed in a soluble form in E. coli with maximum conversion yield of (S)-ketoprofen at $65^{\circ}C$. This study demonstrates that functional screening combined with the sequential uses of restriction enzymes to exclude already known enzymes is a useful approach for isolating novel enzyme from a metagenome.
Our previous studies indicated that native carbonic anhydrase does not interact with hydrophobic adsorbents and that it acquires this ability upon denaturation. In the present study, an apo form of the enzyme was prepared by removal of zinc and a comparative study was performed on some characteristic features of the apo and native forms by far- and near-UV circular dichroism (CD), intrinsic fluorescent spectroscopy, 1-anilino naphthalene-8-sulfonate (ANS) binding, fluorescence quenching by acrylamide, and Tm measurement. Results indicate that protein flexibility is enhanced and the hydrophobic sites become more exposed upon conversion to the apo form. Accordingly, the apo structure showed a greater affinity for interaction with hydrophobic adsorbents as compared with the native structure. As observed for the native enzyme, heat denaturation of the apo form promoted interaction with alkyl residues present on the adsorbents and, by cooling followed by addition of zinc, catalytically-active immobilized preparations were obtained.
The aim of this study was to prepare diacylglycerol (DAG) by enzymatic glycerolysis of lard. The effects of reaction parameters such as lipase type, reaction temperature, enzyme amount, substrate molar ratio (lard/glycerol), reaction time, and magnetic stirring speed were investigated. Lipozyme RMIM was found to be a more active biocatalyst than Novozym 435, and the optimal reaction conditions were 14:100 (W/W) of enzyme to lard substrate ratio, 1:1 of lard to glycerol molar ratio, and 500 rpm magnetic stirring speed. The reaction mixture was first incubated at $65^{\circ}C$ for 2 h and then transferred to $45^{\circ}C$ for 8 h. At the optimum reaction conditions, the conversion rate of triacylglycerol (TAG) and the content of DAG in the reaction mixture reached 76.26% and 61.76%, respectively, and the DAG content in purified glycerolized lard was 82.03% by molecular distillation. The distribution of fatty acids and Fourier transform infrared spectra in glycerolized lard samples were similar to those in lard samples. The results revealed that enzymatic glycerolysis and molecular distillation can be used to prepare more highly purified DAG from lard.
A genomic DNA fragment encoding a putative maltooligosyltrehalose synthase (NfMTS) for trehalose biosynthesis was cloned by the degenerate primer-PCR from cyanobacterium Nostoc flagelliforme. The ORF of NfMTS was 2,799 bp in length and encoded 933 amino acid residues constituting a 106.6 kDa protein. The deduced amino acid sequence of NfMTS contained 4 regions highly conserved for MTSs. By expression of NfMTS in E. coli, it was demonstrated that the recombinant protein catalyzed the conversion of maltohexaose to maltooligosyl trehalose. The $K_m$ of the recombinant enzyme for maltohexaose was 1.87 mM and the optimal temperature and pH of the recombinant enzyme was at $50^{\circ}C$ and 7.0, respectively. The expression of MTS of N. flagelliforme was upregulated, and both trehalose and sucrose contents increased significantly in N. flagelliforme during drought stress. However, trehalose accumulated in small quantities (about 0.36 mg/g DW), whereas sucrose accumulated in high quantities (about 0.90 mg/g DW), indicating both trehalose and sucrose were involved in dehydration stress response in N. flagelliforme and sucrose might act as a chemical chaperone rather than trehalose did during dehydration stress.
A Penicillium strain which produces $eta$-galactosidase with high transgalactosylation activity, was isolated from soil and registered as Penicillium sp, KFCC 10888. When $eta$-galactosidase from Penicillium sp. KFCC 10855 reacted with 40% lactose, transgalactosylation ratio reached up to 70% at the 73% conversion of initial lactose. The biosynthesis of the enzyme in Penicillium sp. KFCC 10888 was not induced by lactose. The soybean meal was an effective component of the culture medium. The optimum pH and temperature for transgalactosylation were 4.0 and 55$^{\circ}C$, respectively. The production of galactooligosaccharides was in proportion to the initial lactose concentration. When the enzyme reacted with 40% lactose (pH 4.0) at 55$^{\circ}C$, the concentration of galactooligosaccharides increased up to 40% of total solid concentration.
Tyrosinases catalyze the hydroxylation of monophenolic compounds and the conversion of o-diphenols to oquinones. The enzymes are mainly involved in the modification of tyrosine into L-3,4-dihydroxyphenyl-alanine (L-DOPA) and DOPA/DOPAquinone-drived intermolecular cross-linking, which play the key roles of pigmentation to the cells. It is ubiquitously distributed in microorganisms, plants, and animals all around the nature world. They are classified as copper- containing dioxygen activating enzymes; two copper ions are coordinated with six histidine residues in their active sites and they are distinguished as met-, deoxy-, and oxy-form depending on their oxidative states. Natural extraction and recombinant protein approaches have been tried to obtain practical amounts of the enzymes for industrial application. Tyrosinases have been widely applied to industrial and biomedical usages such as detoxification of waste water containing phenolic compounds, L-DOPA as a drug of Parkinson's disease, biomaterials preparation based on the cross-linking ability and biosensors for the detection of phenolic compounds. Therefore, this review reports the mechanism of tyrosinase, biochemical and structural features and potential applications in industrial field.
Oxidoreductases are effective biocatalysts, but their practical use is limited by the need for large quantities of NAD(P)H. In this study, a whole-cell biocatalyst for NAD(P)H cofactor regeneration was developed using the economical substrate glycerol. This cofactor regeneration system employs permeabilized Escherichia coli cells in which the glpD and gldA genes were deleted and the gpsA gene, which encodes $NAD(P)^+-dependent$ glycerol-3-phosphate dehydrogenase, was overexpressed. These manipulations were applied to block a side reaction (i.e., the conversion of glycerol to dihydroxyacetone) and to switch the glpD-encoding enzyme reaction to a gpsA-encoding enzyme reaction that generates both NADH and NADPH. We demonstrated the performance of the cofactor regeneration system using a lactate dehydrogenase reaction as a coupling reaction model. The developed biocatalyst involves an economical substrate, bifunctional regeneration of NAD(P)H, and simple reaction conditions as well as a stable environment for enzymes, and is thus applicable to a variety of oxidoreductase reactions requiring NAD(P)H regeneration.
Methylorubrum extorquens, a facultative methylotroph, assimilates C1 compounds and accumulates poly-β-hydroxylbutyrate (PHB) as carbon and energy sources. The ethylmalonyl pathway is central to the carbon metabolism of M. extorquens, and is linked with a serine cycle and a PHB biosynthesis pathway. Understanding the ethylmalonyl pathway is vital in utilizing methylotrophs to produce value-added chemicals. In this study, we determined the crystal structure of the mesaconyl-CoA hydratase from M. extorquens (MeMeaC) that catalyzes the reversible conversion of mesaconyl-CoA to β-methylmalyl-CoA. The crystal structure of MeMeaC revealed that the enzyme belongs to the MaoC-like dehydratase domain superfamily and functions as a trimer. In our current MeMeaC structure, malic acid occupied the substrate binding site, which reveals how MeMeaC recognizes the β-methylmalyl-moiety of its substrate. The active site of the enzyme was further speculated by comparing its structure with those of other MaoC-like hydratases.
Kim, Ki-Hyun;Jeong, Jin-Young;Song, Il-Hwan;Lee, Sung-Dae;Ji, Sang-Yun;Lee, Yoo-Kyong;Nam, Ki-Taeg
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.19
no.12
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pp.740-748
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2018
This study was conducted to investigate the effects of dietary supplementation of enzyme complex (metalloprotease and xylanase) on growth performance, carcass characteristics and meat storability of broiler chickens. The experiment utilized a 2 (basal and low spec diets) ${\times}$ 3 (0, 0.5 or 1 g/kg of enzyme supplementation) factorial arrangement. A total of 360 male Ross broilers were randomly assigned into the following six groups: BD-T0 (basal diet + enzyme complex 0 g/kg), BD-T1 (basal diet + enzyme complex 0.5 g/kg), BD-T2 (basal diet + enzyme complex 1 g/kg), LD-T0 (low spec diet + enzyme complex 0 g/kg), LD-T1 (low spec diet + enzyme complex 0.5 g/kg), LD-T2 (low spec diet + enzyme complex 1 g/kg). Feed and water were provided ad libitum for 42 days, during which time feed intake and body weight were measured at one-week intervals. After the feeding trial, chickens were slaughtered by exsanguination and samples were collected. Feed intake was lower in the enzyme supplemented groups than the non-supplemented groups (p<0.05), as were body weight and gain (p<0.05). Thus, the feed conversion ratio improved in the enzyme supplemented groups relative to the non-supplemented groups (p<0.05). The carcass rate and production index were also significantly improved by supplementation with enzyme complex (p<0.05). Finally, the thiobarbituric acid reactive substances (TBARS) values were lower in the enzyme supplementation groups after 6 storage days (p<0.05). In conclusion, dietary supplementation with enzyme complex including metalloprotease and xylanase improved growth performance, carcass characteristics, and storability of broiler chicken meat.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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