Chromatin is an intelligent building block that can express either external or internal needs through structural changes. To date, three methods to change chromatin structure and regulate gene expression have been well-documented: histone modification, histone exchange, and ATP-dependent chromatin remodeling. Recently, a growing body of literature has suggested that histone tail cleavage is related to various cellular processes including stem cell differentiation, osteoclast differentiation, granulocyte differentiation, mammary gland differentiation, viral infection, aging, and yeast sporulation. Although the underlying mechanisms suggesting how histone cleavage affects gene expression in view of chromatin structure are only beginning to be understood, it is clear that this process is a novel transcriptional epigenetic mechanism involving chromatin dynamics. In this review, we describe the functional properties of the known histone tail cleavage with its proteolytic enzymes, discuss how histone cleavage impacts gene expression, and present future directions for this area of study.
The non-coding DNA in eukaryotic genomes encodes a language that programs chromatin accessibility, transcription factor binding, and various other activities. The objective of this study was to determine the effect of the primary DNA sequence on the epigenomic landscape across a 200-base pair of genomic units by integrating 127 publicly available ChromHMM BED files from the Roadmap Genomics project. Nucleotide frequency profiles of 127 chromatin annotations stratified by chromatin variability were analyzed and integrative hidden Markov models were built to detect Markov properties of chromatin regions. Our aim was to identify the relationship between DNA sequence units and their chromatin variability based on integrated ChromHMM datasets of different cell and tissue types.
Chromosomes located in the nucleus form discrete units of genetic material composed of DNA and protein complexes. The genetic information is encoded in linear DNA sequences, but its interpretation requires an understanding of three-dimensional (3D) structure of the chromosome, in which distant DNA sequences can be juxtaposed by highly condensed chromatin packing in the space of nucleus to precisely control gene expression. Recent technological innovations in exploring higher-order chromatin structure have uncovered organizational principles of the 3D genome and its various biological implications. Very recently, it has been reported that large-scale genomic variations may disrupt higher-order chromatin organization and as a consequence, greatly contribute to disease-specific gene regulation for a range of human diseases. Here, we review recent developments in studying the effect of structural variation in gene regulation, and the detection and the interpretation of structural variations in the context of 3D chromatin structure.
In eukaryotes, the genome is hierarchically packed inside the nucleus, which facilitates physical contact between cis-regulatory elements (CREs), such as enhancers and promoters. Accumulating evidence highlights the critical role of higher-order chromatin structure in precise regulation of spatiotemporal gene expression under diverse biological contexts including lineage commitment and cell activation by external stimulus. Genomics and imaging-based technologies, such as Hi-C and DNA fluorescence in situ hybridization (FISH), have revealed the key principles of genome folding, while newly developed tools focus on improvement in resolution, throughput and modality at single-cell and population levels, and challenge the knowledge obtained through conventional approaches. In this review, we discuss recent advances in our understanding of principles of higher-order chromosome conformation and technologies to investigate 4D chromatin interactions.
Genome-wide chromosome conformation capture (3C)-based high-throughput sequencing (Hi-C) has enabled identification of genome-wide chromatin loops. Because the Hi-C map with restriction fragment resolution is intrinsically associated with sparsity and stochastic noise, Hi-C data are usually binned at particular intervals; however, the binning method has limited reliability, especially at high resolution. Here, we describe a new method called HiCORE, which provides simple pipelines and algorithms to overcome the limitations of single-layered binning and predict core chromatin regions with three-dimensional physical interactions. In this approach, multiple layers of binning with slightly shifted genome coverage are generated, and interacting bins at each layer are integrated to infer narrower regions of chromatin interactions. HiCORE predicts chromatin looping regions with higher resolution, both in human and Arabidopsis genomes, and contributes to the identification of the precise positions of potential genomic elements in an unbiased manner.
Kim, Hee-Sun;Kang, Moon Joo;Kim, Sung Ah;Oh, Sun Kyung;Kim, Hoon;Ku, Seung-Yup;Kim, Seok Hyun;Moon, Shin Yong;Choi, Young Min
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제40권1호
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pp.23-28
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2013
Objective: The aim of the present study was to examine the relationship among male age, strict morphology, and sperm chromatin structure and condensation. Methods: Sperm samples from a total of 100 men underwent semen analysis, and sperm chromatin structure and condensation were assessed with toluidine blue (TB) and aniline blue (AB) tests. Results: Prevalence of strict morphology of less than 4%, and abnormal sperm chromatin structure and condensation did not show any statistically significant differences according to male age (p=0.605, p=0.235, and p=0.080). No significant correlation was demonstrated among age of male partners, strict morphology, and abnormal sperm chromatin structure using TB and AB tests. However, abnormal sperm chromatin condensation was positively associated with sperm chromatin structure (r=0.594, p=0.000) and showed negative correlation with strict morphology (r=-0.219, p=0.029). Conclusion: The tests for sperm chromatin condensation showed a significant association with strict morphology. Further study is needed to elucidate the relationship between clinical outcome and sperm chromatin tests.
Objective: To evaluate sperm nuclear DNA fragmentation and chromatin structure after 18 hours' incubation at room temperature. Methods: Twenty-eight male partners who participating IVF treatment were prospectively included in this study. Ejaculated sperm count and motility were assessed. The sperm was then immediately processed by the conventional swim-up method. After utilization of some of the sample for routine clinical use, the remainder of each of the samples was divided into two aliquots. One aliquot was immediately assessed for sperm nuclear DNA fragmentation (TUNEL assay) and chromatin structure (toluidine blue [TB] staining). The other aliquot was incubated at room temperature for 18 hours and then assessed by two methods. Only dark-TB sperms were considered as having abnormal chromatin structure. Data before and after extended incubation were compared using a paired Student's $t$-test. Results: Before and after extended culture, nuclear DNA fragmentation assessed by TUNEL was $4.9{\pm}4.7%$ and $7.0{\pm}6.4%$, respectively ($p$=0.008). The proportion of abnormal chromatin structure (dark-TB sperm) was $8.2{\pm}5.6%$ and $10.3{\pm}6.5%$ ($p$ <0.001), before and after incubation, respectively. Conclusion: After 18 hours' incubation at room temperature, sperm nuclear DNA and chromatin structure were significantly affected. The IVF practitioner should bear this information in mind when performing delayed insemination, especially for $in$$vitro$ maturation cycles.
The non-coding DNA in eukaryotic genomes encodes a language which programs chromatin accessibility, transcription factor binding, and various other activities. The objective of this short report was to determine the impact of primary DNA sequence on the epigenomic landscape across 200-base pair genomic units by integrating nine publicly available ChromHMM Browser Extensible Data files of the Encyclopedia of DNA Elements (ENCODE) project. The nucleotide frequency profiles of nine chromatin annotations with the units of 200 bp were analyzed and integrative Markov chains were built to detect the Markov properties of the DNA sequences in some of the active chromatin states of different ChromHMM regions. Our aim was to identify the possible relationship between DNA sequences and the newly built chromatin states based on the integrated ChromHMM datasets of different cells and tissue types.
The frequency of sex chromatin in neutrophil leukocyte of 14 female and 4 male normal, adult rabbits was examined and compared to those of single total X-ray irradiation. 1. The average frequency of of drumstck was 9 % in female and 0.1% in male, and that of sessile nodule was 3.35% in female and 0.9% in male , in normal condition rabbit . These results fairly determined sex ratio by sex chromatin in neutrophil leukocyte. 2. The drumstick frequency reduces to half after X-irradiaton but did not show any regular tendency or variation in morphologicla form, indicating the stability of chromatin to X-irradiation. 4. The chromatin satellite was found with a reasonable frequency in the some kinds of irradiated cells, polymorphonuclear neutrophil (above 7 lobes 0 and megakarycyte.
The eukaryotic genome forms a chromatin structure that contains repeating nucleosome structures. Nucleosome packaging is regulated by chromatin remodeling factors such as histone chaperones. The Saccharomyces cerevisiae H3/H4 histone chaperones, CAF-1 and Asf1, regulate DNA replication and chromatin assembly. CAF-1 function is largely restricted to non-transcriptional processes in heterochromatin, whereas Asf1 regulates transcription together with another H3/H4 chaperone, HIR. This study examined the role of the yeast H3/H4 histone chaperones, Asf1, HIR, and CAF-1 in chromatin dynamics during transcription. Unexpectedly, CAF-1 was recruited to the actively transcribed region in a similar way to HIR and Asf1. In addition, the three histone chaperones genetically interacted with Set2-dependent H3 K36 methylation. Similar to histone chaperones, Set2 was required for tolerance to excess histone H3 but not to excess H2A, suggesting that CAF-1, Asf1, HIR, and Set2 function in a related pathway and target chromatin during transcription.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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