The plasmid pKOneo, containing SV40 transcriptional promoter, has been used in the mouse tumorigenicity assay for oncogene studies. This assay employs a cotransfection of NIG3T3 fibroblast cells with the desired DNA and the plasmid pKOneo. This oncogene assay, however, has been speculated due to the SV40 transcriptional promoter in the plasmid pKOneo. This research was designed to investigate if the plasmid pKOneo alone is capable of transforming NiH3T3 fibroblast cells. The NIH3T3 subclones were established after the NIH3T3 cells were transfected with the plasmid pKOneo alone. The estabilished NIH3T3 subclones, containing the exogeneous plasmid pKOneo in their chromosomes, were examined for their expression of transformation-associated parameters. The results indicate that this plasmid pKOneo alone has positive effects on transformation of NIH3T3 cells after integration into cellular chromosomes.
Jun, Ka-Jung;Lee, Mi-Jin;Shin, Dong-Chul;Woo, Min-Yeong;Kim, Kyong-Min;Park, Sun
IMMUNE NETWORK
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v.11
no.4
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pp.203-209
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2011
Background: T cell immunoglobulin mucin containing molecule (TIM)-3 is expressed in differentiated Th1 cells and is involved in the suppression of the cytokine production by these cells. However, the regulation of the expression of other T cell genes by TIM-3 is unclear. Herein, we attempted to identify differentially expressed genes in cells abundantly expressing TIM-3 compared to cells with low expression of TIM-3. Methods: TIM-3 overexpressing cell clones were established by transfection of Jurkat T cells with TIM-3 expression vector. For screening of differentially expressed genes, gene fishing technology based on reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) using an annealing control primer system was used. The selected candidate genes were validated by semi quantitative and real-time RT-PCR. Results: The transcription of TIMP-1, IFITM1, PAR3 and CCL1 was different between TIM-3 overexpressing cells and control cells. However, only CCL1 transcription was significantly different in cells transiently transfected with TIM3 expression vector compared with control cells. CCL1 transcription was increased in primary human $CD4^+$ T cells abundantly expressing TIM-3 but not in cells with low expression of TIM-3. Conclusion: CCL1 was identified as a differentially transcribed gene in TIM-3-expressing $CD4^+$ T cells.
Understanding the developmental mechanisms of humoral immunity against intranasal antigens is essential for the development of therapeutic approaches against air-borne pathogens as well as allergen-induced pulmonary inflammation. Follicular helper T (Tfh) cells expressing CXCR5 are required for humoral immunity by providing IL-21 and ICOS costimulation to activated B cells. However, the regulation of Tfh cell responses against intranasal antigens remains unclear. Here, we found that the generation of Tfh cells and germinal center B cells in the bronchial lymph node against intranasal proteinase antigens was independent of $TGF-{\beta}$. In contrast, administration of STAT3 inhibitor STA-21 suppressed the generation of Tfh cells and germinal center B cells. Compared with wild-type OT-II T cells, STAT3-deficient OT-II T cells transferred into recipients lacking T cells not only showed significantly reduced frequency Tfh cells, but also induced diminished IgG as well as IgE specific for the intranasal antigens. Cotransfer study of wild-type OT-II and STAT3-deficient OT-II T cells revealed that the latter failed to differentiate into Tfh cells. These findings demonstrate that T cell-intrinsic STAT3 is required for the generation of Tfh cells to intranasal antigens and that targeting STAT3 might be an effective approach to ameliorate antibody-mediated pathology in the lung.
In this study, we aimed to verify the anti-obesity activity of R. acicularis leaves (RAL) and elucidate its mechanism of action in 3T3-L1 preadipocytes. RAL dose-dependently inhibited the accumulation of lipid droplets and triacylglycerol. RAL did not affect cell proliferation and survival in undifferentiated 3T3-L1 cells, but it inhibited cell proliferation in differentiating 3T3-L1 cells. RAL increased ATGL, p-HSL, and HSL, and decreased perilipin-1 in differentiating 3T3-L1 cells. In addition, RAL reduced lipid droplet accumulation and increased free glycerol content in differentiated 3T3-L1 cells. RAL increased ATGL and HSL in differentiated 3T3-L1 cells. Also, RAL increased p-AMPK, PPARγ, UCP-1, and PGC-1α in differentiating 3T3-L1 cells. AMPK inhibition by compound C attenuated RAL-mediated increase of ATGL, HSL, PPARγ, and UCP-1 in 3T3-L1 cells. Taken together, it is thought that RAL may inhibit lipid accumulation through lipolysis and thermogenesis via the activation of AMPK in adipocytes.
Present study was performed to investigate the effect of single and co-culture of adipocyte and muscle cell lines on cell differentiation. 3T3-L1 (adipocyte) and L6 (muscle) cell lines were single-cultured on the condition of 10% fetal bovine serum (FBS)/Dulbeco's modified eagle's medium (DMEM) for 48 h followed by culture within 5% FBS/DMEM as a growth media. Then, the growth media was replaced by differentiation media composed of 2% FBS/DMEM without additives in single- or co-culture of the 3T3-L1 and the L6 cells to induce differentiation of both cell types. In co-culture system, the 3T3-L1 and the L6 cells were grown in separated places by being seeded on a $0.4{\mu}m$ insert membrane and on the bottom of 6 well plate, respectively. Cell differentiation was measured using morphological investigation and cytosolic analysis of glycerol-3-phosphate dehydrogenase (GPDH; for 3T3-L1) and creatine kinase (CK; for L6). Based on the GPDH results, the presence of L6 cells did not stimulate 3T3-L1 differentiation showing more differentiation of 3T3-L1 cells in the single-culture compared to the co-culture condition. In contrast, 3T3-L1 cells in the co-culture promoted differentiation of L6 cells. Enzymatic analysis supported this result showing that 3T3-L1 cells showed statistically (P<0.05) higher GPDH activity in the single-culture than the co-culture, whereas CK results of L6 cells were vice versa (P<0.05). Overall, present results may indicate that co-culture system is more reliable and precise technique compared to single-culture. Further studies on several co-culture trials including different media conditions, supplementation of differentiating substances, molecular biological analysis, etc. should be required to obtain practical and fundamental mass data.
Dendritic cells (DCs) are considered to play major roles during the induction of T cell immune responses as well as the maintenance of T cell tolerance. Naive CD4+ T cells have been shown to respond with high plasticity to signals inducing their polarization into effector/helper or regulatory T cells. Data obtained from in vitro generated bone-marrow (BM)-derived DCs as well as genetic mouse models revealed an important but not exclusive role of DCs in shaping CD4+ T cell responses. Besides the specialization of some conventional DC subsets for the induction of polarized immunity, also the maturation stage, activation of specialized transcription factors and the cytokine production of DCs have major impact on CD4+ T cells. Since in vitro generated BM-DCs show a high diversity to shape CD4+ T cells and their high similarity to monocyte-derived DCs in vivo, this review reports data mainly on BM-DCs in this process and only touches the roles of transcription factors or of DC subsets, which have been discussed elsewhere. Here, recent findings on 1) the conversion of naive into anergic and further into Foxp3- regulatory T cells (Treg) by immature DCs, 2) the role of RelB in steady state migratory DCs (ssmDCs) for conversion of naive T cells into Foxp3+ Treg, 3) the DC maturation signature for polarized Th2 cell induction and 4) the DC source of IL-12 for Th1 induction are discussed.
Background: Toll-like receptors (TLRs) play a fundamental role in innate immunity through their capacity to recognize pathogen-associated molecular patterns. Also, TLRs that are expressed in T cells are reported to function as co-stimulatory receptors. However, the functional capacity of TLRs on CD4 T and CD8 T cells has not been directly compared. Here we compared CD4 and CD8 T cell responses to TLR2 ligand plus TCR-mediated stimulation. Methods: TLR2 expression was analyzed on T cell subsets under naive and alloantigen-primed conditions. We analyzed the effects of TLR2 co-stimulation on proliferation and survival of T cell subsets in vitro when stimulated with soluble anti-CD3 in the presence or absence of synthetic ligand $Pam_3CSK_4$. Results: TLR2 expression on CD8 T cells was induced following activation; this expression was much higher than on CD4 T cells. Thus, the molecule was constitutively expressed on Listeriaspecific memory CD8 T cells. Based on these expression levels, proliferation and survival were markedly elevated in CD8 T cells in response to the TLR2 co-stimulation by $Pam_3CSK_4$ compared with those in CD4 T cells. Conclusion: Our data show that TLR2 co-stimulation is more responsible for proliferation and survival of CD8 T cells than for that of CD4 T cells.
Yang, Jung Yoon;Park, Min Young;Park, Sam Young;Yoo, Hong Il;Kim, Min Seok;Kim, Jae Hyung;Kim, Won Jae;Jung, Ji Yeon
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.19
no.6
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pp.507-514
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2015
Nitric oxide (NO) is important in the regulation of bone remodeling, whereas high concentration of NO promotes cell death of osteoblast. However, it is not clear yet whether NO-induced autophagy is implicated in cell death or survival of osteoblast. The present study is aimed to examine the role of NO-induced autophagy in the MC3T3-E1 cells and their underlying molecular mechanism. The effect of sodium nitroprusside (SNP), an NO donor, on the cytotoxicity of the MC3T3-E1 cells was determined by MTT assay and expression of apoptosis or autophagy associated molecules was evaluated by western blot analysis. The morphological observation of autophagy and apoptosis by acridine orange stain and TUNEL assay were performed, respectively. Treatment of SNP decreased the cell viability of the MC3T3-E1 cells in dose- and time-dependent manner. SNP increased expression levels of p62, ATG7, Beclin-1 and LC3-II, as typical autophagic markers and augmented acidic autophagolysosomal vacuoles, detected by acridine orange staining. However, pretreatment with 3-methyladenine (3MA), the specific inhibitor for autophagy, decreased cell viability, whereas increased the cleavage of PARP and caspase-3 in the SNP-treated MC3T3-E1 cells. AMP-activated protein kinase (AMPK), a major autophagy regulatory kinase, was activated in SNP-treated MC3T3-E1 cells. In addition, pretreatment with compound C, an inhibitor of AMPK, decreased cell viability, whereas increased the number of apoptotic cells, cleaved PARP and caspase-3 levels compared to those of SNP-treated MC3T3-E1 cells. Taken together, it is speculated that NO-induced autophagy functions as a survival mechanism via AMPK activation against apoptosis in the MC3T3-E1 cells.
Electrochemical behaviors of surface modified and MC3T3-E1 cell cultured Ti-30Ta alloys have been investigated using various electrochemical methods. The Ti alloys containing Ta were melted by using a vacuum furnace and then homogenized for 6 hrs at $1000^{\circ}C$. MC3T3-E1 cell culture was performed with MC3T3-E1 mouse osteoblasts for 2 days. The microstructures and corrosion resistance were measured using FE-SEM, XRD, EIS and potentiodynamic test in artificial saliva solution at $36.5{\pm}1^{\circ}C$. Ti-Ta alloy showed the martensite structure of ${\alpha}+{\beta}$ phase and micro-structure was changed from lamellar structure to needle-like structure as Ta content increased. Corrosion resistance increased as Ta content increased. Corrosion resistance of cell cultured Ti-Ta alloy increased predominantly in compared with non cell cultured Ti- Ta alloy due to inhibition of the dissolution of metal ion by covered cell. $R_p$ value of MC3T3-E1 cell cultured Ti-40 Ta alloy showed $1.60{\times}10^6{\Omega}cm^2$ which was higher than those of other Ti alloy. Polarization resistance of cell-cultured Ti-Ta alloy increased in compared with non-cell cultured Ti alloy.
Data stability and leakage power dissipation have become a critical issue in scaled SRAM design. In this paper, an advanced 8T SRAM cell improving the read and write stability of data storage elements as well as reducing the leakage current in the idle mode is presented. During the read operation, the bit-cell keeps the noise-vulnerable data 'low' node voltage close to the ground level, and thus producing near-ideal voltage transfer characteristics essential for robust read functionality. In the write operation, a negative bias on the cell facilitates to change the contents of the bit. Unlike the conventional 6T cell, there is no conflicting read and write requirement on sizing the transistors. In the standby mode, the built-in stacked device in the 8T cell reduces the leakage current significantly. The 8T SRAM cell implemented in a 130 nm CMOS technology demonstrates almost 100 % higher read stability while bearing 20 % better write-ability at 1.2 V typical condition, and a reduction by 45 % in leakage power consumption compared to the standard 6T cell. The stability enhancement and leakage power reduction provided with the proposed bit-cell are confirmed under process, voltage and temperature variations.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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