Enterotoxigenic Bacteroides fragilis (ETBF) is the main pathogen causing severe inflammatory diseases and colorectal cancer. Its biofilm plays a key role in the development of colorectal cancer. The objective of this study was to determine the antagonistic effects of cell-free supernatants (CFS) derived from Clostridium butyricum against the growth and biofilm of ETBF. Our data showed that C. butyricum CFS inhibited the growth of B. fragilis in planktonic culture. In addition, C. butyricum CFS exhibited an antibiofilm effect by inhibiting biofilm development, disassembling preformed biofilms and reducing the metabolic activity of cells in biofilms. Using confocal laser scanning microscopy, we found that C. butyricum CFS significantly suppressed the proteins and extracellular nucleic acids among the basic biofilm components. Furthermore, C. butyricum CFS significantly downregulated the expression of virulence- and efflux pump-related genes including ompA and bmeB3 in B. fragilis. Our findings suggest that C. butyricum can be used as biotherapeutic agent by inhibiting the growth and biofilm of ETBF.
The prevalence of human papillomavirus genotypes differs in various target organs. HPV16 is the most prevalent genotype in the cervix while genotypes 6 and 11 are highly prevalent in skin and aero-digestive tract infections. In this study HPV11 positive specimens were selected from cervix, larynx and lung biopsy tissue to analyze the whole genome by PCR and direct sequencing. Five HPV11 whole genomes were characterized, consisting of two cervical specimens, two laryngeal specimens and one lung specimen. The results showed high homology of HPV11 in these organs. Phylogenetic analysis showed that all HPV11 derived from various organs belonged to the same lineage. Molecular characterization and functional studies can further our understanding of virulence, expression or transmission. Additional studies on functional protein expression at different organ sites will also contribute to our knowledge of HPV infection in various organs.
Mitchell, Robert J.;Lee, Sung-Kuk;Kim, Tae-Sung;Ghim, Cheol-Min
BMB Reports
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v.44
no.1
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pp.1-10
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2011
Inter-cellular communication via diffusible small molecules is a defining character not only of multicellular forms of life but also of single-celled organisms. A large number of bacterial genes are regulated by the change of chemical milieu mediated by the local population density of its own species or others. The cell density-dependent "autoinducer" molecules regulate the expression of those genes involved in genetic competence, biofilm formation and persistence, virulence, sporulation, bioluminescence, antibiotic production, and many others. Recent innovations in recombinant DNA technology and micro-/nano-fluidics systems render the genetic circuitry responsible for cell-to-cell communication feasible to and malleable via synthetic biological approaches. Here we review the current understanding of the molecular biology of bacterial intercellular communication and the novel experimental protocols and platforms used to investigate this phenomenon. A particular emphasis is given to the genetic regulatory circuits that provide the standard building blocks which constitute the syntax of the biochemical communication network. Thus, this review gives focus to the engineering principles necessary for rewiring bacterial chemo-communication for various applications, ranging from population-level gene expression control to the study of host-pathogen interactions.
The efficiency of Agrobacterium-mediated transformation in plants depends on the virulence of Agrobacterium strains, the plant tissue culture conditions, and the susceptibility of host plants. Understanding the molecular interactions between Agrobacterium and host plant cells is crucial when manipulating the susceptibility of recalcitrant crop plants and protecting orchard trees from crown gall disease. It was discovered that Arabidopsis voltage-dependent anion channel 1 (atvdac1) mutant has drastic effects on Agrobacterium-mediated tumorigenesis and growth developmental phenotypes, and that these effects are dependent on a Ws-0 genetic background. Genetic complementation of Arabidopsis vdac1 mutants and yeast porin1-deficient strain with members of the AtVDAC gene family revealed that AtVDAC1 is required for Agrobacterium-mediated transformation, and there is weak functional redundancy between AtVDAC1 and AtVDAC3, which is independent of porin activity. Furthermore, atvdac1 mutants were deficient in transient and stable transformation by Agrobacterium, suggesting that AtVDAC1 is involved in the early stages of Agrobacterium infection prior to transferred-DNA (T-DNA) integration. Transgenic plants overexpressing AtVDAC1 not only complemented the phenotypes of the atvdac1 mutant, but also showed high efficiency of transient T-DNA gene expression; however, the efficiency of stable transformation was not affected. Moreover, the effect of phytohormone treatment on competence to Agrobacterium was compromised in atvdac1 mutants. These data indicate that AtVDAC1 regulates the competence of Arabidopsis to Agrobacterium infection.
An, Sun-Jin;Namkung, Jong-Uk;Ha, Kyung-Won;Jun, Hye-Kyoung;Kim, Hyun Young;Choi, Bong-Kyu
International Journal of Oral Biology
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v.46
no.3
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pp.111-118
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2021
Periodontitis and periimplantitis are caused as a result of dental biofilm formation. This biofilm is composed of multiple species of pathogens. Therefore, controlling biofilm formation is critical for disease prevention. To inhibit biofilm formation, sugars can be used to interrupt lectin-involving interactions between bacteria or between bacteria and a host. In this study, we evaluated the effect of D-Arabinose on biofilm formation of putative periodontal pathogens as well as the quorum sensing activity and whole protein profiles of the pathogens. Crystal violet staining, confocal laser scanning microscopy, and scanning electron microscopy revealed that D-Arabinose inhibited biofilm formation of Porphyromonas gingivalis, Fusobacterium nucleatum, and Tannerella forsythia. D-Arabinose also significantly inhibited the activity of autoinducer 2 of F. nucleatum and the expression of representative bacterial virulence genes. Furthermore, D-Arabinose treatment altered the expression of some bacterial proteins. These results demonstrate that D-Arabinose can be used as an antibiofilm agent for the prevention of periodontal infections.
Lee, Young-Hwa;Jeong, So-Yeon;Na, Hee-Sam;Jeong, Sung-Hee;Park, Hae-Ryoun;Chung, Jin
International Journal of Oral Biology
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v.35
no.3
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pp.121-128
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2010
Porphyromonas gingivalis lipopolysaccharide (Pg LPS) is an important virulence factor in chronic periodontitis. The aim of this study was to compare the expression of inflammatory cytokine genes in Escherichia coli LPS (Ec LPS) and Pg LPS-stimulated mouse macrophage RAW 264.7 cells. Cells were treated with Ec LPS and Pg LPS for 18 hours, and the cytokine gene expression profile was assessed using microarrays and confirmed by real-time PCR. Microarray analysis showed that both types of LPS induced a significant increase in the expression of IL-$17{\beta}$, IL-2, Ccl4, Cxcl2 and $TNF{\alpha}$ compared with the control. However, LT-b was up-regulated by Pg LPS but not by Ec LPS. Real-time PCR analysis of these genes showed similar results for LT-b, Ccl4, Cxcl2, and TNF-$\alpha$ but found that IL-$17{\beta}$ and IL-2 were upregulated by Pg LPS but not by Ec LPS. These data indicate that Pg LPS stimulates the transcription of IL-$17{\beta}$, IL-2, Ccl4, Cxcl2, LT-b, and $TNF{\alpha}$, all of which may be involved in the pathogenesis of chronic periodontitis.
Rebamipide is a mucosal-protective antiulcer drug, but its mechanism of action in gastric cancer remains elusive. CagA, a major virulence factor of Helicobacter pylori (H. pylori), is associated with the risk of gastric cancer. CagA protein is injected into gastric epithelial cells and deregulates a variety of cellular signaling molecules. CagA from H. pylori induces phospholipase D1 (PLD1) expression through NFκB activation in gastric epithelial cells, followed by invasion and proliferation of gastric epithelial cancer cells. Infection with cagA-positive H. pylori and expression of CagA enhances the binding of NFκB to the PLD1 promoter. Rebamipide abolishes H. pylori cagA-induced PLD1 expression via inhibition of binding of NFκB to the PLD1 promoter and also inhibits PLD activity. Moreover, rebamipide abolishes H. pylori CagA-induced β-catenin and the expression of a target cancer stem cell (CSC) marker gene via upregulation of miRNA-320a and -4496, followed by attenuation of self-renewal capacity of H. pylori CagA-infected gastric CSCs. In addition, rebamipide increases the chemosensitivity of CagA-expressed gastric CSCs and suppresses gastric carcinogenesis. Thus, it is speculated that rebamipide might show a potent efficacy as chemotherapeutic drug against gastric cancer cells. In this review, we summarizes recent results regarding the novel insights for the efficacy of rebamipide in gastric cancer cells.
A risk analysis of Shiga toxin (Stx)-encoding bacteriophage was carried out by confirming the transduction phage to non-Stx-producing Escherichia coli (STEC) and subsequent expression of the Shiga toxin genes. The virulence factor stx1 was identified in five phages, and both stx1 and stx2 were found in four phages from a total of 19 phage isolates with seven non-O157 STEC strains. The four phages, designated as ϕNOEC41, ϕNOEC46, ϕNOEC47, and ϕNOEC49, belonged morphologically to the Myoviridae family. The stabilities of these phages to temperature, pH, ethanol, and NaClO were high with some variabilities among the phages. The infection of five non-STEC strains by nine Stx-encoding phages occurred at a rate of approximately 40%. Non-STEC strains were transduced by Stx-encoding phage to become lysogenic strains, and seven convertant strains had stx1 and/or stx2 genes. Only the stx1 gene was transferred to the receptor strains without any deletion. Gene expression of a convertant having both stx1 and stx2 genes was confirmed to be up to 32 times higher for Stx1 in 6% NaCl osmotic media and twice for Stx2 in 4% NaCl media, compared with expression in low-salt environments. Therefore, a new risk might arise from the transfer of pathogenic genes from Stx-encoding phages to otherwise harmless hosts. Without adequate sterilization of food exposed to various environments, there is a possibility that the toxicity of the phages might increase.
JU HYUN-MOK;HWANG IN-GYUN;WOO GUN-JO;KIM TAE SUNG;CHOI SANG HO
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.15
no.6
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pp.1337-1345
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2005
Vibrio vulnificus is the causative agent of foodborne diseases such as gastroenteritis and life-threatening septicemia. Microbial pathogenicity is a complex phenomenon in which expression of numerous virulence factors is frequently controlled by a common regulatory system. In the present study, a mutant exhibiting decreased cytotoxic activity toward intestinal epithelial cells was screened from a library of V. vulnificus mutants constructed by a random transposon mutagenesis. By a transposon-tagging method, an open reading frame, fexA, a homologue of Escherichia coli areA, was identified and cloned. The nucleotide and deduced amino acid sequences of the fexA were analyzed, and the amino acid sequence of FexA from V. vulnificus was $84\%\;to\;97\%$ similar to those of AreA, an aerobic respiration control global regulator, from other Enterobacteriaceae. Functions of the FexA were assessed by the construction of an isogenic mutant, whose fexA gene was inactivated by allelic exchanges, and by evaluating its phenotype changes in vitro and in mice. The disruption of fexA resulted in a significant alteration in growth rate under aerobic as well as anaerobic conditions. When compared to the wild-type, the fexA mutant exhibited a substantial decrease in motility and cytotoxicity toward intestinal epithelial cell lines in vitro. Furthermore, the intraperitoneal $LD_{50}$ of the fexA mutant was approximately $10^{1}-10^{2}$ times higher than that of parental wild-type. Therefore, it appears that FexA is a novel global regulator controlling numerous genes and contributing to the pathogenesis as well as growth of V. vulnificus.
Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Xoo) strains are plant pathogenic bacteria that can cause serious blight of rice, and their virulence towards plant host is complex, making it difficult to be elucidated. Caenorhabditis elegans has been used as a powerful model organism to simplify the host and pathogen system. However, whether the C. elegans is feasible for studying plant pathogens such as Xoo has not been explored. In the present work, we report that Xoo strains PXO99 and JXOIII reduce the lifespan of worms not through acute toxicity, but in an infectious manner; pathogens proliferate and persist in the intestinal lumen to cause marked anterior intestine distension. In addition, Xoo triggers (i) the p38 MAPK signal pathway to upregulate its downstream C17H12.8 expression, and (ii) the DAF-2/DAF-16 pathway to upregulate its downstream gene expressions of mtl-1 and sod-3 under the condition of daf-2 mutation. Our findings suggest that C. elegans can be used as a model to evaluate the virulence of Xoo phytopathogens to host.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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