The placenta is a captivating multifunctional organ of fetal origin and plays an essential role during pregnancy by intimately connecting mother and baby. This study explicates placental pathology and information about 25 placentas collected from the mothers infected with novel coronavirus (SARS-COV-2). So far, congenital transmission of SARS-CoV-2 seems to be remarkably uncommon in spite of many cases of COVID-19 during pregnancy. Out of the 25 placental tissue samples collected, none has shown gene expression of SARS-CoV-2 when confirmed by RT-PCR. At the same time, nasal and throat swab samples collected from newborns of SARS-CoV-2-positive mothers correspondingly tested negative by RT-PCR. The shielding properties of placental barriers against viral infections from mothers to newborns remains a mystery. Major histopathological findings have been recorded as choriodecidual tissue with necrosis, intramural fibrin deposition, chorionic villi with fibrosis, and calcification. Moreover, although recent findings are insufficient to prove direct placental transmission of COVID-19, the abundance of angiotensin-converting enzymes-2 (ACE-2) on the placental surface could potentially contribute to unpleasant outcomes during pregnancy as SARS-CoV-2 gains access to human cells via ACE-2. Finally, the significance of these findings is vague and needs further study.
The possibility of inadvertent introduction of therapeutic gene expressing viral vectors has raised safety concerns about germ-line infection. Particularly, for indications such as prostate cancer and ovarian cancer, the proximity of the point of viral administration to organs of the reproductive system raises concerns regarding inadvertent germ-line transmission of genes carried by the virus vector. To evaluate the safety of in vivo adenovirus mediated gene transfer, we explored the biodistribution, persistance and potential germ-line transmission of p53-expressing adenovirus (Ad-CMV-p53). Both male and female Balb/c mice were injected with $1{\times}10^9$ PFU of Ad-CMV-p53. The PCR analysis showed that there were detectable vector sequences in liver, kidney, spleen, seminal vesicle, epididymis, prostate, ovary, and uterus. The RT-PCR analysis for detecting inserted gene, p53 showed that Ad-CMV-p53 viral RNA were present in spleen, prostate and ovary. Direct injected male and female mice of adenovirus vector into testis and ovary were mated and their of offspring were evaluated for germ-line transmission of the adenoviral vector. The PCR and RT-PCR analysis showed no evidence of germline transmission, although vector sequences were detected in DNA extracted from gonadal tissues. Real-time PCR result confirmed a significant decrease of adenovirus in gonad tissues 1 week after injection. We have also analysed the cell specific localization of viral DNA in gonad tissues by using in-situ PCR. Positive signals were detected in interstitial tissue but not in seminiferous tubule in sperm. In the case of ovary, adenovirus signal were localized to the stromal tissue, but no follicular signals were observed. Together, these data provide strong evidence that the risk of the Inadvertent germ-line transmission of vector sequences following intraperitoneal or direct injection into genito-urinary system of adenovirus is extremely low.
In this study, we developed a loop-mediated isothermal amplification (LAMP) with hydroxynaphtol blue dye (HNB) for rapid and direct visual detection of porcine circovirus 2 DNA with high sensitivity and specificity. The LAMP was completed in 40 min at $63^{\circ}C$, and the results of the LAMP can be confirmed by naked eye without any detection process. The sensitivity of the LAMP was 10-fold higher than that of the commercial PCR (cPCR) and real time PCR (rPCR) previously reported. In clinical application, the PCV2 detection rate of the LAMP was the same on porcine tissue samples (75.0%, 36/48) between porcine blood samples (75.0%, 39/52). The PCV2 detection rate (75.0%) of LAMP was higher than those of the cPCR and rPCR (67.3%, 35/52) in blood samples. In conclusion, the LAMP developed in the study could be an useful alternative method for the detection of PCV2 in the swine disease diagnostic laboratories.
Foodborne illness caused by Noroviruses (NVs) is increasing rapidly in Korea. This study developed an effective detection protocol for NVs found in contaminated oysters and lettuce through an investigation using the major steps of virus particle separation, concentration and RT-PCR. As a surrogate model for NVs, the cultivable feline calicivirus (FCV) that belongs to the same Caliciviridae family was used. Instead of using a time-consuming ultracentrifugation method, efficient methods based on solvent extraction and PEG precipitation procedure were applied. Direct homogenization of a 25g sample of whole oyster and lettuce in 175mL PBS provided the simplicity that would be needed in the actual field of food product examination. The overnight PEG precipitation step at $4^{\circ}C$ was reduced to 3 h by placing the reaction tube in ice and by adjusting the PEG concentrations. The application of the use of chloroform and 0.2 ${\mu}m$ syringe filtration together showed a better detection efficiency than the use of chloroform alone in removing PCR inhibitors for both oyster and lettuce samples. Also, dilution of the extracted RNA solution before PCR provided increased sensitivity. The improved detection protocol developed in this study could be efficiently applied to detect FCV and most likely NVs from oysters and lettuce.
In this research 26 Shigella isolates were examined by PCR and direct nucleotide sequencing for genetic alterations in the quinolone-resistance determining regions (QRDRs). We tested for the presence of qnr genes by PCR in 91 strains, but no qnr genes were found. The results did show, however, some novel mutations at codon 83 of gyrA ($Ser{\rightarrow}Ile$) and codon 64 of parC ($Ala64{\rightarrow}Cys,\;Ala64{\rightarrow}Asp$), which were related to fluroquinolone resistance.
Kim, Jeom-Soon;Lee, Young-Gyu;Ryu, Kyoung-Yul;Kim, Jong-Tae;Cheon, Jeong-Uk
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.134.2-135
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2003
The plant-pathogenic species S. scabies, S. acidiscabies, and S. turgidiscabies cause the scab disease of potato and produce the phytotoxins, thaxtomins. necl, a gene conferring a necrogenic phenotype, is involved in pathogenicity and physically linked to the thaxtomin A biosynthetic genes. Identification of the pathogenic strains of Streptomyces from soil was performed through the polymerase chain reaction by using specific pathogenicity primer sets derived from the necl gene sequences of Streptomyces smbies. The DNA was extracted from soil using a bead-beating machine and modifications of the FastPrep system. The DNA was suitable for direct use in the PCR. The PCR products showed the bands of approximately 460 bp. This methods can be very usuful in identifying species responsible for scab diseases and studying on the ecology of plant-pathogenic Streptomyces spp.
Kim, Jin-Sun;Kim, Min-Jung;Kwon, In-Sook;Song, Eun-Sook
BMB Reports
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v.30
no.1
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pp.33-36
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1997
Age-dependent deletion of mitochondrial DNA (mtDNA) was detected in mouse brain using PCR method. The size of the deleted fragment was 0.5 kb, 0.9 kb. 1.7 kb and 4.3 kb in the region between cytochrome b gene and ATPase 6 gene. The deleted fragment was increased gradually from 3-month to 22month Direct repeat sequence flanking the deletion in 0.5 kb PCR product was TAAT.
Anisakid nematodes third stage larvae were isolated from the muscles of masou salmon (Oncorhynchus masou). Fish were purchased from Jumunjin fishery market in Gangneung. Four Anisakid third stage larvae were isolated from 4 fish. Molecular identification of the isolated worms was conducted by PCR-RFLP analysis of ribosomal DNA internal transcribed spacer region and direct sequencing of mitochondrial DNA cox2 gene. As results, all the tested individual worms were identified as Anisakis simplex (sensu stricto). This is the first report of molecular detection of anisakid worms in salmonid fishes in Korea.
Background: Single nucleotide polymorphisms (SNPs), which consist of a substitution of a single nucleotide pair, are the most abundant form of genetic variations occurring with a frequency of approximately 1 per 1000 base pairs. SNPs by themselves do not cause disease but can predispose humans to disease, modify the extent or severity of the disease or influence the drug response and treatment efficacy. Single nucleotide polymorphisms (SNPs), particularly those within the regulatory regions of the genes often influence the expression levels and can modify the disease. Studies examining the associations between SNP and the disease outcome have provided valuable insight into the disease etiology and potential therapeutic intervention. Traditionally, the genotyping of SNPs has been carried out using polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism(PCR-RFLP), which is a low throughput technique not amenable for use in large-scale SNP studies. Recently, TaqMan real-time PCR chemistry was adapted for use in allelic discrimination assays. This study validated the accuracy and utility of real-time PCR technology for SNPs genotyping Methods: The SNPs in promoter sequence (-37 and -524) of lung cancer suppressor gene, RRM1 (ribonucleotide reductase M1 subunit) with the genomic DNA samples of 89 subjects were genotyped using both real-time PCR and PCR-RFLP. Results: The discordance rates were 2.2% (2 mismatches) in -37 and 16.3% (15 mismatches) in -524. Auto-direct sequencing of all the mismatched samples(17 cases) were in accord with the genotypes read by real-time PCR. In addition, 138 genomic DNAs were genotyped using real-time PCR in a duplicate manner (two separated assays). Ninety-eight percent of the samples showed concordance between the two assays. Conclusion: Real-time PCR allelic discrimination assays are amenable to high-throughput genotyping and overcome many of the problematic features associated with PCR-RFLP.
LEE Heui-Jung;PARK Jung-Youn;LEE Jeong-Ho;MIN Kwang-Sik;JEON Im Gi;YOO Mi-Ae;LEE Won-Ho
Korean Journal of Fisheries and Aquatic Sciences
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v.33
no.2
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pp.103-109
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2000
Complete senuences of the mitochondrial rRNA Benes were determined among six salmonines in Korean Waters (Brachpmystax lenok, Onoorhpchus keta, O. masou mason, O. mason ishikawae, O. mykiss, and albino mutant of O. mykiss). The purposes of this study were to provide the basic information on levels of mtDNA polymorphism among these species for genetic characterization; discuss phylogentic relationships among three Oncorhynchus sepecies; demonstrate the utility of rRNA gene sequence data as a genetic marker for disringuishinf among Korean salmonines. PCR/direct sequencing data indicated the following consistent results; 1) 12S rRNA genes was 945 bases long in Oncorhynchus species, and 946 bases in B. lenot including one insertion. 2) Of sequence variation in mitochondrial rRNA regions, transitional substitutions were superior to transversion. 3) The significant differences were not shown in the intraspecific variation values in these gene regions. The percentage sequence divergence values were ranged from $0.066 to 0.212{\%}$. 4) The interspecific divergences were greater than the intraspecific variation. Nevertheless, ribosomal RMh genes were more conserved among species than the other mitochondrial genes, and they showed potentiality as an intergenic marker for systematics. In addition, phylogenetic trees, constructed from this data, supported that cherry salmon was closer to chum salmon than to rainbow trout, and that lenok was most distantly related species in six salmonid species.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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