Cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) of Bacillus sp. isolated from soil was purified and its enzymological characteristics were investigated. It was found that the production of CGTase reached to the maximum when the strain was cultured in the broth containing 0.1 % albumin, 2% $NH_4Cl$, 2% soluble starch and 0.2% $NH_2PO_4$ for 72 hrs at $37^{\circ}C$. The purity of CGTase was increased by 9.7 folds through purification procedures by the following column chromatography DEAE-cellulose ion exchange chromatography and Sephadex G-100, G-150 gel filtration and its specific activity was 528.0 unit/mg. The optimum pH and temperature for the CGTase activity were 8.0 and $80^{\circ}C$, respectively. The enzyme was stable in pH $8.0{\sim}11.0$ at $60{\sim}80^{\circ}C$. The activity of purified enzyme was inhibited by $Pb^{2+},\;Hg^{2+}$ and $Zn^{2+}$. When CGTase was treated with each 20.5 unit, 41 unit, 205 unit and 410 unit to investigate the transglucosylation to stevioside by purified cyclodextrin glucanotransferase, transglucosylation rate to stevioside was 74.9%, 75.7%, 68.7% and 57.9%. Brown effect was observed above the concentration amounting to 205 unit of our CGTase.
Bacillus amyloliquefaciens K-42, which produces strongly a fibrinolytic enzyme, Was isolated from Ganjang, a traditional Korean soy sauce. The fibrinolytic enzyme was purified to homogeneity by ammonium sulfate fractionation, ion-exchange chromatography on DEAE-Sephadex A-50, gel chromatography on Sephadex G-100, and gel chromatography on Sephadex G-75 of the culture filtrate of Bacillus amyloliquefaciens K42. The purified enzyme showed the specific activity of 59.4 units per milligram, which was increased by 17.1 fold over the culture broth. And the molecular weight of purified fibrinolytic enzyme was confirmed to be about 45,000 Dalton by sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis. The enzyme activity was relatively stable at pH 4.0-10.0 and the optimum pH was 8.0. The activity of the purified enzyme was increased by $Mg^{2+}$ , Cu$^{2+}$ but the enzyme was totally inhibited by $Ba^{2+}$$Hg^{2+}$ In addition, the enzyme activity was potently inhibited by EDTA, EGTA and CDTA. It was concluded that the purified enzyme was a metalloprotease. And Km value was 2.03 mg/ml to fibrin.
About seven hundred bacterial strains were collected from Jeot-Kal, a Korean traditional fermented fishes, in various Korean districts. One of the strains designated JKK238 has its ability to antagonize in vitro the growth of a wide variety of plant pathogenic fungi responsible for diseases of economical importance. The JKK238 strain was isolated from Oh-Jeot, a kind of fermented shrimps, of Kangkyeung in Korea, and was identified as Bacillus subtilis based on its physiological characteristics, fatty acids compositions of cellular wall, and 16S rDNA sequence analysis. We isolated simply antimicrobial lipopeptides (AMLP) by $25\%$ ammonium sulfate precipitation of 3 days-old tryptic soy broth cultures of the JKK238 strain. Further analysis of AMLP revealed that B. subtilis JKK238 produces a wide variety of antifungal lipopeptide isomers from the iturin, fengycin and surfactin families simultaneously. Above results indicate that the JKK238 strain can be added to the limited number B. subtilis strains reported to co-produce the three kinds of lipopeptide families.
This study was perfonned to investigate the possible effect of Bacillus subtilis which is the predominant species of bacteria in Korean soy sauce, soy paste, and Meju (soybean cake) on the growth and aflatoxin production of Aspergillus parasiticus ATCC 15517. The microorganisms were grown in a modified APT broth and incubated at $30^{\circ}C$ for 12 days. Aflatoxins were determined using high performance liquid chromatography (HPLC). A remarkable inhibition of the growth of Aspergillus parasiticus was observed during the incubation period when in the presence of B. subtilis (mixed culture). Dry mycelial weight in the mixed culture was significantly reduced by 85.3% in comparison to the control at the end of the incubation period (p<0.01). Lower levels of aflatoxins were found in the mixed culture than in the monoculture. At the end of the incubation period aflatoxin production was significantly inhibited by more than 50% (p<0.05). These results indicate that B. subtilis mainly inhibites the growth and aflatoxin production of toxigenic Aspergillus in Meju, soy sauce and soy paste. Although its effect on aflatoxin production was less pronounced, we could expect more inhibition by another bacteria related with fermentation in Meju.
Sclerotinia sclerotiorum, a plant pathogenic fungus, can cause serious yield and quality losses in the winter lettuce field. For biological control of S. sclerotiorum, soil-born microorganisms that inhibit the mycelia growth of S. sclerotiorum and Fusarium oxysporum were isolated from diseased soil. Among the isolates, bacterial isolate, GG95, which was identified as Bacillus subtilis according to the morphological, physiological characteristics and by 16S rRNA similarity, showed the highest level of inhibitory activity. The growth conditions for B. subtilis GG95 were optimized in TSB media (pH 7) by culturing at $28^{\circ}C$ for 24 hrs. Maltose or fructose and peptone were selected as the best carbon and nitrogen sources, respectively. Greenhouse experiment was performed to test effectiveness of B. subtilis GG95 in the control sclerotinia rot. Drench application ($1{\times}10^8cfu/mL$, 3 times) of the bacterial culture broth to lettuce showed an effectiveness value of 88%, suggesting that B. subtilis GG95 would be a promising biocontrol agent for control of sclerotinia rot.
The purified antifungal substances produced by Bacillus amyloliquefaciens IUB158-03 was positive to ninhydrin but negative to aniline, suggesting that the antifungal substance could be a peptide. FAB-MS, UV adsorption spectrum, and amino acid composition analysis revealed that the molecular weight of the antifungal substance was 1042 and that maximal adsorption was at 220 nm and 277 nm. The antifungal substance was composed of $Asn_3$, $Gln_2$, $Ser_1$, $Gly_1$, and $Tyr_1$. The composition and structural characteristics of antifungal substance were analysed by $^1H$-NMR spectrum, $^1H$-COSY, HMQC, which revealed that the compound belongs to the iturin A family. Temperature and pH had little effect on the stability of the antifungal substance in the ranges of $-70{\sim}121^{\circ}C$ and pH 6.0~10.0, respectively. It showed strong antibiotic activity against fungi. An in vitro cytotoxicity test using NIH3T3 cell showed that the antifungal substance does not have cytotoxicity. The number of circulating leukocytes and the hematobiological analysis of the mice administered with the antifungal substances was similar to those of the control group, indicating no cytotoxicity in vivo. Therefore, the antifungal substances extracted from culture broth of Bacillus amyloliquefaciens IUB158-03 have future potential as biocontrol agents against plant diseases caused by fungi.
Seo, Dong-Cheol;Ko, Jeong-Ae;Gal, Sang-Won;Lee, Sang-Won
Journal of Life Science
/
v.20
no.3
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pp.403-410
/
2010
In order to produce high-quality fermenting composts, a microorganism was isolated from the natural world. The bacterium has not only in high enzyme activities but also had good antimicrobial activities against phytopathogenic microorganisms. Its cultivating characteristics were then investigated. Bacterium KJ-9, which contains high CMCase, protease and chitinase activities and excellent antimicrobial activities against phytopathogenic microorganisms, was separated from leaf mold and identified as Bacillus licheniformis by two methods: Bergey's Manual of Systematic Bacteriology and API 50 CHL Carbohydrate Test Kit (Bio Merieux, France) using an ATB (Automated Identification) computer system (Bio Merieux, France). Optimal medium for cultivation of B. licheniformis was 2% soluble starch as a carbon source, 0.5% yeast extract as a nitrogen source and 0.05% $MgSO_4{\cdot}7H_2O$. Optimal growth conditions of pH, temperature and shake speed were pH 7.0, $50^{\circ}C$ and 180 rpm, respectively. Culture broth of B. licheniformis KJ-9 cultured for 36~60 hr was effective in fungicidal activities against plant pathogens including Botrytis cinerea, Corynespora cassicola, Fusarium oxysporum, and Rhizoctonia solani.
In this study, one GRAS strain was screened from doenjang, a traditional Korean fermented food, as a microorganism producing amylase due to the formation of a clear zone on the medium including soluble starch. From the analysis of the gene sequence of 16S ribosomal RNA, the strain was identified as Bacillus subtilis and was therefore named Bacillus subtilis CBD2. When the nutrient broth medium was prepared with 3% NaCl, 5% glucose, and the initial medium pH 7.0, the B. subtilis CBD2 showed maximum growth. Among soluble starch, corn starch, maize amylopectin, and wheat starch, soluble starch was the most effective carbon source in the production of amylase by B. subtilis CBD2. The amylase from B. subtilis CBD2 showed the highest activities at pH 8.0 and $50^{\circ}C$, and corn starch was the most proper substrate for the enzyme activity. When corn starch was used as a substrate, the production of sugars through enzyme activity increased for 24 h, and then the enzyme activity became constant.
For the isolation of a plant growth-promoting rhizobacteria, strain YK-5 was selected from approximately 400 thermostable strains isolated from special soil samples. Strain YK-5 produced an antifungal compound, and optimum carbon and nitrogen sources for the production of the antifungal compound were investigated against Aspergillus flavus as a test strain. Modified LB medium containing 1% peptone, 1% yeast extract and 5% black sugar was determined to be the optimal medium for growth and antifungal compound production. Culture broth of strain YK-5 potently inhibited growth of the phytopathogenic fungus Fusarium oxysporum KACC 40052 for 7 days. The plant growth-promotion function of strain YK-5 was tested against radish and rice in pot trials. Leaf number, plant height and root length in YK-5-treated radish markedly exceeded (> 60%) those of untreated radish. Leaf length and white rootlet development were markedly more prominent than in commercially-treated rice plants. Strain YK-5 was determined to be Bacillus subtilis YK-5 by physiological, chemotaxonomical, and phylogenetical analyses.
Xenorhabdus nematophilus sp., an insect-pathogenic bacterium, was newly isolated from Korean entomopathogenic nematode of Steinernema carpocapsae, which can be used as a useful bioinsecticide. Primary and secondary form variants of Xenorhabdus nematophilus were observed when cultured in vitro. Primary form variants adsorbed bromothymol blue, while secondary form did not. However, many other characters of two variants were very similar. The variants were all rod-shaped and cell size was highly variable ranging from 0.5 by 2.0 ${\mu}$m to 1.0 by 5.0 ${\mu}$m. Both produced highly toxic substances and killed the insect larva within 20∼38 hr, indicating that insect pathogenicity of Xenorhabdus is not directly associated with its phase variation. In addition, cell-free culture supernatant of Xenorhabdus was sufficient to kill the insect larva by injecting it ito insect hemolymph; however, cell-harboring culture broth was more effective for killing the insect. The use of Xenorhabdus nematophilus may provide a potential alternative to Bacillus thuringiensis (Bt) toxins.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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