Epigallocatechin gallate (EGCG), a well-known antioxidant molecule, has been reported to cause hepatotoxicity when used in excess. However, the mechanism underlying EGCG-induced hepatotoxicity is still unclear. To better understand the mode of action of EGCG-induced hepatotoxicity, we examined the effect of EGCG on human hepatic gene expression in HepG2 cells using microarrays. Analyses of microarray data revealed more than 1300 differentially expressed genes with a variety of biological processes. Upregulated genes showed a primary involvement with protein-related biological processes, such as protein synthesis, protein modification, and protein trafficking, while downregulated genes demonstrated a strong association with lipid transport. Genes involved in cellular stress responses were highly upregulated by EGCG treatment, in particular genes involved in endoplasmic reticulum (ER) stress, such as GADD153, GADD34, and ATF3. In addition, changes in genes responsible for cholesterol synthesis and lipid transport were also observed, which explains the high accumulation of EGCG-induced lipids. We also identified other regulatory genes that might aid in clarifying the molecular mechanism underlying EGCG-induced hepatotoxicity.
Nitrogen is one of the most important mineral elements for plant growth. We studied the functional roles of Oryza sativa DNA BINDING WITH ONE FINGER 18 (OsDOF18) in controlling ammonium uptake. The growth of null mutants of OsDOF18 was retarded in a medium containing ammonium as the sole nitrogen source. In contrast, those mutants grew normally in a medium with nitrate as the sole nitrogen source. The gene expression was induced by ammonium but not by nitrate. Uptake of ammonium was lower in osdof18 mutants than in the wild type, while that of nitrate was not affected by the mutation. This indicated that OsDOF18 is involved in regulating ammonium transport. Among the 10 ammonium transporter genes examined here, expression of OsAMT1;1, OsAMT1;3, OsAMT2;1, and OsAMT4;1 was reduced in osdof18 mutants, demonstrating that the ammonium transporter genes function downstream of OsDOF18. Genes for nitrogen assimilation were also affected in the mutants. These results provide evidence that OsDOF18 mediates ammonium transport and nitrogen distribution, which then affects nitrogen use efficiency.
Background: One of the major mechanisms for drug resistance is associated with altered anticancer drug transport, mediated by the human-adenosine triphosphate binding cassette (ABC) transporter superfamily proteins. The overexpression of adenosine triphosphate binding cassette, sub-family B, member 1 (ABCB1) by multidrug-resistant cancer cells is a serious impediment to chemotherapy. In our study we have studied the possibility that structural single-nucleotide polymorphisms (SNP) are the mechanism of ABCB1 overexpression. Materials and Methods: A total of 101 gastric cancer multidrug resistant cases and 100 controls were genotyped with sequence-specific primed PCR (SSP-PCR). Gene expression was evaluated for 70 multidrug resistant cases and 54 controls by real time PCR. The correlation between the two groups was based on secondary structures of RNA predicted by bioinformatics tool. Results: The results of genotyping showed that among 3 studied SNPs, rs28381943 and rs2032586 had significant differences between patient and control groups but there were no differences in the two groups for C3435T. The results of real time PCR showed over-expression of ABCB1 when we compared our data with each of the genotypes in average mode. Prediction of secondary structures in the existence of 2 related SNPs (rs28381943 and rs2032586) showed that the amount of ${\Delta}G$ for original mRNA is higher than the amount of ${\Delta}G$ for the two mentioned SNPs. Conclusions: We have observed that 2 of our studied SNPs (rs283821943 and rs2032586) may elevate the expression of ABCB1 gene, through increase in mRNA stability, while this was not the case for C3435T.
Cellular retinol-binding protein II (CRBP II) belongs to the family of cellular retinol-binding proteins and plays a major role in absorption, transport, and metabolism of vitamin A. In addition, because vitamin A is correlated with reproductive performance, we measured CRBP II mRNA abundance in erlang mountainous chickens by real-time PCR using the relative quantification method. The expression of CRBP II showed a tissue-specific pattern and egg production rate-dependent changes. The expression was very high (p<0.05) in jejunum and liver, intermediate in kidney, ovary, and oviduct, and lowest (p<0.05) in heart, hypothalamus, and pituitary. In the hypothalamus, oviduct, ovary, and pituitary, CRBP II mRNA abundance were correlated to egg production rate, which increased from 12 wk to 32 wk, peaked at 32 wk relative to the other time points, and then decreased from 32 wk to 45 wk. In contrast, the expression of CRBP II mRNA in heart, jejunum, kidney, and liver was not different at any of the ages evaluated in this study. These data may help to understand the genetic basis of vitamin A metabolism, and suggest that CRBP II may be a candidate gene to affect egg production traits in chickens.
Nicotinamide (NAM) plays essential roles in physiology through facilitating $NAD^+$ redox homeostasis. Importantly, at high doses, it protects cells under oxidative stresses, and has shown therapeutic effectiveness in a variety of disease conditions. In our previous studies, NAM lowered reactive oxygen species (ROS) levels and extended cellular life span in primary human cells. In the treated cells, levels of $NAD^+/NADH$ and SIRT1 activity increased, while mitochondrial content decreased through autophagy activation. The remaining mitochondria were marked with low superoxide levels and high membrane potentials (${\Delta}_{{\Psi}m}$); we posited that the treatment of NAM induced an activation of mitophagy that is selective for depolarized mitochondria, which produce high levels of ROS. However, evidence for the selective mitophagy that is mediated by SIRT1 has never been provided. This study sought to explain the mechanisms by which NAM lowers ROS levels and increases ${\Delta}_{{\Psi}m}$. Our results showed that NAM and SIRT1 activation exert quite different effects on mitochondrial physiology. Furthermore, the changes in ROS and ${\Delta}_{{\Psi}m}$ were not found to be mediated through autophagy or SIRT activation. Rather, NAM suppressed superoxide generation via a direct reduction of electron transport, and increased ${\Delta}_{{\Psi}m}$ via suppression of mitochondrial permeability transition pore formation. Our results dissected the effects of cellular $NAD^+$ redox modulation, and emphasized the importance of the $NAD^+/NADH$ ratio in the mitochondria as well as the cytosol in maintaining mitochondrial quality.
Lysosomes are cellular organelles containing diverse classes of catabolic enzymes that are implicated in diverse cellular processes including phagocytosis, autophagy, lipid transport, and aging. Lysosome-associated membrane proteins (LAMP-1 and LAMP-2) are major glycoproteins important for maintaining lysosomal integrity, pH, and catabolism. LAMP-1 and LAMP-2 are constitutively expressed in Salmonella-infected cells and are recruited to Salmonella-containing vacuoles (SCVs) as well as Salmonella- induced filaments (Sifs) that promote the survival and proliferation of the Salmonella. LAMP-3, also known as DC-LAMP/CD208, is a member of the LAMP family of proteins, but its role during Salmonella infection remains unclear. DNA microarray analysis identified LAMP-3 as one of the genes responding to LPS stimulation in THP-1 macrophage cells. Subsequent analyses reveal that LPS and Salmonella induced the expression of LAMP-3 at both the transcriptional and translational levels. Confocal Super resolution N-SIM imaging revealed that LAMP-3, like LAMP-2, shifts its localization from the cell surface to alongside Salmonella. Knockdown of LAMP-3 by specific siRNAs decreased the number of Salmonella recovered from the infected cells. Therefore, we conclude that LAMP-3 is induced by Salmonella infection and recruited to the Salmonella pathogen for intracellular proliferation.
Dongkeun Park;Youngim Yu;Ji-hyung Kim;Jongbin Lee;Jongmin Park;Kido Hong;Jeong-Kon Seo;Chunghun Lim;Kyung-Tai Min
Molecules and Cells
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v.46
no.6
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pp.374-386
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2023
Thermal stress induces dynamic changes in nuclear proteins and relevant physiology as a part of the heat shock response (HSR). However, how the nuclear HSR is fine-tuned for cellular homeostasis remains elusive. Here, we show that mitochondrial activity plays an important role in nuclear proteostasis and genome stability through two distinct HSR pathways. Mitochondrial ribosomal protein (MRP) depletion enhanced the nucleolar granule formation of HSP70 and ubiquitin during HSR while facilitating the recovery of damaged nuclear proteins and impaired nucleocytoplasmic transport. Treatment of the mitochondrial proton gradient uncoupler masked MRP-depletion effects, implicating oxidative phosphorylation in these nuclear HSRs. On the other hand, MRP depletion and a reactive oxygen species (ROS) scavenger non-additively decreased mitochondrial ROS generation during HSR, thereby protecting the nuclear genome from DNA damage. These results suggest that suboptimal mitochondrial activity sustains nuclear homeostasis under cellular stress, providing plausible evidence for optimal endosymbiotic evolution via mitochondria-to-nuclear communication.
Urea-based nitrogen fertilizer was widely utilized in maize production, but transporters involved in urea uptake, translocation and cellular homeostasis have not been identified. Here, we isolated three maize aquapoin genes, ZmNIP2;1, ZmNIP2;4 and ZmTIP4;4, from a cDNA library by heterogous complementation of a urea uptake-defective yeast. ZmNIP2;1 and ZmNIP2;4 belonged to the nodulin 26-like intrinsic proteins (NIPs) localized at plasma membrane, and ZmTIP4;4 belonged to the tonoplast intrinsic protein (TIPs) at vacuolar membrane. Quantitative RT-PCR revealed that ZmNIP2;1 was expressed constitutively in various organs while ZmNIP2;4 and ZmTIP4;4 transcripts were abundant in reproductive organs and roots. Expression of ZmTIP4;4 was significantly increased in roots and expanded leaves under nitrogen starvation, while those of ZmNIP2;1 and ZmNIP2;4 remained unaffected. Functions of maize aquapoin genes in urea transport together with their distinct expression manners suggested that they might play diverse roles on urea uptake and translocation, or equilibrating urea concentration across tonoplast.
Cis-diamminedichloroplatinum II (cisplatin), an effective antitumor agent, induces acute renal failure by unknown mechanisms. To investigate direct toxic effects of cisplatin in the renal proximal tubular transport system, OK cell line was selected as a cell model and $Na^+/H^+$ antiport activity was evaluated during a course of cisplatin treatment. The cells grown to confluence were treated with cisplatin for 1 hour, washed, and incubated for up to 48 hours. At appropriate intervals, cells were examined for $Na^+/H^+$ antiport activity by measuring the recovery of intracellular pH (pHi) after acid loading. Cisplatin of less than 50 ${\mu}M$ induced no significant changes in cell viability in 24 hours, but it decreased the viability markedly after 48 hours. In cells exposed to 50 ${\mu}M$ cisplatin for 24 hours, the $Na^+-dependent$ pHi recovery (i.e., $Na^+/H^+$ antiport) was drastically inhibited with no changes in the $Na^+-independent$ recovery. Kinetic analysis of the $Na^+-dependent$ pHi recovery indicated that the Vmax was reduced, but the apparent Km was not altered. The cellular $Na^+$ and $K^+$ contents determined immediately before the transport measurement appeared to be similar in the control and cisplatin group, thus, the driving force for $Na^+-coupled$ transport was not different. These results indicate that cisplatin exposure impairs the $Na^+/H^+$ antiport capacity in OK cells. It is, therefore, possible that in patients treated with a high dose of cisplatin, proximal tubular mechanism for proton secretion (hence $HCO_3^-$ reabsorption) could be attenuated, leading to a metabolic acidosis (proximal renal tubular acidosis).
Choi, Yoojeong;Do, Eunsoo;Hu, Guanggan;Caza, Melissa;Horianopoulos, Linda C.;Kronstad, James W.;Jung, Won Hee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.30
no.8
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pp.1142-1148
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2020
Mitochondria play a vital role in iron uptake and metabolism in pathogenic fungi, and also influence virulence and drug tolerance. However, the regulation of iron transport within the mitochondria of Cryptococcus neoformans, a causative agent of fungal meningoencephalitis in immunocompromised individuals, remains largely uncharacterized. In this study, we identified and functionally characterized Mrs3/4, a homolog of the Saccharomyces cerevisiae mitochondrial iron transporter, in C. neoformans var. grubii. A strain expressing an Mrs3/4-GFP fusion protein was generated, and the mitochondrial localization of the fusion protein was confirmed. Moreover, a mutant lacking the MRS3/4 gene was constructed; this mutant displayed significantly reduced mitochondrial iron and cellular heme accumulation. In addition, impaired mitochondrial iron-sulfur cluster metabolism and altered expression of genes required for iron uptake at the plasma membrane were observed in the mrs3/4 mutant, suggesting that Mrs3/4 is involved in iron import and metabolism in the mitochondria of C. neoformans. Using a murine model of cryptococcosis, we demonstrated that an mrs3/4 mutant is defective in survival and virulence. Taken together, our study suggests that Mrs3/4 is responsible for iron import in mitochondria and reveals a link between mitochondrial iron metabolism and the virulence of C. neoformans.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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