A green mutant of Rhodobacter sphaeroides 60I was acquired by chemical induction. The blue-shifted of the carotenoid absorption was found in the Light-harvesting complex II (LH2) of the mutant. With the excitation at different wavelength, we observed that the evolution of excited-state dynamics in LH2 of Rhodobacter sphaeroides 60I. The dynamical traces demonstrate a dominant absorption followed concomitantly by an ultrafast transmission increase and decay with 818nm excitation.
Poly-3-hydroxybutyrate (PHB) synthase catalyzed the last enzymic step to synthesize the intracellular PHB of Rhodobacter sphaeroides. No PHB was detected when the phbC coding for PhB synthase was interrupted, and its expression was regulated at the level of transcription. The cellular PHB content increased about four- to six-fold during the growth transition from the exponential to the early stationary phase under both aerobic and photoheterotrophic conditions. The PHB content during the aerobic growth seemed to be determined by the PhB synthase activity. However, the PHB synthase activity of photoheterotrophically grown cells did not correlate with the PhB content, suggesting a photoheterotrophic regulation different from the aerobic control. Thus, the PHB content of R. sphaeroides was regulated at the transcription level only under aerobic conditions.
The optimum temperature and pH for growth and hydrogen evolution of the organism were observed at 30-35$^{\circ}C$, and around pH 7.0, respectively. The efficiency of various sugars and organic acids on hydrogen evolution as electron donors by the organism was examined. Among them, higher rates of hydrogen evolution were observed with sugars such as glucose or fructose and organic acids such as alate or pyruvate. From the result, it was evident that Rhodobacter sphaeroides KS56 had a great capacity of utilizing various kinds of reduced carbon compounds as electron donors.
A gene, $phbC_{2.4.1}$ encoding poly-3-hydroxybutyric acid (PHB) synthase of Rhodobacter sphaeroides 2.4.1 was cloned by employing heterologous expression in Escherichia coli. R. sphaeroides chromosomal DNA partially digested with MboI was cloned in pUC19 followed by mobilization into E. coli harbouring $phbA,B_{AC}$ in pRK415, which code for ${\beta}$-ketothiolase and acetoacetyl CoA reductase of Alcaligenes eutrophus, respectively. Two E. coli clones carrying R. sphaeroides chromosomal fragment of $phbC_{2.4.1}$ in pUC19 were selected from ca. 10,000 colonies. The PHB-producing colonies had an opaque white appearance due to the intracellular accumulation of PHB. The structure of PHB produced by the recombinant E. coli as well as from R. sphaeroides 2.4.1 was confirmed by [$H^{+}$]-nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy. Restriction analysis of the two pUC19 clones revealed that one insert DNA fragment is contained as a part of the other cloned fragment. An open reading frame of 601 amino acids of $phbC_{2.4.1}$ with approximate M.W. of 66 kDa was found from nucleotide sequence determination of the 2.8-kb SaiI-PstI restriction endonuclease fragment which had been narrowed down to support PHB synthesis through heterologous expression in the E. coli harbouring $phbA,B_{AC}$. The promoter (s) of the $phbC_{2.4.1}$ were localized within a 340-bp DNA region upstream of the $phbC_{2.4.1}$ start codon according to heterologous expression analysis.
The cellular fatty acid composition is important for metabolic plasticity in Rhodobacter sphaeroides. We explored the effects of changing the cellular ratio of unsaturated fatty acids (UFAs) to saturated fatty acids (SFAs) in R. sphaeroides by overexpressing several key fatty acid biosynthetic enzymes through the use of expression plasmid pRK415. Bacteria containing the plasmid pRKfabI1 with the fabI1 gene that encodes enoyl-acyl carrier protein (ACP) reductase showed a reduction in the cellular UFA to SFA ratio from 4 (80% UFA) to 2 (65% UFA) and had decreased membrane fluidity and reduced cell growth. Additionally, the ratio of UFA to SFA of the chromatophore vesicles from pRKfabI1-containing cells was similarly lowered, and the cell had decreased levels of light-harvesting complexes, but no change in intracytoplasmic membrane (ICM) content or photosynthetic (PS) gene expression. Both inhibition of enoyl-ACP reductase with diazaborine and addition of exogenous UFA restored membrane fluidity, cell growth, and the UFA to SFA ratio to wild-type levels in this strain. R. sphaeroides containing the pRKfabB plasmid with the fabB gene that encodes the enzyme β-ketoacyl-ACP synthase I exhibited an increased UFA to SFA ratio from 4 (80% UFA) to 9 (90% UFA), but showed no change in membrane fluidity or growth rate relative to control cells. Thus, membrane fluidity in R. sphaeroides remains fairly unchanged when membrane UFA levels are between 80% and 90%, whereas membrane fluidity, cell growth, and cellular composition are affected when UFA levels are below 80%.
5-aminolevulinic acid (ALA) is a representative photosensitizer used in numerous fields including cancer diagnosis and treatment. In this study, experiments were conducted to optimize the growth of Rhodobacter sphaeroides and production of ALA through LED irradiation of various wavelengths, addition of organic acid precursors of ALA, and changes in glucose concentration. After 72 h cultivation, the 850 nm wavelength LED irradiated at the same light intensity as the incandescent lamp increased the growth of R. sphaeroides and the production of ALA about 1.5- and 1.8-fold as compared with the control, respectively (p <0.0001 and p <0.0001). As a result of culturing R. sphaeroides by irradiating an LED with a wavelength of 850 nm after adding organic acid to the final concentration of 5 mM in culture medium, the production of ALA was increased about 2.8-fold in medium supplemented with pyruvic acid compared with the control (p <0.0001). In addition, the growth of the strain and the production of ALA were increased about 2.9- and 3.4-fold in medium supplemented with 40 mM glucose compared to the control which added only 5 mM pyruvic acid, respectively (p <0.0001 and p <0.0001). The yield of ALA per cell dry mass was about 1.4 folds higher than that of the control in 20 and 40 mM glucose, respectively (p <0.001). In conclusion, the growth of R. sphaeroides and production of ALA were increased by 850 nm wavelength LED irradiation. It also optimized the growth of R. sphaeroides and production of ALA through organic acid addition and glucose concentration changes.
The photoheterotrophic $H_2$ production of Rhodobacter sphaeroides was significantly increased through disruption of the genes coding for uptake hydrogenase and poly-${\beta}$-hydroxybutyrate (PHB) synthase (Lee et al., Appl. Microbiol. Biotechnol. 60: 147-153, 2002). In this work, we further removed the B800-850 light-harvesting (LH) complex from the strain and found an increase in $H_2$ production at the light-saturating cell growth (${\ge}10$ Watts $[W]/m^2$). Neither the mutant nor the wild-type produced more $H_2$ at the brighter light. Accordingly, light does not appear to be limited for the $H_2$ production by the presence of B800-850. However, increase in the level of the spectral complexes resulted in decrease of $H_2$ production. Thus, although the B875 is essential for light harvesting, the consumption of cellular energy for the synthesis of B800-850 and the surplus LH complexes may reduce the energy flow into the $H_2$ production of R. sphaeroides.
Liu, Shuli;Li, Xiangkun;Zhang, Guangming;Zhang, Jie
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.25
no.11
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pp.1920-1927
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2015
This study aimed to optimize four factors affecting biomass accumulation and 5-aminolevulinic acid (ALA) yield together with pollutants removal in Rhodobacter sphaeroides wastewater treatment. Results showed that it was feasible to produce biomass and ALA in R. sphaeroides wastewater treatment. Microaerobic, 1,000-3,000 lux, and pH 7.0 were optimal conditions for the highest ALA yield of 4.5 ± 0.5 mg/g-biomass. Under these conditions, COD removal and biomass production rate were 93.3 ± 0.9% and 31.8 ± 0.5 mg/l/h, respectively. In addition, trace elements Fe2+, Mg2+, Ni2+, and Zn2+ further improved the ALA yield, COD removal, and biomass production rate. Specifically, the highest ALA yield (12.5 ± 0.6 mg/g-biomass) was achieved with Fe2+ addition.
To find out the growth conditions for the maximum activity of nitrogenase which catalyzes nitrogen fixation in Rhodobacter sphaeroides, the promoter activities of nifA and nifH were analyzed and the results indicated that expression of both nifA and nifH was increased in response to deprivation of both O2 concentration and nitrogen source. The nifA mutant was constructed by deleting the gene to investigate the effect of NifA, the transcriptional regulator, on the nifH and nifA expression in R. sphaeroides. Analysis of expression of nif genes using the nifA::lacZ and nifH::lacZ fusions in the nifA mutant revealed that NifA acts as a positive activator for nifH and an autoregulator in its own expression. The promoter activities of nifA and nifH in the prrA mutant grown under anaerobic and ${NH_4}^+$-free conditions were derepressed, comparing with those of the wild-type grown under the same conditions, indicating that the prrA product acts as a positive regulator in expression of nifA and nifH.
For the photoproduction of molecular hydrogen by photosynthetic bacteria in outdoor conditions, we constructed automatically controlled semi-continuous culture system. When the amount of hydrogen gas produced can be measured by a gas meter with a pulse generator, the same amount of substrate consumed for hydrogen production could be supplied by micro pump related with timers. Using the apparatus, we examined hydrogen production with immobilized cells of Rhodopseudomonas sPhaeroides B6 in outdoor conditions. In spite of severe fluctuation of weather and illumination, the culture was maintained under good control with regard to hydrogen productivity. It was possible to automate the semi-continuous outdoor culture of photosynthetic bacteria for hydrogen production.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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