Cysteine proteases have been known as a critical factor in plant defense mechanisms in pineapple, papaya, or wild fig. Papain or ficin is one kind of cysteine proteases that shows toxic effects to herbivorous insects and pathogenic bacteria. However, resistance to bacterial soft rot of plants genetically engineered with cysteine protease has been little examined thus far. We cloned a cysteine protease cDNA from Ananas comosus and introduced the gene into Chinese cabbage (Brassica rapa) under the control of the cauliflower mosaic virus 35S promoter. The transgene was stably integrated and actively transcribed in transgenic plants. In comparisons with wild-type plants, the $T_2$ and $T_3$ transgenic plants exhibited a significant increase in endo-protease activity in leaves and enhanced resistance to bacterial soft rot. A cDNA microarray analysis revealed that several genes were more abundantly transcribed in the transgenic than in the wild type. These genes encode a glyoxal oxidase, PR-1 protein, PDF1, protein kinase, LTP protein, UBA protein and protease inhibitor. These results suggest an important role for cysteine protease as a signaling regulator in biotic stress signaling pathways, leading to the build-up of defense mechanism to pathogenic bacteria in plants.
Background: Adenovirus (Ad) vectors have been widely used for many gene therapy applications because of their high transduction ability and broad tropism. However, their utility for cancer gene therapy is limited by their poor transduction into cancer cells lacking the primary receptor, coxsackievirus and adenovirus receptor (CAR). Methods: To achieve CAR-independent gene transfer via Ad, we pretreated Ad with 1,2-dioleoyl-3-trimethylammonium propane (DOTAP) and analyzed their transduction efficiency into cancer cells in vitro and in vivo comparing with the virus alone. Results: Treatment of DOTAP significantly increased adenoviral gene transfer in tumor cells in vitro. Moreover, DOTAP at an optimum dose $(10{\mu}g/ml)$ enhanced IL-12 transgene expression by fivefold in tumor, and twofold in serum after intratumoral injection of adenovirus expressing IL-12N220L (Ad/IL-12N220L). In addition, cotreatment of DOTAP decreased tumor growth rate in the Ad/IL-12N220L-transduced tumor model, finally leading to enhanced survival rate. Conclusion: Our results strongly suggest that DOTAP could be of great utility for improving adenovirus-mediated cancer gene therapy.
The non-viral delivery of genes into macrophages, known as hard-to-transfect cells, is a challenge. In this study, the microporation of a CpG-free and small plasmid (pCGfd-GFP) showed high transfection efficiency, sustainable transgene expression, and good cell viability in the transfections of Raw 264.7 and primary bone marrow-derived macrophages. The non-viral method using the pCGfd vector encoding anti-EGFR single-chain Fv fused with Fc (scFv-Fc) generated the macrophages secreting anti-EGFR scFv-Fc. These macrophages effectively phagocytized tumor cells expressing EGFR through the antibody-dependent mechanism, as was proved by experiments using EGFR-knockout tumor cells. Finally, peri-tumoral injections of anti-EGFR scFv-Fc-secreting macrophages were shown to inhibit tumor growth in the xenograft mouse model.
Though higher plants car not metabolize D-amino acid, many prokaryotes and eukaryotes have the D-amino acid metabolism. Therefore, we transformed tobacco plants with D-amino acid oxidase (DAO), which can metabolize D-amino acid, and confirmed that transgenic tobacco plants might metabolize D-amino acid. Transgenic tobacco plants were survived a high concentration of D-serine, however non-transgenic plants were not grown on D-serine medium. From Southern and Northern blot analysis, transgenic tobacco plants selected on D-serine medium were confirmed by insert and expression of transgene. $T_{1}$ tobacco seeds derived $T_{0}$ tobacco plants selfing were grown on D-serine medium and showed normal phenotype compared to wild tobacco plants. Transgenic tobacco plants displayed the metabolic capability of D-serine. Therefore, we suggested that DAO is useful selectable marker gene for plant transformation.
During the last three decades considerable advances has been made in goat embryo production and transfer technology. The Korean native black goat is the most useful domestic ruminant in this country for biological investigation and application because it has a lot of merits such as relatively short generation period (1 vs 2 year for a cow), easy of handling, well adaptation, high fertility, convenient and inexpensive. This article covers the methods of superovulation, estrus synchronization, embryo collection and transfer techniques, pregnancy diagnosis and subsequent pregnancy and kidding rates for the production of transgenic Korean native black goats. More than one hundred goat kids have been produced as a result of our transgenic goat project via microinjection of foreign gene into pronuclei, in vitro culture, transfer of various stages of fresh and frozen-thawed microinjected embryos into oviducts or uteri of recipient does. We have got two transgenic goats carrying a transgene targeting the expression of recombinant human granulocyte colony stimulating factor (hG-CSF) to the mammary gland so far. Since collection and transfer of embryos in this species is usually accomplished by laparotomy, exteriorization of the reproductive tract for surgical embryo collection leads to the formation of post-operative adhesions. Nonsurgical or laparoscopic technique to reduce adhesions from repeated surgeries has great advantages in improving embryo production and transfer especially from valuable donors. We will discuss this later.
This study was conducted to develop new lines expressing the characteristic of early flowering by introducing MdMADS2 gene in chrysanthemum (Dendranthema grandiflorum (Ramat.) Kitamura) ‘Zinba'. Transformation of chrysanthemum was conducted by Agrobacterium tumefaciens LBA4404 harboring the binary vector containing MdMADS2 controlled by double CaMV 35S promoters. Ninety three shoots were regenerated from 1,463 leaf segment explants cultured on the first selection medium (MS basal salts + 1.0 mg/L BA + 0.5 mg/L IAA + 10 mg/L kanamycin + 400 mg/L cefotaxime, pH 5.8) after co-cultivation, and 20 out of the 93 shoots rooted on the second selection medium containing 20 mg/L kanamycin and 400 mg/L cefotaxime. Many escapes (98.6%) were removed on the selection stage for rooting. Nineteen lines were confirmed as transgenic plant with transgene by PCR analysis. Six transgenic plants flowered 2-11 days earlier than non-transgenic plant without big change of phenotype, and especially, 3 (Mo-7, Mo-11, Mo-17) out of 6 transgenic lines showed a significant reduction in days to flowering compared to non-transgenic plant. Introduction and expression of MdMADS2 gene in them were confirmed by Southern and real-time PCR analyses, respectively.
Alfalfa (Medicago sativa L.) is one of the most important forage legumes in the world. It has been demanded to establish the efficient transformation system in commercial varieties of alfalfa for forage molecular breeding and production of varieties possessing new characteristics. To approach this, genetic transformation techniques have been developed and modified. This work was performed to establish conditions for effective transformation of commercial alfalfa cultivars, Xinjiang Daye, ABT405, Vernal, Wintergreen and Alfagraze. GUS gene was used as a transgene and cotyledon and hypocotyl as a source of explants. Transformation efficiencies differed from 0 to 7.9% among alfalfa cultivars. Highest transformation efficiencies were observed in the cultivar Xinjiang Daye. The integration and expression of the transgenes in the transformed alfalfa plants was confirmed by polymerase chain reaction (PCR) and histochemical GUS assay. These data demonstrate highly efficient Agrobacterium transformation of diverse alfalfa cultivars Xinjiang Daye, which enables routine production of transgenic alfalfa plants.
D-class cyclins play important roles in controlling the cell cycle in development and in response to external signals by forming the regulatory subunit of cyclin-dependent kinase (CDK) complexes. To evaluate the effects of D-class cyclins in transgenic rice plants, Arabidopsis cyclin D2 gene (CycD2) was linked to the maize ubiquitin1 promoter (Ubi1) and introduced into rice by the Agrobacterium-mediated transformation method. Genomic deoxyribonucleic acid (DNA), ribonucleic acid (RNA), and Western blot hybridizations of the Ubi1:-CycD2 plants revealed copy number of transgene and its increased expression in leaf and callus cells at messenger RNA (mRNA) and/or protein levels. The H1 kinase assay using the immunoprecipitates of protein extracts from the Ubi1:CycD2 plants and nontransgenic controls demonstrated that the introduced Arabidopsis CycD2 forms a functional CycD2/CDK complex with an unidentified CDK of rice. Shoot and root growth was enhanced in the Ubi1:CycD2 seedlings compared with nontransgenic controls, together, suggesting that Arabidopsis cyclin D2 interacts with a rice cyclin-dependent kinase, consequently enhancing seedling growth.
A chimeric gene comprising murine whey acidic protein(mWAP) and human growth hormone(hGH) was used to produce transgenic rats express hGH and secrete it into the blood. Two lines of transgenic rats carrying the mWAP/hGH construct were established; High line was characterized by relatively high levels of serum hGH, and low line had relatively low levels. The secretory profiles of rat GH(rGH) as well as hGH, the transgene product, were obtained in transgenic males and females of low line; both hGH and rGH serum levels were flattened with no episodic fluctuations, and the overall mean concentration of rGH was significantly lower than in normal littermates. Although the animals of High line showed an acceles, as assessed by vaginal opening and occurrence of first ovulation, advanced by 7∼8 days in both lines of animals. Accordingly, the body weight at puberty of low line transgenic females was much lower than that of normal littermates, indicating that continuous hGH expression could induce precocious puberty without enhancing the growth rate.
Kim, Hyun-Soon;Youm, Jung Won;Lee, Jeong-Hwan;Jeon, Jae-Heung;Ko, Kisung
원예과학기술지
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제32권3호
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pp.375-381
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2014
Transgenic potato was generated to express recombinant 5 repeated ${\beta}$-amyloid ($A{\beta}$) peptides, potential antigens to be applied as a preventive accine for Alzheimer's disease using Agrobacterium mediated transformation. The $A{\beta}$ peptides were fused to the human IgG Fc fragment enhancing protein and KDEL, which is the endoplasmic reticulum (ER) retention signal ($5A{\beta}$-FcK). The $5A{\beta}$-FcK, was expressed under the control of the duplicated 35S promoter. PCR analysis confirmed the presence of the transgene in several transgenic potato lines. Southern blot analysis showed only a single gene copy number in transgenic line 22, whereas multiple gene copy numbers were shown for transgenic lines 31 and 44. Northern blot analysis showed that line 22 had stronger mRNA levels when compared to lines 31 and 44. Immunoblot analysis confirmed that the $5A{\beta}$-FcK protein was expressed in the transgenic potato plant. These results indicate that $5A{\beta}$ fused to Fc can be expressed in potato plants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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