A duplex PCR technique was applied for specific identification of cow and goat milk in milk products by using primers targeting the mitochondrial 12S rRNA gene. Duplex PCR using primers specific for cow and goat generated specific fragments of 223bp and 326bp from cow and goat milk DNA, respectively. Duplex PCR was applied to 15 milk products purchased from the market to verify label statements. The labeling statements of four market milk products, three yoghurt products, and one whole milk powder product were confirmed in the duplex PCR. The labeling statements of five of seven infant milk powder products were also confirmed by duplex PCR but the other two products were shown to be contaminated with either cow or goat milk. The proposed duplex PCR provides a rapid and sensitive approach to detection of as little as 0.1% cow milk in goat milk and one-step detection of cow or goat milk in milk products.
A duplex PCR method was developed to detect a transformation vector pSPB130 used in the development of a genetically modified (GM) rose plant. To detect a GM rose plant, the anthocyanin synthase ($ANS$) was used as an endogenous reference gene of rose in PCR detection. The primer pair RHANS-KF/KR producing 107 bp amplicon was used to amplify the $ANS$ gene and no amplified product was observed in any of the 9 different plants used as a template. The primer pair GMRH-KF/KR was designed to amplify the junction sequence between 35S promoter and flavonoid 3',5'-hydroxylase ($F3^{\prime}5^{\prime}H$) gene in pSPB130. The detection limit of the duplex PCR method is approximately 0.5%. This result indicates that this duplex PCR method could be useful for monitoring unauthorized GM rose in Korea.
A duplex polymerase chain reaction (PCR) method was developed to detect unapproved genetically modified (GM) potato (EH92-527-1) in Korea. The UDP-glucose pyrophosphorylase (UGP) gene was selected as an endogenous reference gene for potato and used to validate the specificity for 14 different crops. The primer pair EH92-F/R was designed to amplify the junction sequence between the genome and transgenic region introduced in GM potato. Its specificity was also validated using several different GM events. The detection limit of the duplex PCR method is approximately 0.05%. This duplex PCR method could be useful for monitoring cultivation of unauthorized GM potato in Korea.
Kim, Mi-Ju;Lee, Shin-Young;Kim, Hyun-Joong;Lee, Jeong Su;Joo, In Sun;Kwak, Hyo Sun;Kim, Hae-Yeong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.8
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pp.1398-1403
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2016
The simultaneous detection and accurate identification of hepatitis A virus (HAV) is critical in food safety and epidemiological studies to prevent the spread of HAV outbreaks. Towards this goal, a one-step duplex reverse-transcription (RT)-PCR method was developed targeting the VP1/P2B and VP3/VP1 regions of the HAV genome for the qualitative detection of HAV. An HAV RT-qPCR standard curve was produced for the quantification of HAV RNA. The detection limit of the duplex RT-PCR method was 2.8 × 101 copies of HAV. The PCR products enabled HAV genotyping analysis through DNA sequencing, which can be applied for epidemiological investigations. The ability of this duplex RT-PCR method to detect HAV was evaluated with HAV-spiked samples of fresh lettuce, frozen strawberries, and oysters. The limit of detection of the one-step duplex RT-PCR for each food model was 9.4 × 102 copies/20 g fresh lettuce, 9.7 × 103 copies/20 g frozen strawberries, and 4.1 × 103 copies/1.5 g oysters. Use of a one-step duplex RT-PCR method has advantages such as shorter time, decreased cost, and decreased labor owing to the single amplification reaction instead of four amplifications necessary for nested RT-PCR.
This study was focused on discriminating the molecular sexes of red deer and elk by duplex polymerase chain reaction(PCR) using two primer sets. Sex differentiation of mammals is primarily dependent on the presence or absence of sex determining region Y(SRY) gene encoded on Y chromosome which plays a key role for male development. Zinc finger X-Y(ZFX-ZFY) gene, one of X-Y homology gene group was found on X- and Y- chromosomes, respectively. At first, the nucleotide sequences were characterized for the intron 9 flanking region of ZFX-ZFY genes. The intron 9 of ZFX and ZFY is 529-bp and 665-bp in length, respectively. A transposable element sequence similar to bovine SINE element Bov-tA was detected only in ZFY gene of Cervidae. Sexing analysis was conducted by duplex PCR assay for amplification of SRY and ZFX-ZFY genes. Two differentially amplified patterns were found: one for females has a common band amplified only from ZFX as a template, and another for males had three bands(a common ZFX and two male-specific ZFY and SRY). On the separate tests using each gene, the results was identical to those from duplex PCR assay. Moreover, the results from PCR assays provide also identical information to phenotypic investigation of individuals of red deer, elk as well as their hybridized progenies collected from two isolated farms. These results suggest that it may be a rapid and precise method for determining the sexes by duplex PCR amplification using Y-chromosome specific SRY and X- and Y- homologous ZFX-ZFY genes showing sexual dimorphism in red deer and elk without any other controls.
Park, Yeon Jung;Lee, Mi Nan;Kim, Eun Mi;Noh, Eun Soo;Noh, Jae Koo;Park, Jung Youn;Kang, Jung-Ha
Journal of Life Science
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v.28
no.9
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pp.1062-1067
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2018
Reliable labeling of fish products can reassure consumers regarding the identity and quality of seafoods. Therefore, techniques that can identify adulteration or mislabeling are valuable. To rapidly identify two Trachurus species, Trachurus japonicus and Trachurus novaezelandiae, a highly efficient, rapid, duplex polymerase chain reaction (PCR) having two species-specific primers simultaneously was identified. This species-specific primer focused on a single nucleotide mismatch in the 3'-terminal base of a primer designed in the mitochondrial cytochrome c oxidase (COI) subunit I DNA. To optimize the duplex PCR condition, gradient PCR reactions were conducted to determine the primer annealing temperature and the primer concentration. The PCR's product was observed on the gel, suggesting that DNA molecules may be useful in differentiating the two species. The length of the amplification fragments were 103 bp for Trachurus japonicus and 214 bp for Trachurus novaezelandiae, which, along with the species-specific primer visualized by agarose gel electrophoresis, enabled accurate distinction of the species of the Trachurus genus. These results indicate that the duplex PCR, which has a species-specific primer based on single nucleotide polymorphism (SNP), can be useful for rapidly differentiating the two species of Trachurus. This duplex PCR analysis is simple, rapid, and reliable, and could be beneficial to protecting consumers' rights.
In the present work, a pair of primers specific to Tomato yellow leaf curl virus (TYLCV) was designed to allow specific amplification of DNA fragments from any TYLCV isolates using an extensive alignment of the complete genome sequences of TYLCV isolates deposited in the GenBank database. A pair of primers which allows the specific amplification of tomato ${\beta}$-tubulin gene was also analyzed as an internal PCR control. A duplex PCR method with the developed primer sets showed that TYLCV could be directly detected from the leaf crude sap of infected tomato plants. In addition, our developed duplex PCR method could determine PCR errors for TYLCV diagnosis, suggesting that this duplex PCR method with the primer sets is a good tool for specific and sensitive TYLCV diagnosis. The developed duplex PCR method was further verified from tomato samples collected from some farms in Korea, suggesting that this developed PCR method is a simple and reliable tool for rapid and large-scale TYLCV detections in tomato plants.
Phytophthora katsurae is a fungal pathogen responsible for chestnut ink disease. We designed two duplex primer sets (SOPC 1F/1R+KatI 3F/5R, SOPC 1-1F/1-1R+KatI 3F/5R) to detect P. katsurae. SOPC 1F/1R and SOPC 1-1F/1-1R primer pairs were designed for sequence characteristic amplification regions (SCAR) marker, and KatI 3F/5R primer pair was used for P. katsurae-specific primer designed from internal transcribed spacer (ITS) region. To assess the sensitivity of duplex PCR, genomic DNA was serially diluted 10-fold to make the final concentrations from 1 mg/ml to 1 ng/ml. The sensitivity for two primer sets were 1 ${\mu}g/ml$ and 100 ng/ml, respectively. To find detection limits for zoospores of P. katsurae, each zoospore suspension was serially diluted 10-fold to make the final concentrations from $1{\times}10^6$ to $1{\times}10^2$ cells/ml, and then DNA was extracted. The limits of detection for all of two primer sets were $1{\times}10^5$ cells/ml. All of two primer sets were specific to P. katsurae in PCR detection and did not produce any P. katsurae-specific PCR amplicons from other 16 Phytophthora species used as the control. This study shows that duplex PCR using two primer sets might be a useful tool for rapid and efficient detection of P. katsurae.
In this study, two duplex real-time PCR approach with melting curve analysis is presented for the detection of Escherichia coli O157:H7, Listeria monocytogenes, Salmonella spp. and Staphylococcus aureus, which are important food-borne bacterial pathogens usually present in fresh and/or minimally processed vegetables. Reaction conditions were adjusted for the simultaneous amplification and detection of specific fragments in the ${\beta}$-glucuronidase (uidA, E. coli), thermonuclease (nuc, S. aureus), hemolycin (hly, L. monocytogenes) and tetrathionate reductase (ttr, Salmonella spp.) genes. Melting curve analysis using a SYBR Green I real-time PCR approach showed characteristic $T_m$ values demonstrating the specific and efficient amplification of the four pathogens; $80.6{\pm}0.9^{\circ}C$, $86.9{\pm}0.5^{\circ}C$, $80.4{\pm}0.6^{\circ}C$ and $88.1{\pm}0.11^{\circ}C$ for S. aureus, E. coli O157:H7, L. monocytogenes and Salmonella spp., respectively. For all the pathogens, the two duplex, real-time PCR was equally sensitive to uniplex real-time PCR, using same amounts of purified DNA, and allowed detection of 10 genome equivalents. When our established duplex real-time PCR assay was applied to artificially inoculated fresh lettuce, the detection limit was $10^3$ CFU/g for each of these pathogens without enrichment. The results from this study showed that the developed duplex real-time PCR with melting curve analysis is promising as a rapid and cost-effective test method for improving food safety.
Kim, Jong-Bae;Song, Hye-Won;Kim, Geun-Hee;Kim, Hong;Shin, Kwan-Soon;Kim, Doo
Biomedical Science Letters
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v.6
no.1
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pp.65-72
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2000
In order to improve the early diagnosis of Johne's disease in ruminants, duplex polymerase chain reaction system for the detection of the etiologic agent of M. paratuberculosis and for the differentiation of other mycobacterial animal pathogens, such as M. bovis and M. avium, was applied. Genomic DNAs were purified from peripheral blood monocytes or milk macrophages and were used as templates in the duplex PCR. Detection of Mycobacterium spp. in the specimen was carried out by PCR using primer set specific to the mycobacterial 16S rDNA. And then, mycobacterial DNA-positive specimens were further differentiated with duplex PCR system which was composed of primer sets specific to 16S rDNA of M. avium complex and Is900 gene of M. paratuberculosis. The results were re-confirmed by Southern blot hybridization with oligonucleotide specific to the internal sequence of IS900 PCR amplicons. The applicability of this duplex PCR system was evaluated with DNAs extracted from clinical specimens of peripheral blood monocytes and milk macrophages. In summary, the duplex PCR amplification system described in this experiment is promising molecular technique for the early diagnosis of Johne's disease in ruminants.
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