Objective : Adrenal medullary chromaffin cells are known to release analgesic substances such as opioides and catecholamines. Transplantation of them is a novel method that challenges current approaches in treating chronic pain. The transplantation of xenogeneic chromaffin cells into the central nervous system(CNS) supply antinociception in animals. In this study, we investigated the analgesic effects of rat adrenal medullary chromaffin cells transplanted into the CNS of the mouse. To study the antinociceptive efficacy of transplanted chromaffin cells, the survival of rat adrenal medullary chromaffin cells transplanted into the CNS of mouse was determined. Methods : The adrenal medullary chromaffin cells isolated from rat were transplanted into the striatum of mouse. These cells were confirmed of the release of Met-enkephalin and Leu-enkephalin by HPLC, and immunoblots for tyrosine hydroxylase(TH). Two weeks after transplantation, we performed immunohistochemistry for TH to determine the survival of implanted cells and assessed pain sensitivity at the same time. Results : The isolated rat adrenal medullary chromaffin cells were positive for anti-TH antibody and released Met-enkephalin and Leu-enkephalin more than rat endothelial cells. Transplanted rat chromaffin cells were stained with anti-TH antibody in striatum of mouse after 2 weeks. Pain sensitivity was reduced on the chromaffin cell-transplanted mouse compared to endothelial cell-transplanted mouse by the hot plate test. Conclusion : These results suggest that the rat chromaffin cells were suitably transplanted into the CNS of mouse. This approach could be used as a therapy for reducing of chronic pain induced by cancer or neuronal injury.
The conductance change evoked by step depolarization was studied in primarily cultured rat adrenal chromaffin cells using patch-clamp and capacitance measurement techniques. When we applied a depolarizing pulse to a chromaffin cell, the inward calcium current was followed by an outward current and depolarization-induced exocytosis was accompanied by an increase in conductance trace. The slow inward tail current which has the same time course as the conductance change was observed in current recording. The activation of slow tail current was calcium-dependent. Reversal potentials agreed with Nernst equation assuming relative permeability of $Cs^+\;to\;K^+$ is 0.095. The outward current and tail current were blocked by apamin (200 nM) and d-tubocurarine (2 mM). The conductance change was blocked by apamin and did not affect membrane capacitance recording. We confirmed that conductance change after depolarization comes from the activation of the SK channel and can be blocked by application of the SK channel blockers. Consequently, it is necessary to consider blocking of the SK channel during membrane capacitance recording.
It is well known that chromaffin cells of adrenal medulla secrete catecholamine in response to sympathetic nerve activation and the influx of $Ca^{2+}$ through the voltage dependent $Ca^{2+}$ channels (VDCC) in the cell membrane do a major role in this secretory process. In this study, we explored the effect of divalent cations on VDCC of rat chromaffin cells. Rat (Sprague-Dawley rat, 150-250 gm) chromaffin cells were isolated and cultured. Standard giga seal, whole cell recording techniques were employed to study $Ca^{2+}$ current with external and internal solutions that could effectively isolate VDCC currents $(NMG\;in\;external\;and\;TEA\;and\;Cs^{2+}\;in\;internal\;solution)$. The voltage dependence and the inactivation time course of VDCC in our cells were identical to those of bovine chromaffin cells. A persistent inward current was first activated by depolarizing step pulse from the holding potential (H.P.) of -80 mV to -40 mV, increased to maximum amplitude at around +10 mV, and became smaller with progressively higher depolarizing pulses to reverse at around +60 mV. The inactivation time constant $(\tau)$, fitted from the long duration test potential (2 sec) was $1295.2{\pm}126.8$ msec $(n=20,\;1\;day\;of\;culture,\;mean\;{\pm}S.E.M.)$ and the kinetic parameters were not altered along the culture duration. Nicardipine $(10\;{\mu}M)$ blocked the current almost completely. Among treated divalent cations such as $Cd^{2+},\;Co^{2+},\;Ni^{2+},\;Zn^{2+}\;and\;,Mn^{2+},\;Cd^{2+}$ was the most potent blocker on VDCC. When the depolarizing step pulse from -80 mV to 10 mV was applied, the equilibrium dissociation constant $(K_d)$ of $Cd^{2+}\;was\;39\;{\mu}M,\;K_d\;of\;Co^{2+}\;was\;100\;{\mu}M\;and\;K_d\;of\;Ni^{2+}];was];780{\mu}M.$ The principal findings of this study are as follows. First, the majority of $Ca^{2+}$ channels in rat chromaffin cells are well classified to L-type $Ca^{2+}$ channel in the view of kinetics and pharmacology. Second, all divalent cations tested could block the $Ca^{2+}$ current and the most potent blocker among the tested was $Cd^{2+}$.
PC12 cells were differentiated into the cells of chromaffin phenotype by butyrate treatment. Cells were aggregated and formed tight cell adhesion. To investigate the molecular change in this differentiation, we examined expression levels of cell adhesion proteins and extracellular proteins during butyrate induced-differentiation of PC12 cells. Integrin ${\beta}1$, integrin ${\alpha}7$, E cadherin, VCAM, collagen-I, fibronectin, desmoglein and connexin were increased during differentiation. The levels of clusterin and secreted clusterin were also increased. These increased levels of cell adhesion proteins and extracellular proteins appear to induce cell aggregation and tight cell adhesion. The levels of p21, p27 and p16 were increased probably because of differentiation-related growth arrest during differentiation. Prolonged incubation of butyrate up to 1 day was required for differentiation. Signal transduction pathways for this differentiatiom could not be identified since various inhibitors had no effect. The results showed that butyrateinduced differentiation of PC12 cells to chromaffin cells involves tight cell adhesion and induction of extracellular proteins and cell adhesion proteins.
부신수질 크로마핀세포는 아세틸콜린에 반응하여 카테콜아민을 분비한다. 카테콜아민이 분비되기 위하여는 세포외 칼슘이 절대적으로 필요한데 이는 막전압 의존성 칼슘통로를 통하여 칼슘이 세포 속으로 유입되어야 분비기전이 시작됨을 시사한다. 부신수질 크로마핀 세포를 단일세포로 분리한 후 패치클람프 테크닉을 적용하여 여러 종류의 칼슘통로가 존재한다는 것이 알려져 있으나 아직 종이 달라짐에 따라 다른 칼슘통로가 존재하는 지 여부가 확실하지 않다. 그러므로 본 연구에서는 흰쥐 부신수질 크로마핀 세포를 대상으로 하여 단일 세포 패치클람프 테크닉을 적용하여 이 세포에 존재하는 다양한 칼슘통로의 존재를 확인하고자 하였다. L형 칼슘통로 억제제인 nicardipine, N형 칼슘통로 억제제인 $\omega$-CgTx GVIA, P형 칼슘통로 억제제인 $\omega$-AgaTx IVA를 사용하여 L형, N형, P형 칼슘통로가 흰쥐 부신수질 세포에 존재함을 확인하였고 개개의 칼슘통로가 전체 칼슘전류에 기여하는 정도는 L형 >N형> P형이었다.
Extracts of Black cohosh (Cimicifugae rhizoma) have been used for the treatment of climacteric complaints for decades. A significant number of woman entering menopause exhibit the following symptoms: getting hot flushes, night sweats, irritability, depression, and anxiety, A reduction of the frequency of hot flushes equivalents and hints on the antidepressant activity of Cimcifuga extracts. In the present work, we have screened several 80% ethanol extracts from medicinal plants and found that the extracts from Cimicifugae Rhizoma(Black cohosh:승마) have inhibitory effect on catecholamine secretion in bovine chromaffin cell. Since this extract inhibited 1,1-dimethyl-4-phenylpiperazinium iodide (DMPP)-induced catecholamine secretion, but did not inhibit KCl, bradykinin, and veratridine-evoked case, this inhibitory effect is mediated by nicotinic acetylcholine receptors with noncompetitive manner.
앞의 연구에서 우리는 진세노사이드가 신경세포에 존재하는 high-threshold voltage-dependent $Ca^{2+}$ channel을 억제한다는 것을 발표하였다. 그러나, 이러한 연구는 진세노사이드가 여러 칼슘 채널subtypes중 어느 특정 칼슘 채널만을 선택적으로 조절한다는 것을 보여주지는 않았다. 따라서 이 연구에서 우리는 여러 칼슘 채널subtypes에 선택적으로 작용하는 약물 혹은 toxins을 이용하여 진세노사이드가 어느 종류의 칼슘 채널 subtypes를 억제하는가를 bovine chromaffin cell을 이용하여 연구하였다. 사용한 물질은nimodipine(L-type 칼슘 채널 길항제), $\omega$-conotoxin GVIA (N-type $Ca^{2+}$ channel 길항제), $\omega$-agatoxin IVA(P-type 칼슘 채널 길항제)이었다. 연구 결과 진세노사이드는 bovine chromaffin 세포에 존재하는 high-threshold 칼슘 current을 투여 농도별로 억제하였다. $IC_{50}$/은 약 120 $\mu$g/ml인 것으로 나타났다. nimodipine은 진세노사이드에 의한 칼슘 currents억제 작용에 영향을 미치지 않은 것으로 나타났다. 그러나, $\omega$-conotoxin GVIA, $\omega$-agatoxin IVA 및 nimodipine+$\omega$-conotoxin GVIA+$\omega$-agatoxin IVA을 처리한 세포에서는 진세노사이드에 의한 칼슘 currents억제 작용이 현저하게 줄어 들었다. 이러한 연구 결과들은 진세노사이드가 L-type 칼슘 채널은 억제하지 않고, 주로 N-, p-, 및 Q-type칼슘 채널을 억제한다는 것을 보여주고 있다
Han, Arum;Han, Ki-Ho;Mohanty Swomitra K.;Frazier A. Bruno
JSTS:Journal of Semiconductor Technology and Science
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제5권1호
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pp.1-10
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2005
This paper presents the development of a microsystem for whole blood purification and electrophysiological analysis of the purified cells. Magnetophoresis using continuous diamagnetic capture (DMC) was utilized for whole cell purification and electrical impedance spectroscopy (EIS) was utilized for electrophysiological analysis of the purified cells. The system was developed on silicon and plastic substrates utilizing conventional microfabrication technologies and plastic microfabrication technologies. Using the magnetophoretic microseparator, white blood cells were purified from a sample of whole blood. The experimental results of the DMC microseparator show that 89.7% of the red blood cells (RBCs) and 72.7% of the white blood cells (WBCs) could be continuously separated out from a whole blood using an external magnetic flux of 0.2 T. EIS was used as a downstream whole cell analysis tool to study the electrophysiological characteristics of purified cells. In this work, primary cultured bovine chromaffin cells and human red blood cells were characterized using EIS. Further analysis capabilities of the EIS were demonstrated by successfully obtaining unique impedance signatures for chromaffin cells based on the whole cell ion channel activity.
Calcium(Ca) ion plays an important role to trigger the secretion of important neurotransmitters. Since Ca ion flows into the cell thru the ion selective channel, the conductance of which depends on the transmembrane potential, the voltage-dependent characteristic of Ca ion channel is crucial to elucidate the stimulus-secretion coupling of exocytosis. The present study measured the Ca ion currents thru a whole-cell configuration patch at the transmembrane potential clamped at various desired levels in the rat chromaffin cell. The resultant current-voltage relationship was differentiated to obtain dynamic conductance at each clamped voltage. Based on these measured data, five numerical parameters were extracted to reveal electrical properties of Ca ion inflow process thru the voltage-gated channel. The present study can be applied to comparing the electrical characteristics of Ca channel under different experimental conditions. Also, further study is warranted to model the conformational changes of the channel molecules.
The medicinal plant Cimicifuga Racemosa (Black cohosh) has been used to treat many kinds of neuronal and menopausal symptoms, such as arthritis, menopausal depression, nerve pain, etc. Here, we examined the effect of Cimicifugoside (CF), one of triterpene glycosides which have been known as pharmacologically active ingredients of C. Racemosa, on nicotinic acetylcholine receptor (nAChR)-mediated catecholamine (CA) secretion in bovine adrenal chromaffin cell. Cimicifugoside inhibited calcium increase induced by 1,1-dimethyl-4-phenylpiperazinium iodide (DMPP), a nAChR agonist with a half maximal inhibitory concentration (IC50) of 18${\pm}$2${\mu}$M. In contrast, cimicifugoside did not affect the calcium increases evoked by high K$\^$+/, veratridine, and bradykinin. The DMPP-induced sodium increase was also inhibited by cimicifugoside with IC50 of 2${\pm}$0.3${\mu}$M, suggesting that the activity of nAChRs is inhibited by cimicifugoside. Cimicifugoside did not effect on the KCl-induced secretion but markedly inhibited the DMPP-induced catecholamine secretion which was monitored by carbon-fiber amperometry in real time, and by high performance liquid chromatography (HPLC) through electrochemical detection. The results suggest that cimicifugoside selectively inhibits nAChR-mediated response in bovine chromaffin cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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