Kim, Do Kyun;Kim, Kyoung Hoon;Cho, Eun Ji;Joo, Seoung-Je;Chung, Jung-Min;Son, Byoung Yil;Yum, Jong Hwa;Kim, Young-Man;Kwon, Hyun-Ju;Kim, Byung-Woo;Kim, Tae Hoon;Lee, Eun-Woo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.23
no.3
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pp.430-435
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2013
Multidrug resistance, especially multidrug efflux mechanisms that extrude structurally unrelated cytotoxic compounds from the cell by multidrug transporters, is a serious problem and one of the main reasons for the failure of therapeutic treatment of infections by pathogenic microorganisms as well as of cancer cells. Streptococcus mutans is considered one of the primary causative agents of dental caries and periodontal disease, which comprise the most common oral diseases. A fragment of chromosomal DNA from S. mutans KCTC3065 was cloned using Escherichia coli KAM32 as host cells lacking major multidrug efflux pumps. Although E. coli KAM32 cells were very sensitive to many antimicrobial agents, the transformed cells harboring a recombinant plasmid became resistant to several structurally unrelated antimicrobial agents such as tetracycline, kanamycin, rhodamin 6G, ampicillin, acriflavine, ethidium bromide, and tetraphenylphosphonium chloride. This suggested that the cloned DNA fragment carries a gene encoding a multidrug efflux pump. Among 49 of the multidrug-resistant transformants, we report the functional gene cloning and characterization of the function of one multidrug efflux pump, namely MdeA from S. mutans, which was expressed in E. coli KAM32. Judging from the structural and biochemical properties, we concluded that MdeA is the first cloned and characterized multidrug efflux pump using the proton motive force as the energy for efflux drugs.
Multi-drug resistance (MDR) has been known as a major hurdle in cancer chemotherapy. One of the most clinically significant causes of MDR was the efflux of anticancer agents mediated by p-glycoprotein (p-gp) over-expressed in MDR cancer cells. To overcome MDR, there have been several strategies such as co-administration with p-gp inhibitors and encapsulation of anticancer drugs into drug delivery systems. In the present study, curcumin was evaluated for its potential as p-gp inhibitor and MDR reversal activity when combined with paclitaxel incorporated into lipid nanoparticles (PTX/LN). Western blot assay showed curcumin did not modulate the level of p-gp expression in MCF-7/ADR which is a MDR variant of human breast cancer cell line, MCF-7, and over-expresses p-gp. However, curcumin inhibited p-gp-mediated efflux of calcein in a dose-dependent manner even though it showed lower activity compared to verapamil, a well-known p-gp inhibitor. Incorporation of paclitaxel into lipid nanoparticles partially recovered the anticancer activity of paclitaxel in MCF-7/ADR. The combined use of curcumin and PTX/LN exhibited further full reversal of MDR, suggesting susceptibility of PTX/LN to the efflux system. In conclusion, combined approach of using p-gp inhibitors and incorporation of the anticancer agents into nano-delivery systems would be an efficient strategy to overcome MDR.
Human hepatocytes, with complete hepatic metabolizing enzymes, transporters and cofactors, represent the gold standard for in vitro evaluation of drug metabolism, drug-drug interactions, and hepatotoxicity. Successful cryopreservation of human hepatocytes enables this experimental system to be used routinely. The use of human hepatocytes to evaluate two major adverse drug properties: drug-drug interactions and hepatotoxicity, are summarized in this review. The application of human hepatocytes in metabolism-based drug-drug interaction includes metabolite profiling, pathway identification, P450 inhibition, P450 induction, and uptake and efflux transporter inhibition. The application of human hepatocytes in toxicity evaluation includes in vitro hepatotoxicity and metabolism-based drug toxicity determination. A novel system, the Integrated Discrete Multiple Organ Co-culture (IdMOC) which allows the evaluation of nonhepatic toxicity in the presence of hepatic metabolism, is described.
Purpose: The chemoresistance of human hepatocellular carcinoma (HCC) to cytotoxic drugs, especially intrinsic or acquired multidrug resistance (MDR), still remains a major challenge in the management of HCC. In the present study, possible mechanisms involved in MDR of HCC were identified using a 5-fluorouracil (5-FU)-resistant human HCC cell line. Methods: BEL-7402/5-FU cells were established through continuous culturing parental BEL-7402 cells, imitating the pattern of chemotherapy clinically. Growth curves and chemosensitivity to cytotoxic drugs were determined by MTT assay. Doubling times, colony formation and adherence rates were calculated after cell counting. Morphological alteration, karyotype morphology, and untrastructure were assessed under optical and electron microscopes. The distribution in the cell cycle and drug efflux pump activity were measured by flow cytometry. Furthermore, expression of potential genes involved in MDR of BEL-7402/5-FU cells were detected by immunocytochemistry. Results: Compared to its parental cells, BEL-7402/5-FU cells had a prolonged doubling time, a lower mitotic index, colony efficiency and adhesive ability, and a decreased drug efflux pump activity. The resistant cells tended to grow in clusters and apparent changes of ultrastructures occurred. BEL-7402/5-FU cells presented with an increased proportion in S and G2/M phases with a concomitant decrease in G0/G1 phase. The MDR phenotype of BEL-7402/5-FU might be partly attributed to increased drug efflux pump activity via multidrug resistance protein 1 (MRP1), overexpression of thymidylate synthase (TS), resistance to apoptosis by augmentation of the Bcl-xl/Bax ratio, and intracellular adhesion medicated by E-cadherin (E-cad). P-glycoprotein (P-gp) might play a limited role in the MDR of BEL-7402/5-FU. Conclusion: Increased activity or expression of MRP1, Bcl-xl, TS, and E-cad appear to be involved in the MDR mechanism of BEL-7402/5-FU.
Experiments were carried out to determine the role of Raf-1 kinase in the development of drug resistance to paclitaxel in v-H-ras transformed NIH 3T3 fibroblasts (Ras-NIH 3T3). We established a multidrug-resistant cell line (Ras-NIH 3T3/Mdr) from Ras-NIH 3T3 cells by stepwise increases in paclitaxel. Drug sensitivity assays indicated that the $IC_{50}$ value for drug-resistant Ras-NIH 3T3/Mdr cells was more than 1 ${\mu}M$ paclitaxel, 10- or more-fold higher than for the parental Ras-NIH 3T3 cells. Western blot and RT-PCR analysis showed that the drug efflux pump a P-glycoprotein were highly expressed in Ras-NIH 3T3/Mdr cells, while not being detectable in Ras-NIH 3T3 cells. Additionally, verapamil, which appears to inhibit drug efflux by acting as a substrate for P-glycoprotein, completely reversed resistance to paclitaxel in Ras-NIH 3T3/Mdr cell line, indicating that resistance to paclitaxel is associated with overexpression of the multidrug resistance gene. Interestingly, Ras-NIH 3T3/Mdr cells have higher basal Raf-1 activity compared to Ras-NIH 3T3 cells. Unexpectedly, however, the colocalization of Raf-1 and its negative regulator Spry2 was less observed in cytoplasm of Ras-NIH 3T3/Mdr cells due to translocation of Spry2 around the nucleus in the perinuclear zone, implying that Raf-1 may be released from negative feedback inhibition by interacting with Spry2. We also showed that shRNA-mediated knockdown of Raf-1 caused a moderate increase in cell susceptibility to paclitaxel. Thus, the results presented here suggest that a Raf-1-dependent pathway plays an important role in the development of acquired drug-resistance.
The effects of non-cytotoxic concentrations of tamoxifen, verapamil, and trifluoperazine on doxorubicin cytotoxicity in five human breast cancer cell lines were studied. A non-cytotoxic concentration of tamoxifen resulted in enhanced doxorubicin cytotoxicity in HTB-123, HTB-26, and MCF-7. In these three cell lines, a combination of tamoxifen with verapamil resulted in even more increased doxorubicin cytotoxicity. Addition of verapamil or trifluoperazine alone did not influence the doxorubicin cytotoxicity significantly. Only in HTB-19 did coincubation with verapamil increase the doxorubicin cytotoxicity. In HTB-123, combination of tamoxifen with trifluoperazine increased the doxorubicin cytotoxicity significantly. In the cell lines where co-incubation with tamoxifen increased doxorubicin sensitivity, high estrogen receptor expression was detected. However, HTB-20, where tamoxifen did not enhance doxorubicin action, was also estrogen receptor positive. None of the cell lines had multidrug resistance related drug efflux and drug retention was not increased by the treatment with tamoxifen and verapamil. Cell cycle traverses were not altered by incubation with tamoxifen, verapamil or combinations thereof. These observatlons suggest mechanism of non-cytotoxic concentrations of tamoxifen and verapamil on doxorubicin cytotoxicity may involve one or more other cellular processes besides those of interference of estrogen binding to its receptor, cell cycle perturbation, or drug efflux blocking.
Conventional cancer chemotherapy is seriously limited by tumor cells exhibiting multidrug resistance (MDR), which is caused by changes in the levels or activity of membrane transporters that mediate energy-dependent drug efflux and of proteins that affect drug metabolism and/or drug action. Cancer scientists and oncologists have worked together for some time to understand anticancer drug resistance and develop pharmacological strategies to overcome such resistance. Much focus has been on the reversal of the MDR phenotype by inhibition of ATP-binding cassette (ABC) drug transporters. ABC transporters are a family of transporter proteins that mediate drug resistance and low drug bioavailability by pumping various drugs out of cells at the expense of ATP hydrolysis. Many inhibitors of MDR transporters have been identified, and though some are currently undergoing clinical trials, none are in clinical use. Herein, we briefly review the status of MDR in human cancer, explore the pathways of MDR in chemotherapy, and outline recent advances in the design and development of MDR modulators.
The aim of this study was to investigate the distribution of genes that encode multi-drug efflux pumps and virulence factors in Enterococcus faecalis isolated from retail meat and antibiotic resistance patterns of these strains. Of the 277 retail meat samples, 93 Enterococcus faecalis were isolated. The strains exhibited resistance to ampicillin (35.5%), chloramphenicol (6.4%), ciprofloxacin (4.3%), erythromycin (18.3%), levofloxacin (0%), quinupristin-dalfopristin (76.3%), tetracycline (45.2%), teicoplanin (0%) and vancomycin (0%). The strains were positive for MFS type eme(A) (100%), ABC type efr(A) (100%), ABC type efr(B) (98.9%) and ABC type lsa (91.4%) efflux pump gene. The strains were positive for gelE (68.8%), ace (90.3%), asa1 (47.3%), efaA (91.4%) and esp (12.9%) virulence gene. This research will help to assess the hazards associated with the occurrence of drug resistance among enterococci from retail meat. Therefore, it is necessary to monitor enterococcus spp. isolated from retail meat continuously.
One mechanism which plays a prominent role in development of multi-drug resistance seen in cancer cells is the over-expression of P-glycoprotein (P-gp). It is known that compounds found in vegetables and fruits not only have anticarcinogenic properties but may also modulate P-gp activity. The effect of some dietary components on efflux of daunomycin (DNM), a P-gp substrate, was examined in P-gp over-expressed human uterine sarcoma cell line, MES-SA/DX5. The efflux of DNM from the cells was significantly inhibited by quercetin and verapamil, but not by 1-naphtyl-isothiocyanate (NITC). The $IC_{50}$ values for DNM in MES-SA/DX5 cells were increased by flavonoids (quercetin and fisetin), but not by NITC after 72 hour incubation with dietary constituents. In conclusion, flavonoids may play a role in the modulation of P-gp activity in human uterine sarcoma cells.
Gastric cancer is one of the most frequently occurring malignancies in the world. Development of multiple drug resistance (MDR) to chemotherapy is known as the major cause of treatment failure for gastric cancer. Multiple drug resistance 1/P-glycoprotein (MDR1/p-gp) contributes to drug resistance via ATP-dependent drug efflux pumps and is overexpressed in many solid tumors including gastric cancer. To investigate the role of MDR1 knockdown on drug resistance reversal, we knocked down MDR1 expression using shRNA in drug resistant gastric cancer cells and examined the consequences with regard to adriamycin (ADR) accumulation and drug-sensitivity. Two shRNAs efficiently inhibited mRNA and protein expression of MDR1 in SGC7901-MDR1 cells. MDR1 knockdown obviously decreased the ADR accumulation in cells and increased the sensitivity to ADR treatment. Together, our results revealed a crucial role of MDR1 in drug resistance and confirmed that MDR1 knockdown could reverse this phenotype in gastric cancer cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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