Thc chimeric morulae were produced following aggregation of the half embryos which were microsurgically bisected at 8-cell and early morula stage. Different phenotypic embryos were obtained by mating ICR female mice with ICR or CBA male mice. The early morula stage was thc desirable stage for the aggregation of mouse embryos after bisection. The post-thawed survival rates of bisected-aggregated embryos that developed into normal blastocyst after conventional freezing in DMSO and ethylene glycol were 30.5 and 32.896, respectively. One offspring was produced by transferring the 67 frozen-thawed bisected-aggregated embryos.
The coat protein (CP) of Papaya ringspot virus (PRSV) was analyzed for presentation of the antigenic peptide of animal virus, Canine parvovirus (CPV), in Escherichia coli (E. coli). The 45 nucleotides fragment coding for the 15-aa peptide epitope of the CPV-VP2 protein was either inserted into the PRSV-cp gene at the 5', 3' ends, both 5' and 3' ends or substituted into the 3' end of the PRSV cp gene. Each of the chimeric PRSV cp genes was cloned into the pRSET B vector under the control of the T7 promoter and transformed into E. coli. The recombinant coat proteins expressed from different chimeric PRSV-cp genes were purified and intraperitoneally injected into mice. All of the recombinant coat proteins showed strong immunogenicity and stimulate mice immune response. The recombinant coat proteins containing the CPV epitope insertion at the C terminus and at both N and C termini elicited ten times higher specific antisera in immunized mice compared with the other two recombinant coat proteins which contain the CPV epitope insertion at the N terminus and substitution at the C terminus.
단분화성 정원줄기세포의 장기간 체외배양 중에 확립되는 다분화능 정원줄기세포는 배아줄기세포와 유사한 특성을 가져 3배엽성 세포로 체외분화가 가능하며 기형종을 형성할 수 있다. 본 연구에서는 선행 연구를 통해 outbred 생쥐(ICR strain)로부터 확립된 다분화능 정원줄기세포의 형질전환 가능성을 확인하며, 배아 내로 주입하여 유전적 키메라를 형성하는 효율을 배아줄기세포와의 비교를 통하여 검증하고자 하였다. 다분화능 정원줄기세포를 넣은 배아로부터 태어난 산자는 총 47마리(4.8%)가 태어나, 67마리(11.7%)가 태어난 배아줄기세포군에 비해 그 효율이 낮았다(P<0.05). 그러나 산자들 중의 키메라 생쥐의 비율은 다분화능 정원줄기세포 군으로 부터 3마리(6.4%)가 태어나 배아줄기세포 군으로부터 태어난 5마리(7.5%)와 유사하였다(P>0.05). 태어난 유전자변형 생쥐의 장기를 확인한 결과, 췌장, 심장, 뇌, 근육, 위, 피부, 정소에 GFP가 발현되는 것을 확인하였다. 또한 배아의 근육, 위, 뼈 등에서 anti-GFP 항체의 발현을 확인하였다. 이상의 결과를 종합하면 outbred 생쥐로부터 확립된 다분화능 정원줄기세포가 inbred 생쥐로부터 확립된 배아줄기세포와 마찬가지로 키메라 생쥐를 생산할 수 있는 전분화능을 가짐을 확인하였고, 새로운 유전자변형 동물의 생산을 위한 매개체로서의 가능성을 가진 것으로 여겨진다.
Ginsenoside Rg1은 인삼에서 분리한 약물학적인 활성을 가지는 물질이다. 본 연구는 Rg1이 제2형 당뇨병 모델 동물에서 혈당과 지질대사에 유익한 효과를 가지는지를 확인하기 위한 목적으로 수행되었다. 10주령의 db/db 마우스에 Rg1을 10 mg/kg 농도로 15일간 경구투여한 결과 공복혈당이 감소하였고, 포도당 내성이 개선되었다. 특히 혈중 중성지방과 유리지방산이 유의적으로 감소하였고 혈중 HDL-콜레스테롤이 증가되었다. 또한 chimeric GAL4-PPAR${\alpha}$ receptor 활성 프로모터를 활성화시켰고 PPAR${\alpha}$ gene인 CPT-1 (carnitine palmitoyltransferase-1)과 ACO (acyl-CoA oxidase)의 발현을 증가시켰는데 이것으로 Rg1의 지질대사 개선이 PPAR${\alpha}$ 활성에 의한 지방산 산화에 의한 것임을 확인할 수 있었다. 모든 결과를 종합해 볼 때, Rg1은 제2형 당뇨병과 관련된 고혈당증과 고지혈증에 유용한 효과를 가짐을 확인하였다.
Background: 1-8D gene is a member of human 1-8 interferon inducible gene family and is shown to be overexpressed in fresh colon cancer tissues. Three peptides 1-6, 3-5 and 3-7 derived from 1-8D gene were shown to have immunogenicity against colon cancer. Methods: To study tumor immunotherapy of these peptides we established an adoptive transfer model. $D^{b-/-}{\times}{\beta}2$ microglobulin (${\beta}2m$) null mice transgenic for a chimeric HLA-A2.1/$D^b-{\beta}2m$ single chain (HHD mice) were immunized with irradiated peptide-loaded RMA-S/HHD/B7.1 transfectants. Spleens were removed after last immunization, and splenocytes were re-stimulated in vitro. Lymphocytes from vaccinated HHD mice were transferred together with IL-2 to the tumor bearing nude mice that were challenged S.C. with the HCT/HHD/B7 colon carcinoma cell line that was found to grow in these mice. Results: Peptide 3-5 was found to be highly effective in CTL activity. Adoptively transferred anti-peptide 3-5 cytolytic T lymphocytes caused significant retardation in tumor growth. Conclusion: This study shows that peptide 3-5 can be the most effective candidate for the vaccine of adoptive immunotherapy against colon cancer.
Background: 1-8D gene is a member of human 1-8 interferon inducible gene family and was shown to be overexpressed in fresh colon cancer tissues. Three peptides 1-6, 3-5 and 3-7 derived from human 1-8D gene were shown to have immunogenicity against colon cancer. Methods: To study tumor immunotherapy, of three peptides we established an active immunization model using HHD mice. $D^{b-/-}{\times}{\beta}2$ microglobulin $({\beta}2m)$ null mice transgenic for a chimeric HLA-$A2.1/D^{b-}\;{\beta}2m$ single chain (HHD mice) were challenged with B16/HHD/1-8D tumor cells and were immunized with irradiated peptide-loaded RMA- S/HHD/B7.1 transfectants. In therapy model tumor growth was retarded in HHD mice that were injected with 3-5 peptide-loaded RMA-S/HHD/B7.1. In survival test vaccination with 1-8D-derived peptide protects HHD mice from tumor progression after tumor challenge. Results: These studies show that peptide 3-5 derived from 1-8D gene can be the most effective candidate for the vaccine of immunotherapy against colon cancer and highlight 1-8D gene as putative colon carcinoma associated antigens. Conclusion: We demonstrated that RMA-S/HHD/ B7.1 loaded with 1-8D peptides, especially 3-5, immunization generates potent antitumor immunity against tumor cells in HHD mice and designed active immunization as proper immunotherapeutic protocols.
J. R. Chun;S. J. Song;J. T. Do;K. S. Chung;Lee, H. T.
한국수정란이식학회:학술대회논문집
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한국수정란이식학회 2002년도 국제심포지엄
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pp.99-99
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2002
The hormone resistin is associated with typeII diabetes mellitus in rodent model. Resistin impairs glucose tolerance and insulin action. A new class of anti-diabetic drugs were called thiazolidinediones (TZDs) downregulates a resistin which is induced during adipocyte differentiation. But the connection between increased adiposity and resistin remains unknown. The objectives of this study was to clone a mouse resistin cDNA and to generate transgenic mice overexpressing mouse resistin gene. The 555 bp of mouse resistin was amplified from mob cDNAS by polymerase chain reaction (PCR) and cloned into pCR$\^$(R)/ 2.1 TOPO T-vector. Mouse resistin mRNA on the basis of Genbank sequence (acession no. AF323080). Then, the PCR product was cloned into pTargeT$\^$TM/ mammalian expression vector that has pCMV promoter and chimeric intron. Restriction enzyme analysis with BamH I and Not I was carried out to determine an orientation of the insert in the vector. The pCMV-mus/resistin gene was prepared from previous recombinant pTargeT$\^$TM/-mus/resistin by digestion of Bgl II, and has used for microinjection into pronuclei of one cell embryos. The microinjected embryos were transfered to pseudopregnant foster-mother. Mouse resistin expression was detected in transgenic F1 mice by Reverse Transcriptase- Polymerase Chain Reaction (RT-PCR). Resistin gene expression mouse has heavier body weight which was measured higher level of plasma glucose than that of normal mouse. And in diet-induced experiments, the abdominal fat pads were isolated from each 24h starvation and re-feeding after fasting group mice that were assessed by RT-PCR analysis. In fasting group mice, resistin expression was higher than that of re-feeding group mice. This result suggests that the resistin gene overexpressing mice may be became to obesity and be useful as an animal disease model to be diabetes mellitus caused by insulin resistance of resistin.
Park, Sun-Mi;Song, Sang-Jin;Choi, Ho-Jun;Uhm, Sang-Jun;Cho, Ssang-Goo;Lee, Hoon-Taek
한국발생생물학회:학술대회논문집
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한국발생생물학회 2003년도 제3회 국제심포지움 및 학술대회
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pp.121-121
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2003
The standard protocol for the production of transgenic mouse from ES-injected embryo has to process via chimera producing and several times breeding steps, In contrast, tetraploid-ES cell complementation method allows the immediate generation of targeted murine mutants from genetically modified ES cell clones. The advantage of this advanced technique is a simple and efficient without chimeric intermediates. Recently, this method has been significantly improved through the discovery that ES cells derived from hybrid strains support the development of viable ES mice more efficiently than inbred ES cells do. Therefore, the objective of this study was to generate transgenic mice overexpressing human resistin gene by using tetrapioid-ES cell complementation method. Human resistin gene was amplified from human fetal liver cDNA library by PCR and cloned into pCR 2.1 TOPO T-vector and constructed in pCMV-Tag4C vector. Human resistin mammalian expression plasmid was transfected into D3-GL ES cells by lipofectamine 2000, and then after 8~10 days of transfection, the human resistin-expressing cells were selected with G418. In order to produce tetraploid embryos, blastomeres of diploid embryos at the two-cell stage were fused with two times of electric pulse using 60 V 30 $\mu$sec. (fusion rate : 93.5%) and cultured upto the blastocyst stage (development rate : 94.6%). The 15~20 previously G418-selected ES cells were injected into tetraploid blastocysts, and then transferred into the uterus of E2.5d pseudopregnant recipient mice. To investigate the gestation progress, two El9.5d fetus were recovered by Casarean section and one fetus was confirmed to contain human resistin gene by genomic DNA-PCR. Therefore, this finding demonstrates that tetraploid-ES mouse technology can be considered as a useful tool to produce transgenic mouse for the rapid analysis of gene function in vivo.
Kim, Kyong Hoon;Choi, Aryeong;Kim, Sang Hoon;Song, Heonju;Jin, Seohoon;Kim, Kyungim;Jang, Jaebong;Choi, Hanbyeul;Jung, Yong Woo
Molecules and Cells
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제44권11호
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pp.795-804
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2021
Memory T (TM) cells play an important role in the long-term defense against pathogen reinvasion. However, it is still unclear how these cells receive the crucial signals necessary for their longevity and homeostatic turnover. To understand how TM cells receive these signals, we infected mice with lymphocytic choriomeningitis virus (LCMV) and examined the expression sites of neural cadherin (N-cadherin) by immunofluorescence microscopy. We found that N-cadherin was expressed in the surroundings of the white pulps of the spleen and medulla of lymph nodes (LNs). Moreover, TM cells expressing high levels of killer cell lectin-like receptor G1 (KLRG1), a ligand of N-cadherin, were co-localized with N-cadherin+ cells in the spleen but not in LNs. We then blocked N-cadherin in vivo to investigate whether it regulates the formation or function of TM cells. The numbers of CD127hiCD62Lhi TM cells in the spleen of memory P14 chimeric mice declined when N-cadherin was blocked during the contraction phase, without functional impairment of these cells. In addition, when CD127loKLRG1hi TM cells were adoptively transferred into anti-N-cadherin-treated mice compared with control mice, the number of these cells was reduced in the bone marrow and LNs, without functional loss. Taken together, our results suggest that N-cadherin participates in the development of CD127hiCD62Lhi TM cells and homing of CD127loKLRG1hi TM cells to lymphoid organs.
Regulatory T cells (Treg) naturally rein in immune attacks, and they can inhibit rejection of transplanted organs and even reverse the progression of autoimmune diseases in mice. The initial safety trials of Treg against graft-versus-host disease (GVHD) provided evidence that the adoptive transfer of Treg is safe and capable of limiting disease progression. Supported by such evidence, numerous clinical trials have been actively investigating the efficacy of Treg targeting autoimmune diseases, type I diabetes, and organ transplant rejection, including kidney and liver. The limited quantity of Treg cells harvested from peripheral blood and subsequent in vitro culture have posed a great challenge to large-scale clinical application of Treg; nevertheless, the concept of CAR (chimeric antigen receptor)-Treg has emerged as a potential resolution to the problem. Recently, two CAR-T therapies, tisagenlecleucel and axicabtagene ciloleucel, were approved by the US FDA for the treatment of refractory or recurrent acute lymhoblastic leukemia. This approval could serve as a guideline for the production protocols for other genetically engineered T cells for clinical use as well. The phase I and II clinical trials of these agents has demonstrated that genetically engineered and antigen-targeting T cells are safe and efficacious in humans. In conclusion, both the promising results of Treg cell therapy from the clinical studies and the recent FDA approval of CAR-T therapies are paving the way for CAR-Treg therapy in clinical use.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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