H2 generation from renewable sources is crucial for ensuring sustainable production of energy. One approach to achieve this goal is biohydrogen production by utilizing renewable resources such as biomass and microorganisms. In contrast to commercial methods, biohydrogen production needs ambient temperature and pressure, thereby requiring less energy and cost. Biohydrogen production can reduce greenhouse gas emissions, particularly the emission of carbon dioxide (CO2). However, it is also associated with significant challenges, including low hydrogen yields, hydrodynamic issues in bioreactors, and the need for H2 separation and purification methods to obtain high-purity H2. Various technologies have been developed for hydrogen separation and purification, including cryogenic distillation, pressure-swing adsorption, absorption, and membrane technology. This review addresses important experimental developments in dense polymeric membranes for biohydrogen purification.
Antifungal effect of Ginkgo biloba leaves extracts conducted for Pityrosporum ovale. Antifungal effect verified by diffusion test, optical density test and colony counting test under various concentration. Extract of ginkgo biloba leaves performed with 40% ethanol and 60% water solution at $60^{\circ}C$ and major components analyzed by HPLC. The concentrated extract have bilobalide and ginkgolide A and ginkgolide B and their concentration were 153.0 mg/L, 8403.5 mg/L and 2723.0 mg/L respectively. Ginkgo biloba leaves extracts gave 99.1% of antifungal effect for Pityrosporum ovale examined by colony counting method.
Geumhee, Kim;Jiho, Lee;Hyoju, Yang;Yun-Yeong, Lee;Yoonyong, Yang;Sungho, Choi;Moonsuk, Hur;Byounghee, Lee;Kyung-Suk, Cho
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.50
no.4
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pp.557-562
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2022
In this study we evaluated biohydrogen production potential as operational parameters (substrate, salt concentration, and temperature) using eight inoculum sources. While the volumetric biohydrogen production rate was significantly affected by temperature and inoculum sources, substrate and salt concentration did not have a significant effect on the biohydrogen production. Mesophilic temperature (37℃) was also found more appropriate for the hydrogen production than thermophilic temperature (50℃). Rate, while the eight inoculum sources, anaerobic digestion sludge exhibited the fastest biohydrogen production. The maximum production rate from anaerobic digestion sludge was 2,729 and 1,385 ml-H2·l-1·d-1 at mesophilic and thermophilic temperature, respectively.
Lignocellulosic materials are commonly used in bio-$H_2$ production for the sustainable energy resource development as they are abundant, cheap, renewable and highly biodegradable. In the process of the bio-$H_2$ production, the pretreated lignocellulosic materials are firstly converted to monosaccharides by enzymolysis and then to $H_2$ by fermentation. Since the structures of lignocellulosic materials are rather complex, the hydrolysates vary with the used materials. Even using the same lignocellulosic materials, the hydrolysates also change with different pretreatment methods. It has been shown that the appropriate hydrolysate compositions can dramatically improve the biological activities and bio-$H_2$ production performances. Over the past decades, hydrolysis with respect to different lignocellulosic materials and pretreatments has been widely investigated. Besides, effects of the hydrolysates on the biohydrogen yields have also been examined. In this review, recent studies on hydrolysis as well as their effects on the biohydrogen production performance are summarized.
A laboratory experiment was performed to investigate nitrogen removal by the soil column. The addition of 20% waste oyster shell to the soil accelerated nitrification in soil column. The $NO_3^--N$ concentration in the effluent decreased with the decrease of HRT(Hydraulic Retention Time). When methanol and glucose added as carbon sources, the average removal rates of T-N(Total Nitrogen) were 82% and 77.9%, respectively. The $NO_3^--N$ removal by methanol supplementation in soil column can likely be attributed to denitrification. In continuous removal of nitrogen using the soil column, the COD(Chemical Oxygen Demand) and $NH_4^+-N$ removed simultaneously in organic matter decomposing column. The greater part of $NH_4^+-N$ was nitrified by the percolated through nitrification column, and the little $NH_4^+-N$ was found in the effluent. The T-N of 87.4% removed at HRT of 36 hrs in denitrfication column. Because of nitrified effluents from nitrification column are low in carbonaceous matter, an external source of carbon is required.
A optimal condition for the Ginkgo biloba extraction in ethanol and water binary solvent system has been proposed based on concentration of bilobalide and ginkgolide known as having a antimicrobial components in the range 5% to 70% ethanol in water at $80^{\circ}C$. Concentration of bilobalide as a single component of Ginkgo biloba leaves extract is the highest at the 60% ethanol and ginkgolide A and B is highest at 50% ethanol. Antimicrobial effect of Ginkgo biloba leaves extracts on the S. aureus was also examined by disc diffusion test and optical density test. In case of the disc diffusion test, the clean zone diameter was increased from 0.95 cm to 1.70 cm as ethanol concentration increased from 5 to 70%. However, over the 40% of ethanol concentration the antimicrobial effect was almost flat. Based on these results, we propose that the 40% of ethanol and 60% water solvent is most desirable for Ginkgo biloba extract considering vapor pressure problem in concentrating process after extraction. We introduced SEM and TEM to figure out the morphological change on the surface and inside body of S. aureus when Ginkgo biloba leaves extract was treated. After mixed with Ginkgo biloba leaves extract blast like blebs appeared on the surface of S. aureus cells and cell wall was not observed. From the these results, it seems that the Ginkgo biloba leaves extract including bilobalide and ginkgolide A, B prevent cell wall synthesis.
Biohydrogen production from food waste via dark fermentation was conducted by using mixed culture under various environmental conditions (initial pH, initial F/M ratio, initial ferrous iron ($Fe^{2+}$), and temperature condition) in batch reactor. The results revealed that the maximum hydrogen yield of $46.19mL\;H_2/g\;COD_{add}$ was achieved at the optimal conditions (initial pH 8.0, initial F/M ratio 4.0, initial iron concentration 100 mg $FeSO_4/L$ and thermophilic condition ($55{\pm}1^{\circ}C$)). Furthermore, major volatile fatty acid (VFA) productions of butyrate (765.66 mg/L) and acetate (324.69 mg/L) were detected and COD removal efficiency was detected at 66.00%. Therefore, these optimal conditions could be recommended to operate a system.
In the present study, the biomass productivity of two green microalgae (Chlorella sp. and Dunaliella salina DCCBC2) were assessed in a 12 L tubular photobioreactor under optimum culture conditions. In the batch culture optimization process, the Chlorella sp. biomass was obtained as 1.2 g/L under atmospheric air as a sole $CO_2$ source and other culture conditions as follows: light intensity, temperature, pH, $NH_4Cl$ and $K_2HPO_4$ were 100 ${\mu}E/m^2/s$, $27^{\circ}C$, 7.0, 20.0 mM and 2.0 mM, respectively. On the other hand, 2.9 g/L of D. salina DCCBC2 biomass production was observed under the following conditions: light intensity, temperature, pH, $KNO_3$ and $K_2HPO_4$were 80 ${\mu}E/m^2/s$, $27^{\circ}C$, 8.0, 3.0 mM and 0.025 mM, respectively. At 1% $CO_2$ supply to the reactor, the Chlorella sp. production was reached 1.53 g/L with 25% increment under the same operating conditions. In addition, the maximum D. salina DCCBC2 biomass was observed as 3.40 g/L at 3% $CO_2$ concentration. Based on the aforementioned optimized conditions, the dilution rate and maximal biomass productivity of Chlorella sp. and D. salina DCCBC2 in the continuous cultivation were 0.4/d and 0.6 g/L/d and 0.6/d and 1.5 g/L/d, respectively.
Sang Hyun Kim;Hyun Joong Kim;Su Hyun Kim;Hee Ju Jung;Byungchan Kim;Do-Hyun Cho;Jong-Min Jeon;Jeong-Jun Yoon;Sang-Hyoun Kim;Jeong-Hoon Park;Shashi Kant Bhatia;Yung-Hun Yang
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.33
no.5
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pp.687-697
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2023
Identification of novel, electricity-producing bacteria has garnered remarkable interest because of the various applications of electricigens in microbial fuel cell and bioelectrochemical systems. Shewanella marisflavi BBL25, an electricity-generating microorganism, uses various carbon sources and shows broader sugar utilization than the better-known S. oneidensis MR-1. To determine the sugar-utilizing genes and electricity production and transfer system in S. marisflavi BBL25, we performed an in-depth analysis using whole-genome sequencing. We identified various genes associated with carbon source utilization and the electron transfer system, similar to those of S. oneidensis MR-1. In addition, we identified genes related to hydrogen production systems in S. marisflavi BBL25, which were different from those in S. oneidensis MR-1. When we cultured S. marisflavi BBL25 under anaerobic conditions, the strain produced 427.58 ± 5.85 µl of biohydrogen from pyruvate and 877.43 ± 28.53 µl from xylose. As S. oneidensis MR-1 could not utilize glucose well, we introduced the glk gene from S. marisflavi BBL25 into S. oneidensis MR-1, resulting in a 117.35% increase in growth and a 17.64% increase in glucose consumption. The results of S. marisflavi BBL25 genome sequencing aided in the understanding of sugar utilization, electron transfer systems, and hydrogen production systems in other Shewanella species.
Hydrogen is considered as an energy source for the future due to its environmentally friendly use in fuel cells. A promising way is the biological production of hydrogen by fermentation. In this study, the optimization of medium conditions which maximize hydrogen production from Enterobacter aerogenes KCCM 40146 were determined. As a result, the maximum attainable cumulative volume of hydrogen was 431 $m{\ell}$ under the conditions of 0.5M potassium phosphate buffer, pH 6.5 medium containing 30 g/L glucose. The best nitrogen sources were peptone and tryptone for the cell growth as well as hydrogen production. The control of cell growth rate was found to be a important experimental parameter for effective hydrogen production
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[게시일 2004년 10월 1일]
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