Kim, Jin Hee;Son, Pal Won;Kim, Sung Han;Park, Young Je;Lee, Ki Young
The Korean Journal of Malacology
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v.30
no.3
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pp.211-218
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2014
Spermatid differentiations during spermiogenesis and sperm ultrastructures in male Mercenaria stimpsoni were investigated by transmission electron microscopic observations. In the early stage of the spermatid during spermiogenesis, a few granules and a proacrosomal granule, which is formed by the Golgi complex, become a proacrosomal vesicle. Consequently, it becomes an acrosome by way of the process of acrosome formation. The morphologies of the sperm nucleus type and the acrosome of this species have a curved cylindrical type and cap shape, respectively. The spermatozoon is approximately $48-51{\mu}m$ in length including a curved cylinderical sperm nucleus (about $4.18{\mu}m$ long), an acrosome (about $0.52{\mu}m$ in length) and tail flagellum ($42-45{\mu}m$ long). As some ultrastructural characteristics of the acrosomal vesicle, the peripheral parts of two basal rings show electron opaque part (region), while the apex part of the acrosome shows electron lucent part (region). These charateristics of the sperm belong to the family Veneridae in the subclass Heterodonta, unlike a characteristic of the subclass Pteriomorphia showing all part of the acrosome being composed of electron opaque part (region). Therefore, it is easy to distinguish the families or the subclasses by the acrosome structures. Exceptionally, In particular, a cylinder-like nucleus of the sperm is curved (the angle of the nucleus is about $80^{\circ}$), as seen in some species of Veneridae (range from $0^{\circ}$ to $80^{\circ}$). The number of mitochondria in the midpiece of the sperm of this species are four, as one of common characteristics appeared in most species except for a few species in Veneridae in the subclass Heterodonta. Cross-sectioned axoneme of the sperm tail flagellum shows a 9+2 structure.
In this study, we used more reliable experimental materials and methods to detect the effects of osteopontin (OPN) on boar sperm in vitro capacitation, acrosome reaction, and fertilization efficiency. We reorganized and obtained the OPN protein of the porcine source. Immunofluorescence and Western blot show the localization and expression of the OPN protein before and after sperm capacitation. To determine whether OPN can affect sperm during sperm capacitation, we examined cyclic adenosine monophosphate (cAMP) concentrations after sperm capacitation, and the results showed that OPN significantly increased the cAMP concentration in sperm (p < 0.05). Flow cytometry showed that 0.1 ㎍/mL OPN-treated sperm had better acrosome reaction ability. In vitro fertilization (IVF) showed that 0.1 ㎍/mL OPN significantly increased the rate of embryo division. In conclusion, this study found that 0.1 ㎍/mL porcine OPN protein can significantly improve porcine capacitated sperm motility, cAMP concentration after capacitation sperm, acrosome reaction ability, and embryo division during IVF and provides new clues to explore the mechanism of OPN's function on sperm.
Kim, Sung Woo;Lee, Jae-Yeong;Kim, Chan-Lan;Ko, Yeong Gyu;Kim, Bongki
Journal of Animal Reproduction and Biotechnology
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v.37
no.1
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pp.55-61
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2022
The acrosome cap allows sperm to penetrate the egg membrane and produce male pronuclei within female chicken eggs, facilitating successful fertilization. Given this, it is important to establish practical methods for evaluating the integrity of the acrosome cap and thus the quality of the rooster's sperm. There are several established methods for evaluating the acrosomes of mammalian sperm, but none of these methods are suitable for evaluating the acrosome status of rooster spermatozoa. Therefore, a simplified method for evaluating the rooster acrosome is needed. Here we evaluated the usefulness of CBB (coomassie brilliant blue) staining of the acrosome at concentrations of 0.04%, 0.08%, and 0.3% CBB solutions. Our data revealed a clear staining pattern for intact acrosome caps at 0.04% and 0.08% CBB but not at 0.3% CBB. This protocol revealed differences in acrosome integrity between fresh and frozen rooster sperm smears suggesting that CBB staining may facilitate easier semen evaluation in roosters. This protocol allows for the accurate differential staining of acrosome cap in rooster spermatozoa.
This study was to examine whether the in vitro friability, motility and intact acrosome of frozen-thawed bovine and human sperm can be improved by adding Pentoxifylline (PF) or Fertilization Promoting Peptide (FPP). Human semen was frozen ultra-rapidly using Test yolk-buffer (TYB) freezing medium. Additive (PF, FPP) effects in frozen-thawed bovine and human sperm were analyzed by microscopic count for sperm motility and coomassie brilliant blue staining method f3r sperm acrosome intact. The in vitro motility of frozen-thawed bovine sperm with 5 mM PF treatment group (50.0%) was significantly higher than that of control (34.0%) (P<0.05). In the frozen-thawed bovine sperm was examined, the intact acrosome rate of 50 nM FPP treatment (49.0%) was significantly higher than those of control (30.0%) and 25 nM FPP (38.0%) treatment groups (P<0.01). In human semen, when in vitro motility of sperm with PF addition prior to freezing was examined, the result of 5 mM treatment group (51.0%) was significantly higher than those of control and 2.5 mM treatment group (39.0, 40.0%) (P<0.01). In addition, 50 nM (75.5%) FPP adding in all treatment procedures for human semen freezing (before freezing, freezing and after thawing) was significant effect on maintenance of the sperm intact acrosome percentage (control: 45.0; 25 nM: 53.0; 100 nM: 68.0%) (P<0.01). Also, the intact acrosome rate of human sperm with FPP (65.0%) was significantly higher than that with PF (43.0%) (P<0.05), although sperm motility was slightly higher in PF treatment group. These results suggest that improved sperm motility and intact acrosome of frozen thawed bovine and human sperm can be obtained by addition of PF or FPP, and that the enhanced in vitro viability, motility and intact acrosome can be obtained by addition of FPP in all semen freezing procedures.
Lin, S.C.;Chen, M.C.;Huang, A.J.;Salem, B.;Li, K.C.;Chou, K.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.13
no.6
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pp.748-756
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2000
Effects of xanthine (X), xanthine oxidase (XO), and catalase (C), $H_2O_2$, and carbohydrates on sperm capacitation, acrosome reaction, and fertilizing ability in vitro were examined. Glucose alone, but not fructose, supported the maximum rate of sperm capacitation and acrosome reaction. However, in the combination of X, XO, and C (XXOC) or $H_2O_2$, fructose alone also supported maximum capacitation, acrosome reaction, and fertilization. Either insufficient or excessive amounts of $H_2O_2$ decreased sperm capacitation and the acrosome reaction. In order to understand how glucose generates $H_2O_2$ or other reactive oxygen species in sperm cells, 6-aminonicotinamide, an inhibitor of the pentose-phosphate pathway (PPP), and apocynin, an inhibitor of NADPH oxidase, were added to sperm suspensions in glucose-containing medium. Results appeared that sperm capacitation, acrosome reaction, and fertilization were consequently inhibited by either one of these compounds. These inhibitory effects were nullified by addition of XXOC. These results support the hypothesis that glucose, in addition to being a substrate for glycolysis, facilitates sperm capacitation and the acrosome reaction by generating reactive oxygen species through G-6-P dehydrogenase and NADPH oxidase.
Spermatogenesis and taxonomic values of mature sperm morphology of in male Septifer (Mytilisepta) virgatus were investigated by transmission electron microscope observations. The morphologies of the sperm nucleus and the acrosome of this species are the cylinder shape and cone shape, respectively. Spermatozoa are approximately 45-50 ${\mu}m$ in length including a sperm nucleus (about 1.26 ${\mu}m$ long), an acrosome (about 0.99 ${\mu}m$ long), and tail flagellum (about 45-47 ${\mu}m$). Several electron-dense proacrosomal vesicles become later the definitive acrosomal vesicle by the fusion of several Golgi-derived vesicles. The acrosome of this species has two regions of differing electron density: there is a thin, outer electron-dense opaque region (part) at the anterior end, behind which is a thicker, more electron-lucent region (part). In genus Septifer in Mytilidae, an axial rod does not find and also a mid-central line hole does not appear in the sperm nucleus. However, in genus Mytilus in Mytilidae, in subclass Pteriomorphia, an axial rod and a mid-central line hole appeared in the sperm nucleus. These morphological differences of the acrosome and sperm nucleus between the genuses Septifer and Mytilus can be used for phylogenetic and taxonomic analyses as a taxonomic key or a significant tool. The number of mitochondria in the midpiece of the sperm of this species are five, as seen in subclass Pteriomorphia.
This stduy was carried out to investigate the effect of concentration of PC12 and washing of sperm of sperm motility and acrosome reaction, and the effect of sperm incubated in mTALP solution containing PC12 112.5$\mu\textrm{g}$/ml on development of follicular oocytes matured in vitro. The results obtained were as follows. 1. When fresh sperm was once washed and then incubated in mTALP solution containing 0, 75, 112.5 and 225$\mu\textrm{g}$/ml PC12 for 15minutes, 225$\mu\textrm{g}$/ml showed significantly higher percent of acrosome reacted sperm than 0, 75, 112.5 and 225$\mu\textrm{g}$/ml. 2. When once or twice washed fresh sperm was cultured in mTALP containing 112.5$\mu\textrm{g}$/ml PC12 for 15minutes, no-washing showed significantly higher percent of motile sperm than that once- and twice-washing showed significantly higher percent of acrosome reacted seprm than no- and once-washing. 3. When sperm was cultrued in mTALP containing PC12, 112.5$\mu\textrm{g}$/ml for 15minutes and then was cocultured with bovine follicular oocytes matured in vitro, 11.2 to 22.4% of the oocytes were coleaved to more than 2cell stage.
This study was carried out to obtain informations regarding the effect of N-acetyl-D-glucosamine in the LEY (lactoseegg yolk) diluent according to incubation time in 5 ml maxi-straw and the effects of freezing rate, thawing temperature and thawing time in the LEN (lactose-egg yolk and N-acetyl-D-glucosamine) diluent on acrosome morphology and motility of frozen-thawed boar sperm. The study showed that the LEN diluent was higher post-thaw NAR (normal apical ridge) acrosome than the LEY diluent for 0.5 h incubation at 37$^{\circ}C$. However, there were no differences between the LEN and LEY diluents on post-thaw sperm motility according to incubation time. The straws frozen from 5.0 cm (20$^{\circ}C$/min) to 17.0 cm (1$^{\circ}C$/min) above the liquid nitrogen surface did not show any significant differences on post-thaw sperm motility. However, the straws frozen above 5.0 cm from the liquid nitrogen surface were higher NAR acrosome than those frozen above 17.0 cm. The post-thaw percentages of motile sperm and NAR acrosome were significantly higher (p<0.05) for the maxi-straws submerged for 40 or 45 sec in a 52$^{\circ}C$ water bath than for 30, 35, 50 or 55 sec. The mean sample temperatures of maxi-straws after 40 or 45 sec submersion were 20.7 or 26.4$^{\circ}C$. In conclusion, the sample temperature of the thawed semen was very important for post-thaw sperm survival in the LEN diluent of 5 ml maxi-straw. When the temperature of the thawed semen was 20.7$^{\circ}C$, the percentages of motile sperm and NAR acrosome were highest.
Ultrastructural characteristics of the germ cells and accessory cells in testis during spermatogenesis and taxonomic values of mature sperm morphology of Ruditapes philippinarum were investigated by the transmission electron microscope and scanning electron microscope observations. The testis is the diffuse organ that consists of branching acini containing developing germ cells and accessory cells associated with spermatogenesis. The morphology of the spermatozoon is of the primitive type and is somewhat different to those of other bivalves. The morphologies of the sperm nucleus type and the acrosome shape of this species have a cylinderical type and a modified cone shape, respectively. As some ultrastructural characteristics of the acrosomal vesicle, the peripheral parts of two basal rings show electron opaque part, while the apex part of the acrosome shows electron lucent part. These characteristics of sperm belong to the family Veneridae in the subclass Heterodonta, unlike a characteristic of the subclass Pteriomorphia showing all part of the acrosome being composed of electron opaque part. In particular, a cylinder-like nucleus of the sperm is curved. The spermatozoon is approximately $48-51{\mu}m$ in length, including a long acrosome (about $2.4{\mu}m$ in length), a curved sperm nucleus (about $3.40{\mu}m$ in length), and a tail flagellum. The axoneme of the sperm tail shows a 9+2 structure.
Kim, Kye-seong;Roh, Sang-ho;Lee, Kang-nam;Lee, Byeong-chun;Hwang, Woo-suk
Korean Journal of Veterinary Research
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v.37
no.4
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pp.925-934
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1997
This study was directed at inducing the production of antibodies by immunizing heifers with bovine sperm antigen and on measuring the serum antibodies using indirect immunofluorescence assay(IFA) and agglutination test. The effect of antisperm antibodies on fertilizing capacity of bovine spermatozoa was evaluated. 1. Three heifers between 12- and 15- month old were immunized with bovine spermatozoa or phosphate-buffered saline. In heifers immunized with bovine spermatozoa serum IgG level was highest between 3 weeks and 5 weeks postimmunization detected by IFA. The antibody levels persisted through week 7 and slowly declined until week 20 and then antisperm antibodies were localized on spermatozoa. The fluorescent antisperm antibodies were detected at 2~20 weeks and at 6~9 weeks postinoculation on acrosome and tail, respectively. Among 21 sera from repeat breeder cows, only one cow has shown positive antisperm antibody response detected by IFA. 2. In spite of vital rate of bovine sperm after swim-up was not significantly affected by different concentration of antisperm antibodies in sera, the numbers of bovine sperm after swim-up were significantly reduced in proportion to the increased concentration of antibodies. Above 1/512 dilution of antibody neither influence on vital rate and numbers of bovine sperm nor sperm agglutination after swim-up. The study has also shown that the vital rate and number of sperm after swim-up and capacitation were also significantly reduced by the addition of antisperm antibodies. Although antisperm antibodies did not influence on the acrosome reaction rate of sperm during swim-up, did significantly reduce the sperm acrosome reaction rate after capacitation. The studies have resulted that the bovine antisperm antibodies can prevent the sperm motility by agglutination and block the capacitation and acrosome reaction of bovine sperm.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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