CJC-50100 is a recombinant hepatitis B virus surface antigen (HBsAg) expressed in yeast. The general pharmacological properties of CJC-50100 were evaluated in mice, rats, dogs and isolated guinea pig ileum. The doses were 0.33~33.3 $\mu$g/kg i.m. for mice and rats and 3.3~9.9 $\mu$g/kg i.v. for dogs. The concentrations of 0.002~0.02 $\mu$g/ml were used for the assay with guinea pig ileum. Intramuscular administration of CJC-50100 at the doses did not alter general behavior and the responses for central nervous system, smooth muscle, gastrointestinal system, cardiovascular and respiratory system, and water and electrolytes excretion. In summary, CJC-50100 had no pharmacological effect in these studies even up to the 100-fold of the expected clinical dose, 20 $\mu$g/man/60 kg.
재조합 효모를 이용한 포도당산화효소의 대량생산 에 관한 기초연구를 실시하였다. 분비신호를 포함한 포도당산화효소 유전자는 Aspergillus niger로부터 polymerase chain reaction을 이용하여 클로닝한후 G GALl과 GALlO promoter를 이용하여 s. cerevi siae strain 2805에서 말현시킨 결과 GALl promoter를 사용한 형질전환체(yGOD1-l)에서 높은 효율 의 효소생성을 나타냈다. 플라스크 배양 결과 1% galactose를 포함한 YEP 배 지 에셔 최고 6 IU/mL 의 포도당산화효소를 생산하였으며 재조합 포도당산 화효소의 세포내 위치를 비교한 결과 A. niger와는 달리 발현된 효소가 80% 이상 배지로 분비됨을 확인하였다. 재조합 포도당산화효소의 열 안정성을 측정한 결과 표준품과 비교하여 $50^{\circ}C$까지 큰 차이를 보이지 않고 높은 활성을 유지하는 것으로 확인되었다.
약용식물내 에스트로겐성과 항-에스트로겐성을 조사하고 항암인자를 발견하기 위하여, 본 연구는 에탄올추출로 제조된 9종류의 한국산 약용식물에 대하여 재조합효모와 MCF-7 사람유방암세포주를 이용하여 스크리닝하고 비교하였다. 재조합효모를 이용한 실험결과, 7종류의 약용식물에서 에스트로겐성이 나타났고, 4종류에서 안드로겐성이 나타났다. 또한 MCF-7 사람유방암세포주를 이용한 실험결과, 8종류의 추출물이 MCF-7 세포의 성장을 억제하는 것으로 확인되었으며 비스페놀 A와 동시 처치한 경우에도 유의적으로 억제하는 것으로 나타났다. 또한 Glycyrrhiza uralensis, Cassia tora, Syringa velutina, Zingiber officinale, Malva verticillata, Panax ginseng C.A. Meyer는 식물성 에스트로겐으로서 에스트로겐에 양성인 사람유방암세포의 증식을 유의적으로 억제시키는 흥미로운 결과가 제시되었다. 따라서 이번 연구는 한국산 약용식물이 식물성 에스트로겐과 항암인자로서 이용될 수 있으며, 에스트로겐의 활성을 조사하는데 유용하게 이용될 수 있을 것으로 사료된다.
The human chemokine, the short version of leukotactin-1(shLkn-1;molecular weight=7.2 kD and 66 amino acids), was expressed and secreted into a culture medium using the me-thylotrophic yeast, Pichia pastoris. The recombinant shLkn-1 was purified from the culture supernatant using a simple two-step procedure consisting of cation exchange and reverse phase chromatography(RPC), in which shLkn-1 was highly purified (99.5%) with a high recovery yield of 82.7%. The C-terminal truncated derivative of shLkn-1 was found in the supernatant and was separated by RPC. The physicochemical properties of the purified shLkn-1 were verified to be the same as expected. The biological activity of the purified recombinant shLkn-1 was also quantified using a chemotaxis assay. It was observed that the recombinant shLkn-1 had the maximum migration activity at a concentration of 10nM, as potent as MIP-1${\alpha}$.
To screen chaperone proteins from Schizosaccharomyce pombe (S. pombe), we prepared recombinant citrate synthase of the fission yeast as a substrate of anti-aggregation assay. Purified recombinant citrate synthase showed citrate synthase activity and was suitable for the substrate of chaperone assay. Several heat stable proteins including aspartyl aminopeptidase (AAP) for candidates of chaperone were screened from the supernatant fraction of heat-treated crude extract of S. pombe. The purified AAP migrated as a single band of 47 kDa on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The native size of AAP was estimated as 200 kDa by a HPLC gel permeation chromatography. This enzyme can remove the aspartyl residue at N-terminus of angiotensin I. In addition, AAP showed the heat stability and protected the aggregation of citrate synthase caused by thermal denaturation. This study showed that S. pombe AAP is a moonlight protein that has aspartyl aminopeptidase and chaperone activities.
Yeast based estrogenicity assay is the simplest and useful for the assay and the discovery of novel estrogenic substances in natural specimens, The estrogen receptor(ER) modulation activity of 50% EtOH extracts of 101 traditional medicinal herbs was assessed using a recombinant yeast assay system with both a human estrogen receptor expression plasmid and a receptor plasmid. Among them, 14 species proved to be active. Pureariae Flos (flower of Puerraria thunbergiana BENTH.) had the highest estrogenic relative potency$(7.75{\times}10^{-3})$$(EC_{50}=9.39\;{\mu}g/ml)$. The $EC_{50}$ value of $17{\beta}-estradiol$ used as the positive control was $0.073\;{\mu}g/ml)$ (Relative Potency=1.00). There results demonstrated that some of the traditional medical herb may be useful in the therapy of estrogen replacement.
에스트로젠 수용체와 리포터 유전자인 ${\beta}-galactosidase$가 도입된 효모재조합검색시험법을 이용하여 DEHP와 DBP의 내분비계 장애작용을 검색하였다. 양성대조 시험물질로 $17{\beta}-estradiol$을 설정하여 DEHP와 DBP의 에스트로젠 활성을 비교분석 하였을 때, $17{\beta}-estradiol$의 경우 $10^{-9}M$에서 가장 활성이 높게 관찰되었다. DEHP의 경우 $10^{-10}M$에서 $10^{-7}M$까지 시험하였을 때 농도의존적으로 에스트로젠활성이 증가하였으며, $10^{-7}M$의 경우 가장 강력한 에스트로젠활성을 보였다. DBP의 경우 $10^{-9}M$에서 $10^{-6}M$까지 에스트로젠활성이 관찰되었다. DEHP와 DBP의 경우 최대활성화 대비 50% 이상의 활성도를 보이기 시작하는 농도가 $10^{-9}M$로 나타나서 비슷한 농도에서 에스트로젠 활성화가 이루어지는 것으로 추측할 수 있었다. 그러나, 에스트로젠 최대활성화 시의 농도를 비교해 보면 DBP가 DEHP보다 10배 낮은 농도에서 최대활성치가 관찰되었기 때문에 DBP가 DEHP보다 에스트로젠 작용에 더 민감하게 반응하는 것으로 판단할 수 있었다. 결과적으로 본 실험에 사용되어진 시험물질인 DEHP와 DBP는 효모재조합시험법에 있어서 에스트로젠 활성을 유도하는 것으로 판단되어지며 감수성에 있어서는 DBP가 DEHP보다 높은 것으로 여겨진다.
The mouse interferon gene (MuIFN-${\gamma}$) was cloned and then used to transform Saccharomyces cerevisiae. Expressed MuIFN-$\{gamma}$ protein (MuIFN-${\gamma}$) was successfully secreted into culture medium due to the presence oi the signal peptide of rice amylase 1A. Two different promoters fused to MuIFN-${\gamma}$ were tested: glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GPD) promoter and a yeast hybrid ADH2-GPD (AG) promoter consisting of alcohol dehydrogenase II (ADH2) and GPD promoter. Using the hybrid promoter, the accumulation of MuIFN-${\gamma}$transcript was the highest after the 24 h cultivation, and then gradually decreased as the cultivation proceeded. However, both cell growth and recombinant MuIFN-${\gamma}$production reached their peaks after the 4-day cultivation. It was possible to produce 6.5 mg/l of MuIFN-${\gamma}$ without any changes in cell growth. Using GPD promoter, the MuIFN-${\gamma}$ transcript accumulation and the recombinant MuIFN-${\gamma}$ production followed the same pattern as the cell growth. However. compared to that of the hybrid promoter, the production of recombinant MuIFN-${\gamma}$ was 0.2 mg/l. The secreted MuIFN-${\gamma}$ had estimated molecular masses of 21 kDa and 23 kDa, which were larger than that of the encoded size due to glycosylation. The protection assay against the viral infection indicated that the recombinant MuIFN-${\gamma}$ was bioactive.
바이러스 분리 및 검출 측면에서의 해양바이러스 연구는 높은 빈도의 돌연변이와 유전적 다양성 때문에 한계가 있어 왔다. 현재 해양바이러스를 검출하기 위해 사용되고 있는 방법 중 ELISA를 기반으로 하는 혈청학적 방법이 가장 보편적이다. 혈청학적 방법은 항체의 질과 고도로 정제된 정확한 항원을 요구한다. 최근에 바이러스 외피단백질을 항원으로 이용하고자하는 새로운 실험시스템이 yeast surface display (YSD)를 사용하여 개발되었다. 이 연구에서는 붉바리 신경괴사 바이러스(RGNNV)의 외피단백질 유전자를 YSD와 HA-tagging 시스템을 이용하여 발현시키고 정제하였다. 2개의 RGNNV 외피단백질 유전자 조각(RGNNV1 및 RGNNV2)을 염기서열 데이터베이스에 기초하여 합성하였고, 효모 발현 벡터인 pCTCON로 클로닝하였다. 효모 strain EBY100에서의 RGNNV 외피단백질의 발현은 발현벡터에 의해 코드되는 C-말단의 c-myc tags를 인지하는 형광표지된 항체를 이용하여 flow cytometry로 검출되었다. 발현된 RGNNV 외피단백질은 ${\beta}$-mercaptoethanol 처리 후 Aga1과 Aga2 사이의 이황화결합 절단에 의해 효모표면으로부터 분리되었다. Anti-HA 항체를 사용한 Western blots을 수행하였을 때 각 RGNNV 외피단백질이 정해진 크기에서 검출되는 것이 확인되었다. 이러한 결과는 YSD와 HA-tagging 시스템이 재조합 RGNNV 외피단백질의 발현과 정제에 적용가능함을 나타낸다.
Phytase improves the bioavailability of phytate phosphorus in plant foods to humans and animals, and reduces the phosphorus pollution of animal waste. We have engineered the cell surface of the yeast. Saccharomyces cerevisiae, by anchoring active fungal phytase on its cell wall, in order to apply it as a dietary supplement containing bioconversional functions in animal foods and a whole cell bio-catalyst for the treatment of waste. The phytase gene (phyA) of Aspergillus niger with a signal peptide of rice amylase 1A (Ramy1A) was fused with the gene encoding the C-terminal half (320 amino acid residues from the C-terminus) of yeast ${\alpha}-agglutinin$, a protein which is involved in mating and is covalently anchored to the cell wall. The resulting fusion construct was introduced into S. cerevisiae and expressed under the control of the constitutive glyceraldehydes-3-phosphate dehydrogenase (GPD) promoter. Phytase plate assay revealed that the surface-engineered cell exhibited a catalytically active opaque zone which was restricted to the margin of the colony. Additionally, the phytase activity was detected in the cell fraction, but was not detected in the culture medium when it was grown in liquid. These results indicate that the phytase was successfully anchored to the cell surface of yeast and was displayed as its active form. The amount of recombinant phytase on the surface of yeast cells was estimated to be 16,000 molecules per cell.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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