Using Bacillus subtilis spore display system, with cotG as an anchoring motif, levansucrase from Zymomonas mobilis, was displayed on the outer surface of Bacillus subtilis spore. Flow cytometry of DB104 (pSDJH-cotG-levU) spore, proved the surface localization of CotG-LevU fusion protein on the spore compared to that of DB104. Enzymatic activity of DB104 (pSDJH-cotG-levU) spore showed more than 1.5 times higher levansucrase specific activity compared to that of the host spore, which is a remarkable increase of enzymatic activity considering the existence of sacA (sucrase) and sacB (levansucrase) in the Bacillus subtilis chromosome. The spore integrity, revealed by sporulation frequency test after heat and lysozyme treatment of spore, did not changed at all in spite of the CotG-LevU fusion protein incorporation into the spore coat layer during spore formation process. These data prove again that Bacillus subtilis spore could be considered as good live immobilization vehicle for efficient bioconversion process.
Using tetrameric ${\beta}$-galactosidase as a model protein, anchoring motives were screened in Bacillus subtilis spore display system. Eleven spore coat proteins were selected considering their expression levels and the location in the spore coat layer. After chromosomal single-copy homologous integration in the amyE site of Bacillus subtilis chromosome, cotE and cotG were chosen as possible spore surface anchoring motives with their higher whole cell ${\beta}$-galactosidase activity. PAGE and Wester blot of extracted fraction of outer layer of purified spore, which express CotE-LacZ or CotG-LacZ fusion verified the existence of exact size of fusion protein and its location in outer coat layer of purified spore. ${\beta}$-galactosidase activity of spore with CotE-LacZ or CotG-LacZ fusion reached its highest value around 16~20 h of culture time in terms of whole cell and purified spore. After intensive spore purification with lysozyme treatment and renografin treatment, spore of BJH135, which expresses CotE-LacZ, retained only 1~2% of its whole cell ${\beta}$-galactosidase activity. Whereas spore of BJH136, which has cotG-lacZ cassette in the chromosome, retained 10~15% of its whole cell ${\beta}$-galactosidase activity, proving minor perturbation of CotG-LacZ, when incorporated in the spore coat layer of Bacillus subtilis compared to CotE-LacZ. Usage of Bacillus subtilis WB700, of which 7 proteases are knocked-out and thereby resulting in 99.7% decrease in protease activity of the host, did not prevent the proteolytic degradation of spore surface expressed CotG-LacZ fusion protein.
Kim, Jung-Hyung;Roh, Chang-Hyun;Lee, Chang-Won;Kyung, Do-Hyun;Choi, Soo-Keun;Jung, Heung-Chae;Pan, Jae-Gu;Kim, Byung-Gee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제17권4호
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pp.677-680
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2007
To analyze a cotG-based Bacillus subtilis spore display system directly, $GFP_{UV}$ was expressed on the surface of Bacillus subtilis spores. When $GFP_{UV}$ was fused to the C-terminal of the cotG structural gene and expressed, the existence of a $CotG-GFP_{UV}$ fusion protein on the B. subtilis spore was confirmed by flow cytometry confocal microscopic analysis. When the cotG anchoring motif was deleted, no fluorescence emission was observed under flow cytometry and confocal microscopic analysis from the purified spore, confirming the essential role of CotG as an anchoring motif. This $GFP_{UV}$ displaying spore might be used for another signaling application triggered by intracellular or extracellular stimuli.
Nitrilase is a valuable hydrolase that catalyzes nitriles into carboxylic acid and ammonia. Its applications, however, are severely restricted by the harsh conditions of industrial reaction processes. To solve this problem, a nitrilase from Acidovorax facilis 72W was inserted into an Escherichia coli-Bacillus subtilis shuttle vector for spore surface display. Western blot, enzyme activity measurements and flow cytometric analysis results all indicated a successful spore surface display of the CotB-nit fusion protein. In addition, the optimal catalytic pH value and temperature of the displayed nitrilase were determined to be 7.0 and $50^{\circ}C$, respectively. Moreover, results of reusability tests revealed that 64% of the initial activity of the displayed nitrilase was still retained at the $10^{th}$ cycle. Furthermore, hydrolysis efficiency of upscale production of cyanocarboxylic acid was significantly higher in the displayed nitrilase-treated group than in the free group expressed by E. coli (pET-28a-nit). Generally, the display of A. facilis 72W nitrilase on the spore surface of Bacillus subtilis may be a useful method for immobilization of enzyme and consequent biocatalytic stabilization.
Agrochemicals for the plant-disease control are criticized severely for causing environmental pollution and residual problems, and consequently microbial disease control agents are expected to be safer and more economical for sustainable agriculture. Treatment of biological control agents to seed requires the use of effective delivery systems that allow full expression of the benefical qualities of the bioprotectant. For the activation and establishment of bioprotectant around the plant seed which are able protect the seeds and seedlings from pathogen attack, the optimal liquid coating formulation was obtained using 2% sodium carboxymethyl cellulose (binder), 20% sesame dregs (solid particulate material), and dried spore of Bacillus subtilis YBL-7 (bioprotectants, 10 mg/g of seed). Suppressive of root rot was demonstrated in pot trials with coated kidney bean (Phaseolus vulgaris L.) seeds. Coated seeds with B. subtilis YBL-7 spore in F. solani-infested soil reduced disease incidence by 85% to 90% after 30 days.
Bacillus subtilis spore surface display (BSSD) technology is considered to be one of the most promising approaches for expressing heterologous proteins with high activity and stability. Currently, this technology is used for various purposes, such as the production of enzymes, oral vaccines, drugs and multimeric proteins, and the control of environmental pollution. This paper presents an overview of the latest developments in BSSD technology and its application in protein engineering. Finally, the major limitations of this technology and future directions for its research are discussed.
Park, Jong-Hwa;Kim, Wooil;Lee, Yong-Suk;Kim, June-Hyung
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제29권9호
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pp.1383-1390
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2019
In this study, we expressed cotA laccase from Bacillus subtilis on the surface of B. subtilis spores for efficient decolorization of synthetic dyes. The cotE, cotG, and cotY genes were used as anchoring motifs for efficient spore surface display of cotA laccase. Moreover, a $His_6$ tag was inserted at the C-terminal end of cotA for the immunological detection of the expressed fusion protein. Appropriate expression of the CotE-CotA (74 kDa), CotG-CotA (76 kDa), and CotY-CotA (73 kDa) fusion proteins was confirmed by western blot. We verified the surface expression of each fusion protein on B. subtilis spore by flow cytometry. The decoloration rates of Acid Green 25 (anthraquinone dye) for the recombinant DB104 (pSDJH-EA), DB104 (pSDJH-GA), DB104 (pSDJH-YA), and the control DB104 spores were 48.75%, 16.12%, 21.10%, and 9.96%, respectively. DB104 (pSDJH-EA) showed the highest decolorization of Acid Green 25 and was subsequently tested on other synthetic dyes with different structures. The decolorization rates of the DB104 (pSDJH-EA) spore for Acid Red 18 (azo dye) and indigo carmine (indigo dye) were 18.58% and 43.20%, respectively. The optimum temperature for the decolorization of Acid Green 25 by the DB104 (pSDJH-EA) spore was found to be $50^{\circ}C$. Upon treatment with known laccase inhibitors, including EDTA, SDS, and $NaN_3$, the decolorization rate of Acid Green 25 by the DB104 (pSDJH-EA) spore decreased by 23%, 80%, and 36%, respectively.
Currently, enzymatic synthesis of lactulose, a synthetic prebiotic disaccharide, is commonly performed with glycosyl hydrolases. In this work, a new type of lactulose-producing biocatalyst was developed by displaying β-galactosidase from Bacillus stearothermophilus IAM11001 (Bs-β-Gal) on the surface of Bacillus subtilis 168 spores. Localization of β-Gal on the spore surface as a fusion to CotX was verified by western blot analysis, immunofluorescence microscopy, and flow cytometry. The optimum pH and temperature for the resulting spore-displayed β-Gal was 6.0 and 75℃, respectively. Under optimal conditions, it showed maximum activity of 0.42 U/mg spores (dry weight). Moreover, the spore-displayed CotX-β-Gal was employed as a whole cell biocatalyst to produce lactulose, yielding 8.8 g/l from 200 g/l lactose and 100 g/l fructose. Reusability tests showed that the spore-displayed CotX-β-Gal retained around 30.3% of its initial activity after eight successive conversion cycles. These results suggest that the CotX-mediated spore-displayed β-Gal may provide a promising strategy for lactulose production.
전 세계적으로 병원성 미생물에 의한 오염과 감염 및 발병의 사례가 급증함에 따라 병원성 미생물을 효율적으로 제어하는 기술에 대한 관심이 매우 증가하고 있다. 병원성 미생물을 환경에서 제어하는 연구는 대다수 수처리 공정과 같이 물에서 이루어지는 소독과 관련되어 진행되어 왔고, 표면에서의 소독에 관련된 연구는 매우 부족하였다. 본 연구는 UV 소독 방법을 표면에 분포된 미생물의 불활성화에 대해서 적용하여 살펴보았고, 소독 모델을 통해서 정량화하였다. 특히, 생물테러용 무기로 잘알려진 탄저균(Bacillus anthracis)의 지표 미생물인 바실러스 포자(Bacillus subtilis spore)에 대해서 UV를 이용한 표면 소독시 매우 빠른 불활성화를 볼 수 있었으며, 2 log(99%) 불활성화를 위한 IT 값은 14.5 $mJ/cm^2$으로 나타났다. UV에 의한 미생물 불활성화는 화학적 소독제의 경우와 달리 온도에 의한 영향은 나타나지 않았으나, 표면 거칠기(surface roughness)에 의한 뚜렷한 tailing off 현상이 나타났다.
Biological control of soilborne plant pathogens by the addition of antagonistic microorganisms to the soil may offer a practical supplement or alternative to existing disease management strategies that depend heavily on chemical pesticides. Soil amendment with antagonistic microbes was non-effective because of high cost, low efficacy, and inconvenient usage on the treatment course. Therefore, seed coating formulation for the application of biological seed treatments has been being to apply successful disease suppression for many important crops. The objectives of this study were to investigate the optimal condition for the spore production of biocontrol agent Bacillus subtilis YBL-7 and the liquid coating formulation that contained a suspension of a proper aqueous binder, as well as a ground fine solid particulate material. The maximum yield has been obtained from 60 hrs-old culture at 30$\circ$C in spore forming (SF) medium containing 0.8% nutrient broth, 0.05% yeast extract, 10$^{-1}$ M MgCl$^{2}$, 10$^{-4}$ M MnCl$^{2}$, 10$^{-5}$ M dipicolinic acid, and pH 6.5. The optimal condition of dried spore preparation was achieved when cells of B. subtilis YBL-7 was heat-dried with 50$\circ$C for 2 hrs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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