The purpose of this study was to investigate the cause of chronic diarrhea from anaerobic bacteria isolated from Siberian tiger with chronic diarrhea. Major anaerobic bacteria isolated from faces were Clostridium perfringens and their population was $6 {\times} 10^3$ cfu/g feces. Antibiotic sensi- tivity test against Clostridium perfringens was performed using 6 antibiotic drugs including colistin gentamicin, trimethoprim/sulfamethoxazole, amikacin, enofloxacin and penicillin. Clostridium per- fringens were sensitive to amikacin, enrofloxacin and penicillin while they were resistant to colistin. gentamicin and trmetboprim/sulfamethoxazole. And we found that chronic diarrhea of Siberian tiger was treated successfully with penicillin. These results suggested that Clostridium perfringens may bee a cause of chronic diarrhea in Siberian tiger.
The 43-residue defensin-like peptide coprisin, which is isolated from dung bettle, Copris tripartitus, is a potent antimicrobial peptide. In our previous work, we determined the tertiary structure of coprisin and found that alpha helical region of coprisin from residue 19 to residue 30 is important for its antimicrobial activities. Here, we designed cop12mer and cop9mer analogs of coprisin based on the tertiary structure of coprisin. To investigate the relationship between hydrophobicity and antimicrobial activities and develop the potent peptide antibiotics, we designed cop9mer-1 with substitution of $His^2$ with Trp in cop9mer. The results showed that cop9mer-1 has higher toxicities as well as improved antimicrobial activities compared to cop9mer. In order to reduce the toxicity of cop9mer-1, we designed cop9mer-2 and cop9mer-3 with substitution of $Cys^3$ with Lys or Ser. Substitution of $Cys^3$ with these hydrophilic amino acids results in lower cytotoxicities compared to cop9mer-1. Cop9mer-2 with substitution of $Cys^3$ with Lys in Cop9mer-1 showed high antibacterial activities against drug resistant bacteria without cytotoxicity. Antibiotic action of cop9mer-1 analog appears to involve permeabilization of the bacterial cell membrane while cop9mer-2 and cop9mer-3 may have different mechanism of action. These results imply that that optimum balance in hydrophobicity and hydrophilicity in these 9-meric peptides plays key roles in their antimicrobial activities as well as cytotoxicities.
Background: Colistin and carbapenem-resistant bacteria have emerged and become a serious public health concern, but their epidemiological data is still limited. Objectives: This study examined colistin and carbapenem resistance in Escherichia coli and Salmonella from pigs, pig carcasses, and pork in Thailand, Lao PDR, and Cambodia border provinces. Methods: The phenotypic and genotypic resistance to colistin and meropenem was determined in E. coli and Salmonella obtained from pigs, pig carcasses, and pork (n = 1,619). A conjugative experiment was performed in all isolates carrying the mcr gene (s) (n = 68). The plasmid replicon type was determined in the isolates carrying a conjugative plasmid with mcr by PCR-based replicon typing (n = 7). The genetic relatedness of mcr-positive Salmonella (n = 11) was investigated by multi-locus sequence typing. Results: Colistin resistance was more common in E. coli (8%) than Salmonella (1%). The highest resistance rate was found in E. coli (17.8%) and Salmonella (1.7%) from Cambodia. Colistin-resistance genes, mcr-1, mcr-3, and mcr-5, were identified, of which mcr-1 and mcr-3 were predominant in E. coli (5.8%) and Salmonella (1.7%), respectively. The mcr-5 gene was observed in E. coli from pork in Cambodia. Two colistin-susceptible pig isolates from Thailand carried both mcr-1 and mcr-3. Seven E. coli and Salmonella isolates contained mcr-1 or mcr-3 associated with the IncF and IncI plasmids. The mcr-positive Salmonella from Thailand and Cambodia were categorized into two clusters with 94%-97% similarity. None of these clusters was meropenem resistant. Conclusions: Colistin-resistant E. coli and Salmonella were distributed in pigs, pig carcasses, and pork in the border areas. Undivided-One Health collaboration is needed to address the issue.
Acinetobacter is a bacteria found in the environment and clinical specimens, causing nosocomial infection and antimicrobial resistance (AMR) threats. This study examined the prevalence, species, and AMR characteristics of Acinetobacter isolated from surgical practice and the laboratory dog husbandry room environments (n = 235) at Rajamangala University of Technology Tawan-ok veterinary hospital during 2018-2019. The prevalence of Acinetobacter in the laboratory dog husbandry room and veterinary belongings were 2.55% and 0.43%, respectively. Species determination was Acinetobacter hemolyticus (2.13%) and Acinetobacter baumannii (0.43%) from environments in the laboratory dog husbandry room, and Acinetobacter junii (0.43%) from the shoes used in the surgical practice room. AMR was observed in both study environments and the specimens sent to the Veterinary Diagnostic Center. These isolates had a high resistant percentage to amoxicillin-clavulanic acid (84.62%), sulfamethoxazole-trimethoprim (61.54%), and cephalexin (53.85%) but were susceptible to imipenem. Compared to the isolates recovered from the clinical specimens, most isolates derived from environments exhibited multidrug resistance and shared correlated resistance patterns. These results highlight the need for sanitization in the dog husbandry room. Furthermore, the AMR results can be used as a preliminary baseline for studying AMR Acinetobacter contamination in animals and their environments.
Sequence type 410 (ST410) of Escherichia coli is an extraintestinal pathogen associated with multi drug resistance. In this study, we aimed to investigate the horizontal propagation pathway of a high-risk clone of E. coli ST410 that produces Klebsiella pneumoniae carbapenemase (KPC). blaKPC-encoding E. coli and K. pneumoniae isolates were evaluated, and complete sequencing and comparative analysis of blaKPC-encoding plasmids from E. coli and K. pneumoniae, antimicrobial susceptibility tests, polymerase chain reaction, multilocus sequence typing, and conjugal transfer of plasmids were performed. Whole-genome sequencing was performed for plasmids mediating KPC-2 production in E. coli and K. pneumoniae clinical isolates. Strains E. coli CPEc171209 and K. pneumoniae CPKp171210 were identified as ST410 and ST307, respectively. CPEc171209 harbored five plasmids belonging to serotype O8:H21, which is in the antimicrobial-resistant clade C4/H24. The CPKp171210 isolate harbored three plasmids. Both strains harbored various additional antimicrobial resistance genes. The IncX3 plasmid pECBHS_9_5 harbored blaKPC-2 within a truncated Tn4401a transposon, which also contains blaSHV-182 with duplicated conjugative elements. This plasmid displayed 100% identity with the IncX3 plasmid pKPBHS_10_3 from the K. pneumoniae CPKp171210 ST307 strain. The genes responsible for the conjugal transfer of the IncX3 plasmid included tra/trb clusters and pil genes coding the type IV pilus. ST410 can be transmitted between patients, posing an elevated risk in clinical settings. The emergence of a KPC-producing E. coli strain (ST410) is concerning because the blaKPC-2-bearing plasmids may carry treatment resistance across species barriers. Transgenic translocation occurs among carbapenem-resistant bacteria, which may spread rapidly via horizontal migration.
Three hundred lactic acid bacteria isolated from human feces were studied their probiotic characters to develop potential probiotics. The properties were tested on the basis of guideline for probiotic selection protocol such as tolerance for acid or bile salt, thermal stability, antimicrobial, anticancer cell, and antiviral activity. Strain Miny-148 was selected as a potential probiotic bacterium which showed resistance to low pH, bile salts and thermal stability. On the basis of fatty acid profiles and 16S rDNA sequences analysis, the strain was identified as Lactobacillus pentosus (similarity 99.9%). The strain, L. pentosus Miny-148, showed broad antimicrobial spectrum against E. coli O157:H7, Shigella flexneri, Bacillus anthracis, Staphylococcus aureus, E. coli, Vibrio cholerae, V. vulnificus, Salmonella typhimurium, and Methicillin-resistant S. aureus (MRSA). Cell-free culture supernatant of the strain also inhibited against the growth of HT-29 colon cancer cell and transmissible gastroenterits virus.
Acinetobacter baumannii is known for its multidrug antibiotic resistance. New approaches to treating drug-resistant bacterial infections are urgently required. Cathelicidin-related antimicrobial peptide (CRAMP) is a murine antimicrobial peptide that exerts diverse immune functions, including both direct bacterial cell killing and immunomodulatory effects. In this study, we sought to identify the role of CRAMP in the host immune response to multidrug-resistant Acinetobacter baumannii. Wild-type (WT) and CRAMP knockout mice were infected intranasally with the bacteria. CRAMP-/- mice exhibited increased bacterial colony-forming units (CFUs) in bronchoalveolar lavage (BAL) fluid after A. baumannii infection compared to WT mice. The loss of CRAMP expression resulted in a significant decrease in the recruitment of immune cells, primarily neutrophils. The levels of IL-6 and CXCL1 were lower, whereas the levels of IL-10 were significantly higher in the BAL fluid of CRAMP-/- mice compared to WT mice 1 day after infection. In an in vitro assay using thioglycollate-induced peritoneal neutrophils, the ability of bacterial phagocytosis and killing was impaired in CRAMP-/- neutrophils compared to the WT cells. CRAMP was also essential for the production of cytokines and chemokines in response to A. baumannii in neutrophils. In addition, the A. baumannii-induced inhibitor of κB-α degradation and phosphorylation of p38 MAPK were impaired in CRAMP-/- neutrophils, whereas ERK and JNK phosphorylation was upregulated. Our results indicate that CRAMP plays an important role in the host defense against pulmonary infection with A. baumannii by promoting the antibacterial activity of neutrophils and regulating the innate immune responses.
Lee, Young Seob;Lee, Dae Young;An, Tae Jin;Lee, Jeong Hoon;Ahn, Young Sup;Cha, Seon Woo;Mun, Su Hyun;Kang, Ok Hwa;Kwon, Dong Yeul;Han, Sin Hee
Korean Journal of Medicinal Crop Science
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v.22
no.6
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pp.504-509
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2014
Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) is a substantial contributor to morbidity and mortality. In search of a natural products capable of inhibiting this multidrug resistant bacteria, we have investigated the antimicrobial activity of brazilein (BRZ) isolated from Caesalpinia sappan L. (Leguminosae) against 8 different strains of Staphylococcus aureus (S. aureus). New antimicrobial activity was found using the minimum inhibitory concentrations (MICs), broth dilution as well as checkerboard method. Against the 8 strains, the minimum inhibitory concentrations of BRZ were in the range of $62.5-500{\mu}g/mL$. From those results we performed the checkerboard test to determine the synergism of BRZ in combination with Hygromycin-b (HgB) against 4 strains. The combined activity of BRZ and HgB against 4 strains resulted in a fractional inhibitory concentrations index (FICI) ranging from 0.18-0.5. The effect of BRZ with HgB was found to be synergistic. We found that BRZ reduced the MICs of HgB. BRZ and HgB could lead to the development of new combination antibiotics against MRSA infection.
Objectives In this study, we investigated the antimicrobial activity of a 70% ethanol extract of Maneung-hwan (MEH), which is prescribed by practitioners of oriental medicine for use against methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA). Methods The antibacterial activity of MEH against MRSA strains was evaluated using the disc diffusion method, broth microdilution method (minimal inhibitory concentration, MIC), checkerboard dilution test, and time-kill test. The mechanism of action of MEH was investigated by bacteriolysis using detergents or ATPase inhibitors Additionally, mRNA and protein expression were investigated by quantitative reverse transcription-polymerase chain reaction and western blot assay, respectively. Results The MIC of MEH was 25~1,600 ㎍/mL against all the tested bacterial strains. We showed that MEH extract exerts strong antibacterial activity. In the checkerboard dilution test, the fractional inhibitory concentration index of MEH in combination with antibiotics indicated synergism or partial synergism against S. aureus. The time-kill study indicated that the growth of the tested bacteria was considerably inhibited after a 24-h treatment with MEH and selected antibiotics. To measure the cell membrane permeability, MEH (3.9 ㎍/mL) was combined with Triton X-100 (TX) at various concentrations N,N-dicyclohexylcarbodimide (DCCD) was also tested as an ATPase inhibitor. TX and DCCD cooperation against S. aureus exhibited synergistic action. Accordingly, the antimicrobial activity of MEH in the context of cell membrane rupture and ATPase inhibition was assessed. Additionally, the expression of genes and proteins associated with resistance was reduced after exposing MRSA to MEH. Conclusions These results suggest that MEH possesses antibacterial activity and acts as a potential natural antibiotic against MRSA.
Kwon, Young-Nam;Lee, Joon Ha;Kim, In-Woo;Kim, Sang-Hee;Yun, Eun-Young;Nam, Sung-Hee;Ahn, Mi-Young;Jeong, MiHye;Kang, Dong-Chul;Lee, In Hee;Hwang, Jae Sam
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.23
no.10
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pp.1381-1385
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2013
The centipede Scolopendra subpinipes mutilans is a medicinally important arthropod species. However, its transcriptome is not currently available and transcriptome analysis would be useful in providing insight into a molecular level approach. Hence, we performed de novo RNA sequencing of S. subpinipes mutilans using next-generation sequencing. We generated a novel peptide (scolopendrasin II) based on a SVM algorithm, and biochemically evaluated the in vitro antimicrobial activity of scolopendrasin II against various microbes. Scolopendrasin II showed antibacterial activities against gram-positive and -negative bacterial strains, including the yeast Candida albicans and antibiotic-resistant gram-negative bacteria, as determined by a radial diffusion assay and colony count assay without hemolytic activity. In addition, we confirmed that scolopendrasin II bound to the surface of bacteria through a specific interaction with lipoteichoic acid and a lipopolysaccharide, which was one of the bacterial cell-wall components. In conclusion, our results suggest that scolopendrasin II may be useful for developing peptide antibiotics.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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