Objective : Adrenal medullary chromaffin cells are known to release analgesic substances such as opioides and catecholamines. Transplantation of them is a novel method that challenges current approaches in treating chronic pain. The transplantation of xenogeneic chromaffin cells into the central nervous system(CNS) supply antinociception in animals. In this study, we investigated the analgesic effects of rat adrenal medullary chromaffin cells transplanted into the CNS of the mouse. To study the antinociceptive efficacy of transplanted chromaffin cells, the survival of rat adrenal medullary chromaffin cells transplanted into the CNS of mouse was determined. Methods : The adrenal medullary chromaffin cells isolated from rat were transplanted into the striatum of mouse. These cells were confirmed of the release of Met-enkephalin and Leu-enkephalin by HPLC, and immunoblots for tyrosine hydroxylase(TH). Two weeks after transplantation, we performed immunohistochemistry for TH to determine the survival of implanted cells and assessed pain sensitivity at the same time. Results : The isolated rat adrenal medullary chromaffin cells were positive for anti-TH antibody and released Met-enkephalin and Leu-enkephalin more than rat endothelial cells. Transplanted rat chromaffin cells were stained with anti-TH antibody in striatum of mouse after 2 weeks. Pain sensitivity was reduced on the chromaffin cell-transplanted mouse compared to endothelial cell-transplanted mouse by the hot plate test. Conclusion : These results suggest that the rat chromaffin cells were suitably transplanted into the CNS of mouse. This approach could be used as a therapy for reducing of chronic pain induced by cancer or neuronal injury.
The conductance change evoked by step depolarization was studied in primarily cultured rat adrenal chromaffin cells using patch-clamp and capacitance measurement techniques. When we applied a depolarizing pulse to a chromaffin cell, the inward calcium current was followed by an outward current and depolarization-induced exocytosis was accompanied by an increase in conductance trace. The slow inward tail current which has the same time course as the conductance change was observed in current recording. The activation of slow tail current was calcium-dependent. Reversal potentials agreed with Nernst equation assuming relative permeability of $Cs^+\;to\;K^+$ is 0.095. The outward current and tail current were blocked by apamin (200 nM) and d-tubocurarine (2 mM). The conductance change was blocked by apamin and did not affect membrane capacitance recording. We confirmed that conductance change after depolarization comes from the activation of the SK channel and can be blocked by application of the SK channel blockers. Consequently, it is necessary to consider blocking of the SK channel during membrane capacitance recording.
It is well known that chromaffin cells of adrenal medulla secrete catecholamine in response to sympathetic nerve activation and the influx of $Ca^{2+}$ through the voltage dependent $Ca^{2+}$ channels (VDCC) in the cell membrane do a major role in this secretory process. In this study, we explored the effect of divalent cations on VDCC of rat chromaffin cells. Rat (Sprague-Dawley rat, 150-250 gm) chromaffin cells were isolated and cultured. Standard giga seal, whole cell recording techniques were employed to study $Ca^{2+}$ current with external and internal solutions that could effectively isolate VDCC currents $(NMG\;in\;external\;and\;TEA\;and\;Cs^{2+}\;in\;internal\;solution)$. The voltage dependence and the inactivation time course of VDCC in our cells were identical to those of bovine chromaffin cells. A persistent inward current was first activated by depolarizing step pulse from the holding potential (H.P.) of -80 mV to -40 mV, increased to maximum amplitude at around +10 mV, and became smaller with progressively higher depolarizing pulses to reverse at around +60 mV. The inactivation time constant $(\tau)$, fitted from the long duration test potential (2 sec) was $1295.2{\pm}126.8$ msec $(n=20,\;1\;day\;of\;culture,\;mean\;{\pm}S.E.M.)$ and the kinetic parameters were not altered along the culture duration. Nicardipine $(10\;{\mu}M)$ blocked the current almost completely. Among treated divalent cations such as $Cd^{2+},\;Co^{2+},\;Ni^{2+},\;Zn^{2+}\;and\;,Mn^{2+},\;Cd^{2+}$ was the most potent blocker on VDCC. When the depolarizing step pulse from -80 mV to 10 mV was applied, the equilibrium dissociation constant $(K_d)$ of $Cd^{2+}\;was\;39\;{\mu}M,\;K_d\;of\;Co^{2+}\;was\;100\;{\mu}M\;and\;K_d\;of\;Ni^{2+}];was];780{\mu}M.$ The principal findings of this study are as follows. First, the majority of $Ca^{2+}$ channels in rat chromaffin cells are well classified to L-type $Ca^{2+}$ channel in the view of kinetics and pharmacology. Second, all divalent cations tested could block the $Ca^{2+}$ current and the most potent blocker among the tested was $Cd^{2+}$.
PC12 cells were differentiated into the cells of chromaffin phenotype by butyrate treatment. Cells were aggregated and formed tight cell adhesion. To investigate the molecular change in this differentiation, we examined expression levels of cell adhesion proteins and extracellular proteins during butyrate induced-differentiation of PC12 cells. Integrin ${\beta}1$, integrin ${\alpha}7$, E cadherin, VCAM, collagen-I, fibronectin, desmoglein and connexin were increased during differentiation. The levels of clusterin and secreted clusterin were also increased. These increased levels of cell adhesion proteins and extracellular proteins appear to induce cell aggregation and tight cell adhesion. The levels of p21, p27 and p16 were increased probably because of differentiation-related growth arrest during differentiation. Prolonged incubation of butyrate up to 1 day was required for differentiation. Signal transduction pathways for this differentiatiom could not be identified since various inhibitors had no effect. The results showed that butyrateinduced differentiation of PC12 cells to chromaffin cells involves tight cell adhesion and induction of extracellular proteins and cell adhesion proteins.
Adrenal chromaffin cells secrete catecholamine in response to acetylcholine. The secretory response has absolute requirement for extracellular calcium, indicating that $Ca^{2+}$ influx through voltage operated $Ca^{2+}$ channels is the primary trigger of the secretion cascade. Although the existence of various types of $Ca^{2+}$ channels has been explored using patch clamp technique in adrenal chromaffin cells, there is still disagreement with the types of $Ca^{2+}$ channels existed in different species. Therefore, we have tried to identify several distinct types of $Ca^{2+}$ channels in rat chromaffin cells. By using nicardipine(L type channel blocker), $\omega$-CgTx GVIA(N type channel blocker), and $\omega$-AgaTx VIA(P type channel blocker), it was identified that L, N, and P type $Ca^{2+}$ channel exist in rat adrenal chromaffin cells and the order of contribution of each channel type to whole cell $Ca^{2+}$ current was L type> N type> P type. type> P type.
Extracts of Black cohosh (Cimicifugae rhizoma) have been used for the treatment of climacteric complaints for decades. A significant number of woman entering menopause exhibit the following symptoms: getting hot flushes, night sweats, irritability, depression, and anxiety, A reduction of the frequency of hot flushes equivalents and hints on the antidepressant activity of Cimcifuga extracts. In the present work, we have screened several 80% ethanol extracts from medicinal plants and found that the extracts from Cimicifugae Rhizoma(Black cohosh:승마) have inhibitory effect on catecholamine secretion in bovine chromaffin cell. Since this extract inhibited 1,1-dimethyl-4-phenylpiperazinium iodide (DMPP)-induced catecholamine secretion, but did not inhibit KCl, bradykinin, and veratridine-evoked case, this inhibitory effect is mediated by nicotinic acetylcholine receptors with noncompetitive manner.
In previous reports we have shown that ginsenosides inhibit high threshold voltage-dependent $Ca^{2+}$ channels in neuronal cells. However, these studies did not show whether ginsenosides-induced inhibition of $Ca^{2+}$ currents discriminates among the various $Ca^{2+}$ channel subtypes, although it is known that there are at least five different $Ca^{2+}$ channel subtypes in neuronal cells. In this study we investigated the effect of ginsenosides on high threshold voltage-dependent $Ca^{2+}$ channel subtypes using their selective $Ca^{2+}$ channel blockers nimodipine (L-type), $\omega$-conotoxin GVIA (N-type), or $\omega$-agatoxin IVA (P-type) in bovine chromaffin cells. We could observe that ginsenosides inhibited high threshold voltage-dependent $Ca^{2+}$ currents in a dose-dependent manner. The $IC_{50}$/ was about 120 $\mu$g/ml. Nimodipine had no effect on ginsenosides response. However, the effect of ginsenosides on $Ca^{2+}$ currents was reduced by $\omega$-conotoxin GVIA, $\omega$-agatoxin IVA, and mixture of nimodipine, $\omega$-contoxin GVIA, and $\omega$-agatoxin IVA. These data suggest that ginsenosides are negatively coupled to three types of calcium channels in bovine chromaffin cell, including an $\omega$-conotoxin GVIA-sensitive (N-type) channel, an $\omega$-agatoxin IVA-sensitive (P-type) channel and nimodipine/$\omega$-conotoxin GVIA/$\omega$-agatoxin IVA-resistant (presumptive Q-type) channel.Q-type) channel.
Han, Arum;Han, Ki-Ho;Mohanty Swomitra K.;Frazier A. Bruno
JSTS:Journal of Semiconductor Technology and Science
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v.5
no.1
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pp.1-10
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2005
This paper presents the development of a microsystem for whole blood purification and electrophysiological analysis of the purified cells. Magnetophoresis using continuous diamagnetic capture (DMC) was utilized for whole cell purification and electrical impedance spectroscopy (EIS) was utilized for electrophysiological analysis of the purified cells. The system was developed on silicon and plastic substrates utilizing conventional microfabrication technologies and plastic microfabrication technologies. Using the magnetophoretic microseparator, white blood cells were purified from a sample of whole blood. The experimental results of the DMC microseparator show that 89.7% of the red blood cells (RBCs) and 72.7% of the white blood cells (WBCs) could be continuously separated out from a whole blood using an external magnetic flux of 0.2 T. EIS was used as a downstream whole cell analysis tool to study the electrophysiological characteristics of purified cells. In this work, primary cultured bovine chromaffin cells and human red blood cells were characterized using EIS. Further analysis capabilities of the EIS were demonstrated by successfully obtaining unique impedance signatures for chromaffin cells based on the whole cell ion channel activity.
Calcium(Ca) ion plays an important role to trigger the secretion of important neurotransmitters. Since Ca ion flows into the cell thru the ion selective channel, the conductance of which depends on the transmembrane potential, the voltage-dependent characteristic of Ca ion channel is crucial to elucidate the stimulus-secretion coupling of exocytosis. The present study measured the Ca ion currents thru a whole-cell configuration patch at the transmembrane potential clamped at various desired levels in the rat chromaffin cell. The resultant current-voltage relationship was differentiated to obtain dynamic conductance at each clamped voltage. Based on these measured data, five numerical parameters were extracted to reveal electrical properties of Ca ion inflow process thru the voltage-gated channel. The present study can be applied to comparing the electrical characteristics of Ca channel under different experimental conditions. Also, further study is warranted to model the conformational changes of the channel molecules.
Proceedings of the Korean Biophysical Society Conference
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2003.06a
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pp.51-51
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2003
The medicinal plant Cimicifuga Racemosa (Black cohosh) has been used to treat many kinds of neuronal and menopausal symptoms, such as arthritis, menopausal depression, nerve pain, etc. Here, we examined the effect of Cimicifugoside (CF), one of triterpene glycosides which have been known as pharmacologically active ingredients of C. Racemosa, on nicotinic acetylcholine receptor (nAChR)-mediated catecholamine (CA) secretion in bovine adrenal chromaffin cell. Cimicifugoside inhibited calcium increase induced by 1,1-dimethyl-4-phenylpiperazinium iodide (DMPP), a nAChR agonist with a half maximal inhibitory concentration (IC50) of 18${\pm}$2${\mu}$M. In contrast, cimicifugoside did not affect the calcium increases evoked by high K$\^$+/, veratridine, and bradykinin. The DMPP-induced sodium increase was also inhibited by cimicifugoside with IC50 of 2${\pm}$0.3${\mu}$M, suggesting that the activity of nAChRs is inhibited by cimicifugoside. Cimicifugoside did not effect on the KCl-induced secretion but markedly inhibited the DMPP-induced catecholamine secretion which was monitored by carbon-fiber amperometry in real time, and by high performance liquid chromatography (HPLC) through electrochemical detection. The results suggest that cimicifugoside selectively inhibits nAChR-mediated response in bovine chromaffin cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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