In eukaryote, THO/TREX complex plays a critical role in transcriptional elongation, pre-mRNA processing, and nuclear mRNA export. This complex is evolutionally well- conserved, but there are some differences in composition and function according to organisms. Here we showed that spTex1, a component of THO/TREX complex, is not essential for growth and mRNA export in a fission yeast, Schizosaccharomyces pombe, which is more similar to higher eukaryote than budding yeast. Deletion and overexpression of the spTex1 gene do not lead to any detectable growth phenotype and accumulation of poly(A)+ RNA in the nucleus. And the spTex1-GFP protein is localized mainly in the nucleus. Yeast two-hybrid and Co-immunoprecipitation analysis showed that the spTex1 protein interacted with spHpr1 (THOC1) and spTho2 (THOC2), main subunits of THO complex. We conclude that the S. pombe Tex1 is a component of THO/TREX complex, but does not plays important roles in growth and bulk mRNA export from the nucleus.
A cDNA clone encoding the ribosomal protein S20 has been isolated from the Schizosaccharomyces pombe cDNA library by colony hybridization. The insert contained in the original plasmid pYJ10 was transferred intro shuttle vector pRS316 generate plasmid pYJll. The dDNA insert of plasmid pYJll, contains 484 nucleotides and encodes a protein of 118 amino acids with a calculated mass of 13,544 daltons. The deduced amino acid sequence of S. pombe ribosomal protein S20 is very homologous with fruit fly, rat, and budding yeast counterparts. It is also homologous with Xenopus S22 ribosomal protein. S. pombe ribosomal protein S20 appears to be relatively hydruphobic except the C-terminal region. The 728 bp upstream region of the S20 gene was amplified from chromosomal DNA and transferred into the BamHI/EcoRI site of the promoterles $\beta$-galactosidase gene of the vector YEp357R, which resulted in fusion plasmid pYS20. The synthesis of $\beta$-galactosidase from the fusion plasmid appeared to be the highest in the mid-exponential phase. The S. pombe cells with the fusion plasmid grown at 35$\^{C}$ gave lower $\beta$-galactosidase activity than the cells grown at 30$\^{C}$. Computer analysis showed the consensus sequence CAGTCACA in the upstream regions of various ribosomal protein genes in S. pombe, which would be involved in the coordinated expression of small ribosomal proteins.
Kang, Eun-Hye;Song, Eun-Jung;Kook, Jun Ho;Lee, Hwan-Hee;Jeong, Bo-Ri;Park, Hee-Moon
Mycobiology
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v.43
no.1
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pp.31-36
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2015
We have previously isolated ${\varepsilon}$-COP, the ${\alpha}$-COP interactor in COPI of Aspergillus nidulans, by yeast two-hybrid screening. To understand the function of ${\varepsilon}$-COP, the $aneA^+$ gene for ${\varepsilon}$-COP/AneA was deleted by homologous recombination using a gene-specific disruption cassette. Deletion of the ${\varepsilon}$-COP gene showed no detectable changes in vegetative growth or asexual development, but resulted in decrease in the production of the fruiting body, cleistothecium, under conditions favorable for sexual development. Unlike in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae, in A. nidulans, over-expression of ${\varepsilon}$-COP did not rescue the thermo-sensitive growth defect of the ${\alpha}$-COP mutant at $42^{\circ}C$. Together, these data show that ${\varepsilon}$-COP is not essential for viability, but it plays a role in fruiting body formation in A. nidulans.
We constructed the null mutants of fission yeast Schizosaccharomyces pombe spDbp5 gene that is homologous to DEAD-box RNA helicase DBP5 in budding yeast Saccharomyces cerevisiae, which plays important roles in mRNA export out of nucleus. A null mutant in an $h^+/h^+$ diploid strain was constructed by replacing the spDbp5-coding region with an $ura4^+$ gene using one-step gene disruption method. Tetrad analysis showed that the spDbp5 is essential for vegetative growth. The haploid spDbp5 null mutants harboring pREP81X-spDbp5 plasmid showed extensive $poly(A)^+$ RNA accumulation in the nucleus and decrease in the cytoplasm after repression of spDbp5 expression. These results suggest that spDbp5 is also involved in mRNA export from the nucleus.
We constructed the deletion mutants of fission yeast Schizosaccharomyces pombe spNab2 gene that is homologous to poly(A)-binding protein NAB2 in budding yeast Saccharomyces cerevisiae, which plays crucial roles in mRNA 3' end formation and mRNA export from nucleus into the cytoplasm. A null mutant in an $h^+$/ $h^+$ diploid strain was constructed by replacing the spNab2-coding region with an $ura4^+$ gene using one-step gene disruption method. Tetrad analysis showed that the spNab2 is not essential for vegetative growth and mRNA export. However, over-expression of spNab2 cause the severe growth defects and intensive accumulation of poly(A) RNA in the nucleus. Also, the spNab2-GFP fusions were localized mainly in the nucleus. These results suggest that spNab2 is also involved in mRNA export out of the nucleus.
The purpose of this study was to analyze the hazard of fungi in Garaetteok (Korean rice cake) by isolating and identifying of fungi contaminated with Garaetteok and investigating the possibility of mycotoxin production. Garaetteok used in this study were the ones that were returned back to the manufacturers in Jeollanam-do due to the presence of foreign matters presumed to be fungi. The fungi foreign matter was collected and inoculated on Potato dextrose agar, Malt extract agar, and Czapek yeast extract agar, and then cultured at 25℃ for 7 days. The micro-structure was observed under an optical microscope for the colonies in which pure isolation was confirmed. The gene sequencing of the product of amplified PCR was analyzed using the ITS primer. Colony-1 and 2 maintained the same properties in each tray, confirming that they were purely isolated. Budding cells were observed from the Colony-1, thus, it was determined to be yeast. Colony-2 was determined to be a fungus that belongs to Fusarium spp. as fusiform conidia were observed. As a result of gene sequencing, a total of 76 cases of fungi of Fusarium spp. were found, among which Fusarium solani was the most observed cases (53 cases). From the morphological and genetic identification, Colony-2 was identified as Fusarium spp., specifically, Fusarium solani. The fungi found in Fusarium spp. produce mycotoxins such as nivalenol, zearalenone, and fumonisin, which may cause vomiting, diarrhea, and cancer. Conclusively, the results confirm the possibility of mycotoxin production by Fusarium spp. isolated from Garaetteok. Consequently, when an unknown fungus was found, it is necessary to isolate and identify the fungus, determine whether it is a mycotoxin producing species, and strengthen relative administrative measures, accordingly.
The cohesin complex holds sister chromatids together and prevents premature chromosome segregation until the onset of anaphase. Mcd1 (also known as Scc1), the α-kleisin subunit of cohesin, is a key regulatory subunit of the mitotic cohesin complex and is required for maintaining sister chromatid cohesion, chromosome organization, and DNA repair. We investigated the function of Mcd1 in meiosis by ectopically expressing Mcd1 during early meiotic prophase I in Saccharomyces cerevisiae. Mcd1 partially regulated the progression of meiotic recombination, sister chromatid separation, and nuclear division. DNA physical analysis during meiotic recombination showed that Mcd1 induced double-strand breaks (DSBs) but negatively regulated homologous recombination during DSB repair; Mcd1 expression delayed post-DSB stages, leading to inefficiencies in the DSB-to-joint molecule (JM) transition and subsequent crossover formation. These findings indicate that meiotic cells undergo Mcd1-mediated DSB formation during prophase I, and that residual Mcd1 could regulate the progression of JM formation during meiotic recombination.
Condensin is not only responsible for chromosome condensation, but is also involved in double-strand break (DSB) processing in the cell cycle. During meiosis, the condensin complex serves as a component of the meiotic chromosome axis, and mediates both proper assembly of the synaptonemal complex and DSB repair, in order to ensure proper homologous chromosome segregation. Here, we used the budding yeast Saccharomyces cerevisiae to show that condensin participates in a variety of chromosome organization processes and exhibits crucial molecular functions that contribute to meiotic recombination during meiotic prophase I. We demonstrate that Ycs4 is required for efficient DSB formation and establishing homolog bias at the early stage of meiotic prophase I, which allows efficient formation of interhomolog recombination products. In the Ycs4 meiosis-specific allele (ycs4S), interhomolog products were formed at substantial levels, but with the same reduction in crossovers and noncrossovers. We further show that, in prophase chromosomal events, ycs4S relieved the defects in the progression of recombination interactions induced as a result of the absence of Rec8. These results suggest that condensin is a crucial coordinator of the recombination process and chromosome organization during meiosis.
Identifying genes indispensable for an organism's life and their characteristics is one of the central questions in current biological research, and hence it would be helpful to develop computational approaches towards the prediction of essential genes. The performance of a predictor is usually measured by the area under the receiver operating characteristic curve (AUC). We propose a novel method by implementing genetic algorithms to maximize the partial AUC that is restricted to a specific interval of lower false positive rate (FPR), the region relevant to follow-up experimental validation. Our predictor uses various features based on sequence information, protein-protein interaction network topology, and gene expression profiles. A feature selection wrapper was developed to alleviate the over-fitting problem and to weigh each feature's relevance to prediction. We evaluated our method using the proteome of budding yeast. Our implementation of genetic algorithms maximizing the partial AUC below 0.05 or 0.10 of FPR outperformed other popular classification methods.
In budding yeast, G2/M transition is tightly correlated with bud morphogenesis regulated by Swel and septin that plays as a scaffold to recruits protein components. BNI5 isolated as a suppressor for septin defect is implicated in septin organization and cytokinesis. The mechanism by which Bni5 regulates normal septin function is not completely understood. Here, we show that Bni5 phosphorylation is required for mitotic entry regulated by Swel pathway. Bni5 modification was evident from late mitosis to G1 phase, and CIP treatment in vitro of affinity-purified Bni5 removed the modification, indicative of phosphorylation on Bni5. The phosphorylation-deficient mutant of BNI5 (bni5-4A) was defective in both growth at semi-restrictive temperature and suppression of septin defect. Loss of Bni5 phosphorylation resulted in abnormal bud morphology and cell cycle delay at G2 phase, as evidenced by the formation of elongated cells with multinuclei. However, deletion of Swel completely eliminated the elongated-bud phenotypes of both bni5 deletion and bni5-4A mutants. These results suggest that the bud morphogenesis and mitotic entry are positively regulated by phosphorylation-dependent function of Bni5 which is under the control of Swel morphogenesis pathway.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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