Purpose: Adipose-derived stromal cells (ASCs) are readily harvested from lipoaspirated tissue or subcutaneous adipose tissue fragments. The stromal vascular fraction (SVF) is a heterogeneous set of cell populations that surround and support adipose tissue, which includes the stromal cells, ASCs, that have the ability to differentiate into cells of several lineages and contains cells from the microvasculature. The mechanisms that drive the ASCs into the osteoblast lineage are still not clear, but the process has been more extensively studied in bone marrow stromal cells. The purpose of this study was to investigate the osteogenic capacity of adipose derived SVF cells and evaluate bone formation following implantation of SVF cells into the bone defect of human phalanx. Methods: Case 1 a 43-year-old male was wounded while using a press machine. After first operation, segmental bone defects of the left 3rd and 4th middle phalanx occurred. At first we injected the SVF cells combined with demineralized bone matrix (DBM) to defected 4th middle phalangeal bone lesion. We used P (L/DL)LA [Poly (70L-lactide-co-30DL-lactide) Co Polymer P (L/DL)LA] as a scaffold. Next, we implanted the SVF cells combined with DBM to repair left 3rd middle phalangeal bone defect in sequence. Case 2 was a 25-year-old man with crushing hand injury. Three months after the previous surgery, we implanted the SVF cells combined with DBM to restore right 3rd middle phalangeal bone defect by syringe injection. Radiographic images were taken at follow-up hospital visits and evaluated radiographically by means of computerized analysis of digital images. Results: The phalangeal bone defect was treated with autologous SVF cells isolated and applied in a single operative procedure in combination with DBM. The SVF cells were supported in place with mechanical fixation with a resorbable macroporous sheets acting as a soft tissue barrier. The radiographic appearance of the defect revealed a restoration to average bone density and stable position of pharyngeal bone. Densitometric evaluations for digital X-ray revealed improved bone densities in two cases with pharyngeal bone defects, that is, 65.2% for 4th finger of the case 1, 60.5% for 3rd finger of the case 1 and 60.1% for the case 2. Conclusion: This study demonstrated that adipose derived stromal vascular fraction cells have osteogenic potential in two clinical case studies. Thus, these reports show that cells from the SVF cells have potential in many areas of clinical cell therapy and regenerative medicine, albeit a lot of work is yet to be done.
Kim, Hyung-Syup;Lee, Hyung-Jin;Yeu, In-Seung;Yi, Jin-Seok;Yang, Ji-Ho;Lee, Il-Woo
Journal of Korean Neurosurgical Society
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제44권4호
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pp.249-255
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2008
Objective : In Moyamoya disease, the primary goal of treatment is to improve collateral circulation through angiogenesis. In the present study, we obtained and sub-cultured bone marrow stromal cells (BMSCs) from rats without a cell-mediated immune response. Then, we injected the labeled BMSCs directly into adjacent temporal muscle during encephalomyosynangiosis (EMS). Three weeks after BMSC transplantation, we examined the survival of the cells and the extent of neovascularization. Methods : We divided 20 rats into a BMSC transplantation group (n=12) and a control group (n=8). Seven days after the induction of chronic cerebral ischemia, an EMS operation was performed, and labeled BMSCs ($1{\times}106^6/100\;{\mu}L$) were injected in the temporal muscle for the transplantation group, while an equivalent amount of culture solution was injected for the control group. Three weeks after the transplantation, temporal muscle and brain tissue were collected for histological examination and western blot analysis. Results : The capillary/muscle ratio in the temporal muscle was increased in the BMSC transplantation group compared to the control group, showing a greater increase of angiogenesis (p<0.05). In the brain tissue, angiogenesis was not significantly different between the two groups. The injected BMSCs in the temporal muscle were vascular endothelial growth factor (VEGF)-positive by immunofluorescence staining. In both temporal muscle and brain tissue, the expression of VEGF by western blot analysis was not much different between the two groups. Conclusion : During EMS in a chronic cerebral ischemia rat model, the injection of BMSCs resulted in accelerated angiogenesis in the temporal muscle compared to the control group.
조직공학적 지지체에서의 골수유래 간엽줄기세포의 점착과 성장에 있어서 세포 점착성 단백질과 폴리펩타이드와의 상호작용을 조사하였다. 세포 점착성 물질로 알려진 단백질이나 폴리펩타이드는 락타이드-글리콜라이드 공중합체인 PLGA 필름과 지지체에 흡착하여 코팅되었으며, 이에 골수유래 간엽줄기 세포의 점착과 성장 거동을 비교하였다. 이들 단백질과 폴리펩타이드는 콜라겐 IV형과 피브리노겐, 라미닌, 젤라틴, 피브로넥틴, 폴리(L-라이신)이 사용되었다. 이중 폴리(L-라이신)을 제외한 단백질과 폴리펩타이드는 PLGA 필름 표면에 거의 단층으로 덮어져 흡착되었으며, PLGA 필름과 지지체에서 골수유래 간엽줄기세포가 1일과 2일, 4일간 배양되었다. 세포의 점착과 성장 거동은 sulforhodamine B법으로 평가하였다. PLGA 필름과 지지체에 단백질이나 폴리펩타이드가 흡착되지 않은 표면보다는 흡착된 표면에서의 세포의 점착과 성장이 우수하였다.
Kim, Mi-Ri;Yang, Won-Kyung;Grzesik, Wojciech;Ko, Hyun-Jung
International Journal of Oral Biology
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제33권3호
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pp.113-116
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2008
Cementum is the mineralized tissue of the tooth. It is similar to bone in several aspects but it differs from bone. Human bone marrow stromal cells (BMSC) and human cementum derived cells (HCDC) (10,000 $cells/cm^2$) were plated in 6 well plates as feeder cells. The next day, mouse bone marrow cells (1.5 million $cells/cm^2$) were added. One group of these plates were incubated in serum-free conditioned medium (SFCM) generated from BMSC or HCDC supplemented with 2% FBS, parathyroid hormone (PTH), 1, 25 dihydroxyvitamin $D_3$ (Vit. $D_3$) and dexamethasone, or plain medium with the same supplements. Another group of plates were cocultured with BMSC or HCDC in plain medium supplemented with 2% FBS, PTH, Vit. $D_3$ and dexamethasone. Plates grown without SFCM or coculture were used as controls. After 10 days, the cells were stained for tartrate-resistant acid phosphatase (TRAP). BMSC were found to support osteoclast formation under normal conditions. This was inhibited however by both SFCM generated from HCDC and also by coculture with HCDC. In addition, HCDC themselves did not support osteoclast formation under any conditions. Our results thus indicate that HCDC do not support osteoclast formation in vitro and that soluble factor (s) from HCDC may inhibit this process. In addition, we show that this inhibition also involves an active mechanism that is independent of osteoprotegerin, a feature that may distinguish cementoblasts from other cells present in periodontium.
Park, Ki-Suk;Jin Chae-Moon;Kim, Soon-Hee;Rhee John M.;Khang Gil-Son;Han, Chang-Whan;Yang, Yoon-Sun;Kim, Moon-Suk;Lee, Hai-Bang
Macromolecular Research
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제13권4호
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pp.285-292
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2005
We developed alginate beads loaded with transforming growth $factor-{\beta}_{1}(TGF-{\beta}_{1})$ to examine the possible application of the scaffold and cytokine carrier in tissue engineering. In this study, bone marrow stromal cells (BMSCs) and $TGF{\beta}_{1}$ were uniformly encapsulated in the alginate beads and then cultured in vitro. The cell morphology and shape of the alginate beads were observed using inverted microscope, scanning electron microscope (SEM), histological staining and RT-PCR to confirm chondrogenic differentiation. The amount of the $TGF{\beta}_{1}$ released from the $TGF-{\beta}_{1}$ loaded alginate beads was analyzed for 28 days in vitro in a phosphate buffered saline (pH 7.4) at $37^{\circ}C$. We observed the release profile of $TGF-{\beta}_{1}$ from $TGF-{\beta}_{1}$ loaded alginate beads with a sustained release pattern for 35 days. Microscopic observation showed the open cell pore structure and abundant cells with a round morphology in the alginate beads. In addition, histology and RT-PCR results revealed the evidence of chondrogenic differentiation in the beads. In conclusion, these results confirmed that $TGF-{\beta}_{1}$ loaded alginate beads provide excellent conditions for chondrogenic differentiation.
Purpose: Major drawbacks of conventional bone marrow stromal cells (BSCs) transplantation method are mainly caused by direct transplanted cell to host cell interactions. We hypothesized that separation of the transplanted cells by a microporous membrane might inhibit most of the potential adverse effects and induce superior effect. The purpose of the study is to determine the optimal condition of the microporous membrane. Methods: First, BSCs were placed in polyethylene terephthalate (PET) transwell inserts with 3, 8, or $12{\mu}m$ pore size, and cultured in 24 well culture plates. After 5 days, bottoms of the plates were observed for presence of attached BSCs in monolayer and cell numbers were evaluated. Second, BSCs were placed PET, polycarbonate (PCT), and mixed cellulose esters (MCE) transwell inserts with 3 and $8{\mu}m$ pore size, and cultured in 24 well culture plates. After 3 days, the supernatants of the media left in culture plate were analyzed for collagen, vascular endothelial growth factor (VEGF), platelet derived growth factor BB (PDGF-BB), and basic fibroblast growth factor (bFGF). Third, BSCs were placed in 15% and 70% of the PET membrane with $3{\mu}m$ pore size. All the experimental conditions and methods were same as the second study. Results: The optimal pore sizes to prevent BSC leakage were $3{\mu}m$ and $8{\mu}m$. The amounts of type I collagen and three growth factors tested did not show significant differences among PET, PCT, and MCE groups. However, the collagen, VEGF, and bFGF levels were much higher in the high (70%) density group than in the low (15%) density group. Conclusion: This study revealed that the optimal pore size of membrane to prevent direct BSC to recipient cell contact is in between $3{\mu}m$ and $8{\mu}m$. Membrane materials and pore sizes do not influence the collagen and growth factor passage through the membrane. The most striking factor for collagen and growth factor transport is pore density of the membrane.
A thymic stromal cell line, TFGD, was established from a thymic tumor mass developed spontaneously in p53 knock out mouse, and was found to produce cytokines that could induce bone marrow hematopoietic stem cells (HSCs) to differentiate into macrophages. The cytokines produced by the TFGD line were assessed by immunoassays. High level of macrophage-colony stimulating factor (M-CSF) and interleukin (IL)-6 was detected in the TFGD-culture supernatant, whereas granulocyte/macrophage-colony stimulating factor (GM-CSF), IL-3, IL-4, IL-5, IL-13, or interferon (IFN)-$\gamma$ was undetectable. Blocking experiments showed that anti-M-CSF monoclonal antibody could neutralize the differentiation-inducing activity shown by the TFGD-culture supernatant. Dot blot analysis of the total RNA isolated from the cultured fetal thymic stromal cells showed that M-CSF transcripts were expressed in the normal thymus. These observations, together with the earlier finding that M-CSF plus IL-6 is the optimal combination of cytokines for the induction of macrophage differentiation from HSCs in vitro, may indicate that thymic macrophages could be generated within the thymus by cytokines involving M-CSF.
AdBMP-2와 AdBMP-7을 형질도입 시킨 사람 섬유아세포와 사람 골수기질세포를 면역결핍 생쥐의 척추 옆 근육으로 주입하여 척추 유합을 유도한 결과, AdBMP-7/BMSC가 AdBMP-2/BMSC 또는 AdBMP-7/HuFb와 AdBMP-2/HuFb 보다 골 형성능이 우수하였으며, 척추 유합을 잘 유도하였음을 확인하였다.
BACKGROUND: Mesenchymal stromal cells (MSCs) are multipotent stem cells that can differentiate into several cell types. In addition, many studies have shown that MSCs modulate the immune response. However, little information is currently available regarding the maintenance of immunomodulatory characteristics of MSCs through passages. Therefore, we investigated and compared cytokine and gene expression levels from adipose (AD) and bone marrow (BM)-derived MSCs relevant to immune modulation from early to late passages. METHODS: MSC immunophenotype, growth characteristics, cytokine expressions, and gene expressions were analyzed. RESULTS: AD-MSCs and BM-MSCs had similar cell morphologies and surface marker expressions from passage 4 to passage 10. Cytokines secreted by AD-MSCs and BM-MSCs were similar from early to late passages. AD-MSCs and BM-MSCs showed similar immunomodulatory properties in terms of cytokine secretion levels. However, the gene expressions of tumor necrosis factor-stimulated gene (TSG)-6 and human leukocyte antigen (HLA)-G were decreased and gene expressions of galectin-1 and -3 were increased in both AD- and BM-MSCs with repeated passages. CONCLUSION: Our study showed that the immunophenotype and expression of immunomodulation-related cytokines of AD-MSCs and BM-MSCs immunomodulation through the passages were not significantly different, even though the gene expressions of both MSCs were different.
Despite high interests on microenvironmental regulation of leukemic cells, little is known for bone marrow (BM) niche in leukemia patients. Our recent study on BMs of acute myeloid leukemia (AML) patients showed that the mesenchymal stromal cells (MSCs) are altered during leukemic conditions in a clinical course-dependent manner. Leukemic blasts caused reprogramming of transcriptomes in MSCs and remodeling of niche cross-talk, selectively suppressing normal primitive hematopoietic cells while supporting leukemogenesis and chemo-resistance. Notably, differences in BM stromal remodeling were correlated to heterogeneity in subsequent clinical courses of AML, i.e., low numbers of mesenchymal progenitors at initial diagnosis were correlated to complete remission for 5-8 years, and high contents of mesenchymal progenitor or MSCs correlated to early or late relapse, respectively. Thus, stromal remodeling by leukemic cell is an intrinsic part of leukemogenesis that can contribute to the clonal dominance of leukemic cells over normal hematopoietic cells, and can serve as a biomarker for prediction of prognosis. [BMB Reports 2015; 48(8): 427-428]
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[게시일 2004년 10월 1일]
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