Cytochrome P4501A2 (CYP1A2) is a member of the cytochrome P450 family of isozymes involved in the phase I drug metabolism of vertebrates. CYP1A2 is responsible for the activation of a number of aromatic amines to mutagenic and carcinogenic forms. Thus, the level of CYP1A2, which varies among different populations, may determine an individual's susceptibility to these chemicals. We have previously reported on the importance of a cis element named PRB (protected region B) in the regulation of human Cytochrome P4501A2 (CYP1A2) gene, which appeared to act as a positive regulatory element. Closer examination of the PRB sequence (-2218 to -2187 bp) revealed a putative AP-1 binding site, TGACTAA, at -2212 bp (Chung and Bresnick, 1997). To elucidate the role of AP-1 in CYP1A2 regulation, we transiently overexpressed c-Jun and c-Fos transcription factors in human hepatoma HepG2 cells, and examined their influence on the CYP1A2 promoter activity by reporter gene assays. Cotransfection of the c-Jun and the c-Fos expression vectors increased the induced transactivation by five to six fold from the CYP1A2 promoter constructs. However, deletion of the PRB element did not affect the degree of activation by the c-Jun and the c-Fos. Therefore, it is unlikely that the c-Jun and the c-Fos activate the CYP1A2 promoter through this AP-1 consensus-like sequence in the PRB region.
Jang, Y. S.;Yoon, D. H.;Kim, T. H.;Cheong, I. C.;Jo, J. K.
Journal of Animal Science and Technology
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v.45
no.2
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pp.169-182
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2003
To understand the structure and regulation of bovine ADRP (Adipocyte Differentiation Related Protein) gene, we have isolated the genomic clone of bovine ADRP and determined its sequence. A genomic Southern blot analysis confirmed that ADRP gene is present as a single copy in bovine genome and the ADRP gene spans 12 kb. Bovine ADRP genomic clone, HwADRPg-1, had 8 exons and 7 introns, and all splicing sites conformed to the GT/AG rule with the exon-intron boundaries located exactly. Analysis of the upstream 649 bp of the sequence of HwADRPg-1 showed that it does not contain any canonical TATAA boxes; however Sp1 binding sites and CAAT boxes are found. The promoter contained potential binding sites for AP-1, AP-2 and several putative transcription factor binding sites. The 5'-flanking region of HwADRPg-1 contained muscle specific transcription activator Myo G and C/EBP (CCAAT/ enhancer binding protein) recognizing site. These results suppose that the Myo G transcription activator regulate the transcription of bovine ADRP gene in muscular tissue and its transcriptional activity was triggered by degree of muscular development. Our results provide the necessary analysis for other flanking sequences are needed in addition to the proximal cis elements of this promoter to confer adipocyte differentiation-dependent or growth-dependent transcriptional control.
The upstream regulatory region (URR) of bovine papillomavirus type 1 (BPV) contains promoters and a conditional transcriptional enhancer that is trans-activated by the viral E2 protein. After deleting the 5' and 3' ends of BPV URR, BamHI linkers were inserted into several positions of BPV URR without causing an addition or a deletion of URR sequences. Most linker scanning mutations did not show any effects on the transcription of P7940 and P89 promoters in BPV URR. However, several mutants showed reduced transcriptional activities. Based on our results we found that the AP-2 and Sp1 binding sites were important for basal level transcription of BPV URR in the absence of the E2 protein and that the CTF/NF-1 site is dispensable for E2 transactivation of BPV URR transcription.
In this study, we have shown the transcriptional regulation of the human GD3 synthase (hST8Sia I) induced by valproic acid (VPA) in human neuroblastoma SK-N-BE(2)-C cells. To elucidate the mechanism underlying the regulation of hST8Sia I gene expression in VPA-stimulated SK-N-BE(2)-C cells, we characterized the promoter region of the hST8Sia I gene. Functional analysis of the 5'-flanking region of the hST8Sia I gene by the transient expression method showed that the -1146 to -646 region, which contains putative binding sites for transcription factors c-Ets-1, CREB, AP-1 and NF-${\kappa}B$, functions as the VPA-inducible promoter of hST8Sia I in SK-N-BE(2)-C cells. Site-directed mutagenesis and electrophoretic mobility shift assay indicated that the NF-${\kappa}B$ binding site at -731 to -722 was crucial for the VPA-induced expression of hST8Sia I in SK-N-BE(2)-C cells. In addition, the transcriptional activity of hST8Sia I induced by VPA in SK-N-BE(2)-C cells was strongly inhibited by SP600125, which is a c-Jun N-terminal kinase (JNK) inhibitor, and $G{\ddot{O}}6976$, which is a protein kinase C (PKC) inhibitor, as determined by RT-PCR (reverse transcription-polymerase chain reaction) and luciferase assays. These results suggest that VPA markedly modulated transcriptional regulation of hST8Sia I gene expression through PKC/JNK signal pathways in SK-N-BE(2)-C cells.
The cats gene encodes the major catalase in Sreptomyces coelicolor, whose production increases upon H$_2$O$_2$treatment. Besides the previously identified primary promoter (catApl), a minor promoter (catAp2) was newly assigned by S1 nuclease mapping. The catAp2 transcript was observed transiently upon entry into the stationary phase in liquid culture and upon differentiation on solid plates, whereas the level of catApl transcription did not chance significantly during this growth transition. ThecatApl promoter was transcribed by the major vegetative RNA polymerase holoenzyme containing $\sigma$$\^$HrdB/, whereas the catAp2 was transcribed in vitro by the holoenzyme containing $\sigma$$\^$R/ that is activated under oxidative conditions. The cia-element regulating the H$_2$O$_2$-inducibility of catApl was identified within the 23 bp inverted repeat sequence located between -65 and -43 of the catApl promoter. We roamed this sequence HRE (H$_2$O$_2$-responsive Element). The distal half of the inverted repeat was more crucial for H$_2$O$_2$-dependent induction of the catApl transcript than the proximal half. HRE most likely serves as a binding site for the H$_2$O$_2$-responsive repressor CatR.
Prolactin (PRL) was reported to be locally synthesized in many brain areas including the hypothalamus, thalamus (TH) and hippocampus (HIP). In the pituitary lactotrophs, PRL synthesis is dependent upon a pituitary-specific transcription factor, Pit-1. In the present study, we attempted to identify Pit-1 or Pit-1-like protein in brain areas known as the synthetic sites of PRL. Reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) and Northern blot analysis showed the same Pit-1 transcripts in brain areas such as the medial basal hypothalamus (MBH), preoptic area (POA), TH, and HIP with the Pit-1 transcripts in the anterior pituitary (AP). Electrophoretic mobility shift assay (EMSA) was run with nuclear protein extracts from brain tissues using a double strand oligomer probe containing a putative Pit-1 binding domain. Shifted bands were found in EMSA results with nuclear proteins from MBH, POA, TH and HIP. Specific binding of the Pit-1-like protein was further confirmed by competition with an unlabeled cold probe. Antisense Pit-1 oligodeoxynucleotide (Pit-1 ODN), which was designed to bind to the Pit-1 translation initiation site and block Pit-1 biosynthesis, was used to test Pit-1 dependent brain PRL transcription. Two nmol of Pit-1 ODN was introduced into the lateral ventricle of a 60-day old male rat brain. RNA blot hybridization and in situ hybridization indicated a decrease of PRL mRNA signals by the treatment of Pit-1 ODN. Taken together, the present study suggests that Pit-1 may play an important role in the transcriptional regulation of local PRL synthesis in the brain.
Abrus agglutinin was purified from the kernels of Abrus precatorius by Sepharose 4B affinity column chromatography followed by Sephadex G-100 gel filtration column chromatography. About 1.25 g of abrus agglutinin was obtained from 1 kg of the kernels. The LD$_{50}$ of abrus agglutinin is 5 mg/kg of body weight, which is less toxic than that of abrin, 20$\mu\textrm{g}$/kg body weight. The amino acid sequence of abrus agglutinin was determined by protein sequencing techniques and deduced from the nucleotide sequence of a cDNA clone encoding full length of abrus agglutinin. There are 258 residues, 2 residues and 267 residues in the A-chain, the linker peptide and the B-chain of abrus agglutinin, respectively. Abrus agglutinin had high homology to abrin-a (77.8%). The 13 amino acid residues involved in catalytic function, which are highly conserved among abrin and ricin, were also conserved within abrus agglutinin. The protein synthesis inhibitory activity of abrus agglutinin ($IC_{50}$/ = 3.5 nM) was weaker than that of abrin-a (0.05 nM). By molecular modeling followed by site-directed mutagenesis showed that Pro199 of abrus agglutinin A-chain located in amphipathic helix H and corresponding to Asn200 of abrin A-chain, can induce bending of helix H. This bending would presumably affect the binding of abrus agglutinin A-chain to its target sequence GpApGpAp, in the tetraloop structure of 285 r-RNA subunit and this could be one of major factors contributing to the relatively weak protein synthesis inhibitory activity and toxicity of abrus agglutinin.n.
Kim, Hyukmin;Kim, Jinsu;Lee, Yoonsoo;Yang, Jaeyeon;Han, Kyuhyung
Molecules and Cells
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v.21
no.2
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pp.261-268
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2006
The Drosophila methuselah (mth) mutant has an approximately 35 percent increase in average lifespan, and enhanced resistance to various forms of stress, including starvation, high temperature, and dietary paraquat. To examine the transcriptional regulation of mth, we used luciferase assays employing Drosophila S2 cells. Two positive control elements were found at -542 ~ -272 (PE1) and +28 ~ +217 (PE2), where putative binding sites for transcription factors including Dorsal (Dl) were identified. Cotransfection of a Dl expression plasmid with a mth-luciferase reporter plasmid resulted in decreased reporter activity. PE1 and PE2, the minimal elements for strong promoter activity, were required for maximal repression by Dl protein. The N-terminal Rel homology domain (RHD) of Dl was not sufficient for repression of mth. We demonstrated by chromatin affinity precipitation (ChAP) assays in S2 cells that Dl bound to the putative PE1 binding site. Unexpectedly, semi-quantitative RT-PCR analysis revealed that the level of mth transcripts was reduced in dl flies. However, the in vivo result support the view that mth expression is regulated by dl, since it is well known that Dl functions as both a transcriptional activator and repressor depending on what other transcription factors are present. These findings suggest that both innate immunity and resistance to stress are controlled by Dl protein.
Cu/Zn superoxide dismutase (SOD1) is a protective enzyme responsible for the dismutat ion of superoxide radicals within the cell by converting superoxide radicals to oxygen and hydrogen peroxide, which is in turn changed to oxygen and water by catalase. Previously, we reported that the panaxadiol (PD) and its ginsenoside $Rb_2$ induced the expression of SOD1 gene through AP2 binding site and its induction. Here, we examined the effect of subfractions of panaxadiol ginsenosides, which were extracted from different parts of ginseng root that possess various ratios of panaxadiol to panaxatriol, on the induction of SOD1 gene expression. To explore this possibility, the upstream regulatory region of SOD1 was linked to the chloramphenicol acetyl transferase (CAT) structural gene and introduced into human hepatoma HepG2 cells. We observed that the transcriptional activation of SOD1 was proportional to the contents ratio of panaxadiol ginsensides. Consistent with this results, the total extract portion prepared from the finely-hairy root, which contains the higher ratio of panaxadiol to panaxatriol about 2.6, increased the SODl transcription about 3 fold. This results suggest that the panaxadiol fraction could induce the SOD1 and total extract of the ginseng finely-hairy root would be a useful material as a functional food for the SOD1 inducer.
To elucidate the mechanism underlying the suppressive regulation of hST8Sia I expression in retinoic acid (RA)-induced SK-MEL-2 cells, we characterized the promoter region of the hST8Sia I gene. Functional analysis of the 5‘-flanking region of the hST8Sia I gene by the transient expression method showed that the -1146 to -646 region, which contains putative binding sites for transcription factors c-Ets-1, CREB, AP-1 and NF-kB, functions as the RA-repressive promoter in SK-MEL-2 cells. Site-directed mutagenesis and ChIP analyses indicated that the NF-kB binding site at -731 to -722 is crucial for the RA-induced repression of hST8Sia I in SK-MEL-2 cells. In addition, the transcriptional activity of hST8Sia I suppressed by RA in SK-MEL-2 cells was strongly inhibited by extracellular signal-regulated protein kinase (ERK) inhibitor U0126 and protein kinase C (PKC) inhibitor GO6976, as determined by RT-PCR and luciferase assay of hST8Sia I promoter containing the -1146 to -646 regions. These results suggest that RA markedly modulates transcriptional regulation of hST8Sia I gene expression through the PKC/ERK signal pathway in SK-MEL-2 cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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