This paper presents a new kinematic control strategy for serial redundant manipulators which gives repeatability in the joint space when the end-effector undergoes some general cyclic motions. Theoretical development has been accomplished by deriving a new inverse kinematic equation that is based on springs being conceptually located in the joints of the manipulator. Although some inverse kinematic equations for serial redundant manipulators have been derived by many researchers, the new strategy is the first to include the free angles of torsional springs and the free lengths of the translational springs. This is important because it ensures repeatability in the joint space of a serial redundant manipulator whose end-effector undergoes a cyclic type motion. Numerical verification for repeatability is done in terms of Lie Bracket Condition. Choices for the free angle and torsional stiffness of a joint (or the free length and translational stiffness) are made based upon the mechanical limits of the joints.
Retron is a prokaryotic genetic element, producing a short single-stranded DNA covalently linked to RNA (msDNA-RNA) by a reverse transcriptase (RT). In retron EC83, msDNA is further processed at between the 4th and the $5^{th}$ nucleotides, leaving a 79 nucleotide-long single-stranded DNA as a final product. To investigate this site-specific cleavage in msDNA synthesis, we purified the RT protein of retron EC83. Initially, RT ORF was cloned under the tac promoter, but the expression was very poor largely because of poor translation. In order to facilitate translation, the nucleotide sequence for the first nine amino acids was randomized with synonymous codons. This change of downstream sequence of translational initiation codon greatly affected the efficiency of translation. We could isolate clones which greatly increased RT production, and their sequences were compared to those of the low producers. The overproduced protein was purified and was shown to have RT activity.
The non-rational transfer function of a Bernoulli-Euler beam, as an important component of a flexible structure, is analyzed. The true pattern of zeros of that transfer function is investigated as a function of sensor and actuator seperation. Translational displacement sensors are used for two cases in which a force input and a moment input are seperately applied. When the displacement sensor is located at a certain point, the first pair of zeros on the real axis of the s-plane arrive at the origin and cancel the rigid-body mode. The location of the translational displacement sensors on the beamat which the rigid-body mode of the beam is unobservable is analyzed as the center of percussion and is uniquely located for each case. If sensor is moved beyond such a point, a pair of zeros appear on the imaginary axis and move away from the origin along the imaginary axis of the s-plane.
Most living organisms synchronize their physiological and behavioral activities with the daily changes in the environment using intrinsic time-keeping systems called circadian clocks. In mammals, the key molecular features of the internal clock are transcription- and translational-based negative feedback loops, in which clock-specific transcription factors activate the periodic expression of their own repressors, thereby generating the circadian rhythms. CLOCK and BMAL1, the basic helix-loop-helix (bHLH)/PAS transcription factors, constitute the positive limb of the molecular clock oscillator. Recent investigations have shown that various levels of posttranslational regulation work in concert with CLOCK/BMAL1 in mediating circadian and cellular stimuli to control and reset the circadian rhythmicity. Here we review how the CLOCK and BMAL1 activities are regulated by intracellular distribution, posttranslational modification, and the recruitment of various epigenetic regulators in response to circadian and cellular signaling pathways.
한국식물학회 1987년도 식물생명공학 심포지움 논문집 Proceedings of Symposia on Plant Biotechnology
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pp.283-307
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1987
Glycinin and $\beta$-conglycinin are the most abundant storage protein in soybean. These proteins are known to be synthesized predominantly during germination and cell expansion phase of seed development for short period, and synthesized not in other tissues. Genes encoding these storage proteins are useful system to study the mechanism of development stage and tissue specific gene expression in eukaryotes, especially plants, at the molecular level. The cDNA and genomic clones coding for glycinin have been isolated and regulation mechanism of the gene expression has been studied. Initially, development and tissue-specific expression of the glycinin gene is regulated at the level of transcription. Post-transcriptional processing is also responsible for delayed accumulation of the mRNA. Translational control of the storage protein gene has not been reported. Post-translational modification is another strategic point to regulate the expression of the gene. It is possible to identify positive and/or negative reguratory clements in vivo by producing transgenic plants agter gene manipulation. Elucidation of activation and repression mechanism of soybean storage protein genes will contribute to the understanding of the other plant and eukaryotic genes at molecular level.
The centrosome, an organelle comprising centrioles and associated pericentriolar material, is the major microtubule organizing center in animal cells. For the cell to form a bipolar mitotic spindle and ensure proper chromosome segregation at the end of each cell cycle, it is paramount that the cell contains two and only two centrosomes. Because the number of centrosomes in the cell is determined by the number of centrioles, cells have evolved elaborate mechanisms to control centriole biogenesis and to tightly coordinate this process with DNA replication. Here we review key proteins involved in centriole assembly, compare two major modes of centriole biogenesis, and discuss the mechanisms that ensure stringency of centriole number.
Post-translational covalent modifications by small molecules or peptides remodel target proteins. One such modification, made by ubiquitin or small ubiquitin-related modifier (SUMO), is a rapidly expanding field in cell signaling pathways. Ubiquitin attachment controls the turnover and degradation of target proteins while SUMO conjugation regulates their activity and function. Recent studies report many examples of cross-talk between ubiquitin and SUMO pathways, indicating that the boundary is no longer clear. Here, we review recent progress concerning how ubiquitin and SUMO participate in new regulatory roles in plant cell, and how ubiquitination and sumoylation control plant growth and development.
Mutations of APC and KRAS are frequently observed in human colorectal cancers (CRCs) and the Wnt/β-catenin and Ras pathways are consequently activated in a significant proportion of CRC patients. Mutations in these two genes are also known to synergistically induce progression of CRCs. Through a series of studies, we have demonstrated that inhibition of the Wnt/β-catenin signaling pathway negatively regulates Ras stability, therefore, Ras abundance is increased together with β-catenin in both mice and human CRCs harboring adenomatous polyposis coli (APC) mutations. In a recent study, we identified KY1220, a small molecule that simultaneously degrades β-catenin and Ras by inhibition of the Wnt/β-catenin pathway, and obtained its derivative KYA1797K, which has improved activity and solubility. We found that KYA1797K binds the RGS domain of axin and enhances the binding affinity of β-catenin or Ras with the β-catenin destruction complex components, leading to simultaneous destabilization of β-catenin and Ras via GSK3β activation. By using both in vitro and in vivo studies, we showed that KYA1797K suppressed the growth of CRCs harboring APC and KRAS mutations through destabilization of β-catenin and Ras. Therefore, our findings indicate that the simultaneous destabilization of β-catenin and Ras via targeting axin may serve as an effective strategy for inhibition of CRCs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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