The studies of isolation and physiological characteristics of mesophilic or thermophilic bacteria from thermophilic oxic process (TOP) treating Chinese restaurant wastes were conducted. Chinese restaurant wastes were consist of moisture; 75.8%, solids; 24.2% and ash; 0.49%. The volatile solid was about 99% of total dry solids. In wastes used in this experiment, there was content of crude protein; 4.47%, crude lipid; 3.56%, free sugar, 0.4% , crude starch; 10.34% and crude fiber 3.14%, respectively. And then it has about 4,970 kcal/kg-dry solid of Chinese restaurant wastes. From TOP treating the chinese restaurant wastes, 37 strains of mesophilic or thermophilic bacteria were primarily isolated using medium used for the isolation and among them 6 strains of thermophilic and 7 strains of mesophilic bacteria were selected by testing the activities of amylase, cellulase, protease and lipase. TB-1, TB-9 as thermophilic bacteria and MB-15-1, 15-2, MB23 as mesophilic bacteria having strong enzyme activity were selected among isolated strains. All selected strains reduced nitrate to nitrite and they utilized glucose, manose, manitol, and maltose as carbon source. From these MB15-2 was identified as Bacillus cereus, TB1, Bacillus licheniformis and TB9; Bacillus schlegelii.
Talaromyces luteus 2004, a thermophilic mutant of T. luteus 6112 was obtained by mutagenesis with N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine. T. luteus 2004 produced thermophilic carboxymethylcellulase (CMCase), and other polysaccharide enzymes: avicellase, xylanase, and ${\beta}-glucosidase$. Induction of CMCase production was shown at the highest level in 3% carboxymethylcellulose (CMC) minimal broth, indicating that CMC could work as an inducer. However, glucose and D-cellobiose showed catabolite repression for CMCase production which was under the control of CMC utilization. Optimal conditions for CMCase activity were at $70^{\circ}C$ and pH 4.0, suggesting that CMCase of T. luteus 2004 was a thermophilic enzyme.
Aromatic L-amino acid transaminase is an enzyme that is able to transfer the amino group from L-glutamate to unnatural aromatic ${\alpha}-keto$ acids to generate ${\alpha}-ketoglutarate$ and unnatural aromatic L-amino acids, respectively. Enrichment culture was used to isolate thermophilic Bacillus sp. T30 expressing this enzyme for use in the synthesis of unnatural L-amino acids. The asymmetric syntheses of L-homophenylalanine and L-phenylglycine resulted in conversion yields of >95% and >93% from 150 mM 2-oxo-4-phenylbutyrate and phenylglyoxylate, respectively, using L-glutamate as an amino donor at $60^{\circ}C$. Synthesized L-homophenylalanine and L-phenylglycine were optically pure (>99% enantiomeric excess) and continuously pre-cipitated in the reaction solution due to their low solubility at the given reaction pH. While the solubility of the ${\alpha}-keto$ acid substrates is dependent on temperature, the solubility of the unnatural L-amino acid products is dependent on the reaction pH. As the solubility difference between substrate and product at the given reaction pH is therefore larger at higher temperature, the thermophilic transaminase was successfully used to shift the reaction equilibrium toward rapid product formation.
A producer of thermophilic extracellular lipase, Geobacillus kaustophilus DSM 7263, was selected from various microorganisms of the Geobacillus genus. We investigated optimum conditions for mass production of G. kaustophilus lipase. Among the different natural oil media, olive oil was optimal for enzyme production. The maximum amount of enzyme production was obtained when G. kaustophilus was grown in a medium containing 0.5% olive oil as a carbon source. The pH and temperature for optimal growth were pH 8.0 and $55^{\circ}C$, respectively, while the optimum pH and temperature for lipase production were pH 6.0 and $50^{\circ}C$, respectively. In the presence of $Mg^{2+}$ and $Mn^{2+}$, lipase production was dramatically enhanced by 247% and 157%, respectively, whereas enzyme production was inhibited by $Zn^{2+}$, $Cu^{2+}$, and $Cd^{2+}$. The addition of 0.1% (v/v) triton X-100 increased lipase production and cell growth when compared to the negative control.
An ${\alpha}-glucosidase$ gene (aglA) from thermophilic Bacillus sp. DG0303 was cloned, sequenced, and expressed in Escherichia coli. The aglA was localized to the 2.1-kb PvuI-XmnI region within the 5.9-kb DNA insert of the gybrid plasmid pAG1. The gene consisted of an open reading frame of 1,686 bp with an unusual GTG initiation codon and TGA termination codon. The amino acid sequence deduced from the nucleotide sequence predicted a protein of 562 amino acid residues with a M, of 66,551 dalton. A comparative amino acid sequence analysis revealed that DG0303 ${\alpha}-glucosidase$ is related to bacillary oligo-1, 6-glucosidases. The Bacillus sp. DG0303 ${\alpha}-glucosidase$ showed a high sequence identity (36-59%) to the B. flavocaldarius, B. cereus, and B. thermoglucosidasius oligo-1, 6-glucosidases. The number of prolines in theses four ${\alpha}-glucosidases. was observed to increase with increasing thermostability of these enzymes. The cloned ${\alpha}-glucosidase was purified from E. coli $DH5{\alpha}$ bearing pAG1 and characterized. The recombinant enzyme was identical with the native enzyme in its optimum pH and in its molecular mass, estimated by sodium dodecy1 sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis. The temperature optimum of the cloned ${\alpha}-glucosidase$ was lower than that of the native enzyme.
Food wastes were decomposed into the Mugri (Isung Engineering, Korea), a food waste reduction machine, with adding sawdust of cryptomeria. Degradation effects were better when the machine worked at over 45$^{\circ}C$ than those at the lower temperature. Thermophilic bacteria were isolated from cryptomeria sawdust and the food waste products degraded by the machine. The isolates from cryptomeria sawdust were classified into 3 genera (Acinetobacter baumannii, Enterobacter sp. and Erwinia cypripedii) and almost all the isolates from the degraded products were partially identified as Bacillus sp. by 16S rDNA sequence analysis. The isolated thermophilic bacteria showed degradative enzyme activities. In the case of addition of the 30 thermophilic bacteria into the machine, degradation rate of food wastes was almost twice as high with increasing process temperature up to 6$^{\circ}C$.
The mycelial growth of Pleurotus ostreatus in compost is strongly stimulated by solid-state fermentation with thermophilic fungi which were isolated from oyster mushroom compost. The biochemical characteristics of these thermophilic fungi were investigated. Cellulase and ligninase activities were not detected by clear zone effect on CMC and lignin media. All of thermophilic fungi grew well with high mycelial density on xylan media and the growing rate of Sepedonium sp. S-2 observed very high. In results of MUF-test, extracellular enzyme activity of Sepedonium sp. S-2, and S-5 measured very high. On the compost after high temperature fermentation with Sepedonium sp. S-2 and S-5, the mycelial growing rate of Pleurotus ostreatus was increased about 50% and it also showed the inhibiting effect on mycelial growth of Trichoderma sp. SJG-51. Isolated thermophilic fungi, Sepedonium sp. S-2 and S-5 were expected as very useful organism for making oyster mushroom compost.
Kim, Myung Kil;Choi, Don Ha;Choi, In Gyu;Kim, Byung Gyu;Song, Jae Gyung
Journal of the Korean Wood Science and Technology
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v.34
no.1
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pp.68-78
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2006
The purpose of this study was to estimate the identification of thermophilic hacterial with fermentation of pig manure. To identify the characters of thermophilic bacteria related to fermentation at a high temperature condition, we selected 28 different kinds of original settling thermophilic bacteria that were sampled at different 23 areas. They were distributed 1$1{\times}10^5{\sim}10^8CFU$ at medium and the enzyme activity at $55^{\circ}C$ incubation condition, especially cellulase and a-amylase, were higher than those of $30^{\circ}C$. Partial sequencing data for 165 rDNA region were obtained from 28 samples representing 15 different genera. Bacillus subcilis, one of those bacteria, has endodermic spores at high fermented condition.
Glutamate dehydrogenase from axenic bacterial cultures of a new microorganism, called GWE1, isolated from the interior of a sterilization drying oven, was purified by anion-exchange and molecular-exclusion liquid chromatography. The apparent molecular mass of the native enzyme was 250.5 kDa and was shown to be an hexamer with similar subunits of molecular mass 40.5 kDa. For glutamate oxidation, the enzyme showed an optimal pH and temperature of 8.0 and $70^{\circ}C$, respectively. In contrast to other glutamate dehydrogenases isolated from bacteria, the enzyme isolated in this study can use both $NAD^+$ and $NADP^+$ as electron acceptors, displaying more affinity for $NADP^+$ than for $NAD^+$. No activity was detected with NADH or NADPH, 2-oxoglutarate and ammonia. The enzyme was exceptionally thermostable, maintaining more than 70% of activity after incubating at $100^{\circ}C$ for more than five hours suggesting being one of the most thermoestable enzymes reported in the family of dehydrogenases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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