Microdevices have been used as effective experimental tools for the rapid and multiplexed analysis of individual cells in single-cell assays. Technological advances for miniaturizing such systems and the optimization of delicate controls in micron-sized space homing cells have motivated many researchers from diverse fields (e.g., cancer research, stem cell research, therapeutic agent development, etc.) to employ microtools in their scientific research. Microtools allow high-throughput, multiplexed analysis of single cells, and they are not limited by the lack of large samples. These characteristics may significantly benefit the study of immune cells, where the number of cells available for testing is usually limited. In this review, I present an overview of several microtools that are currently available for single-cell analyses in two popular formats: microarrays and microfluidic microdevices. Then, I discuss the potential to study human immunology on the single-cell level, and I highlight several recent examples of immunoassays performed with single-cell microdevice assays. Finally, I discuss the outlook for the development of optimized assay platforms to study human immune cells. The development and application of microdevices for studies on single immune cells presents novel opportunities for the qualitative and quantitative characterization of immune cells and may lead to a comprehensive understanding of fundamental aspects of human immunology.
Molecular imaging is used to improve the disease diagnosis, prognosis, monitoring of treatment in living subjects. Numerous molecular targets have been developed for various cellular and molecular processes in genetic, metabolic, proteomic, and cellular biologic level. Molecular imaging modalities such as Optical Imaging, Magnetic Resonance Imaging (MRI), Positron Emission Tomography (PET), Single Photon Emission Computed Tomography (SPECT), and Computed Tomography (CT) can be used to visualize anatomic, genetic, biochemical, and physiologic changes in vivo. For in vivo cell imaging, certain cells such as cancer cells, immune cells, stem cells could be labeled by direct and indirect labeling methods to monitor cell migration, cell activity, and cell effects in cell-based therapy. In case of cancer, it could be used to investigate biological processes such as cancer metastasis and to analyze the drug treatment process. In addition, transplanted stem cells and immune cells in cell-based therapy could be visualized and tracked to confirm the fate, activity, and function of cells. In conventional molecular imaging, cells can be monitored in vivo in bulk non-invasively with optical imaging, MRI, PET, and SPECT imaging. However, single cell imaging in vivo has been a great challenge due to an extremely high sensitive detection of single cell. Recently, there has been great attention for in vivo single cell imaging due to the development of single cell study. In vivo single imaging could analyze the survival or death, movement direction, and characteristics of a single cell in live subjects. In this article, we reviewed basic principle of in vivo molecular imaging and introduced recent studies for in vivo single cell imaging based on the concept of in vivo molecular imaging.
CRISPR/Cpf1 has emerged as a new CRISPR-based genome editing tool because, in comparison with CRIPSR/Cas9, it has a different T-rich PAM sequence to expand the target DNA sequence. Single-base editing in the microbial genome can be facilitated by oligonucleotide-directed mutagenesis (ODM) followed by negative selection with the CRISPR/Cpf1 system. However, single point mutations aided by Cpf1 negative selection have been rarely reported in Corynebacterium glutamicum. This study aimed to introduce an amber stop codon in crtEb encoding lycopene hydratase, through ODM and Cpf1-mediated negative selection; deficiency of this enzyme causes pink coloration due to lycopene accumulation in C. glutamicum. Consequently, on using double-, triple-, and quadruple-base-mutagenic oligonucleotides, 91.5-95.3% pink cells were obtained among the total live C. glutamicum cells. However, among the negatively selected live cells, 0.6% pink cells were obtained using single-base-mutagenic oligonucleotides, indicating that very few single-base mutations were introduced, possibly owing to mismatch tolerance. This led to the consideration of various target-mismatched crRNAs to prevent the death of single-base-edited cells. Consequently, we obtained 99.7% pink colonies after CRISPR/Cpf1-mediated negative selection using an appropriate single-mismatched crRNA. Furthermore, Sanger sequencing revealed that single-base mutations were successfully edited in the 99.7% of pink cells, while only two of nine among 0.6% of pink cells were correctly edited. The results indicate that the target-mismatched Cpf1 negative selection can assist in efficient and accurate single-base genome editing methods in C. glutamicum.
Comparative study of retinal structure in two Korean endemic freshwater fishes, Zacco koreanus and Pseudobagrus koreanus, was carried out by light and scanning electron microscopy. In the visual cell layer comprised of cone cells and rod cells, the cone cells showed a distinct difference between both species. Z. koreanus had two types of cone cells, single cone cells including a long single and short single cone cells, and double cone cells, whereas P. koreanus had only one type of single cone cells having no its short single and long single cones. Meanwhile, the cone cells of Z. koreanus were arranged in more compact-rowed pattern, but it was more loose and irregular in P. koreanus. Based on field observation, Z. koreanus is mainly a epipelagic or sometimes benthopelagic and a diurnal fish with a round and large eye, while P. koreanus is a demersal and nocturnal fish with an oval and small eye. Therefore, the difference in the retinal structure of two species seems to be closely related to their ecological habitats.
The Transactions of The Korean Institute of Electrical Engineers
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v.58
no.1
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pp.35-41
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2009
This paper proposes a stand alone type single-phase fuel cells micro-source with a voltage sag compensator for compensating the ac output voltage variations (sag or swell) of micro-source. The proposed micro-source is consist of a PEM(polymer electrolyte membrane) fuel cells simulator, a full bridge de converter, a 60Hz PWM(pulse width modulation) VSI(voltage source inverter), and a voltage sag compensator. Voltage sag compensator is similar to the configuration of hybrid series active power filter, and it is directly connected to micro-source through the injection transformer. Compensation algorithm of a voltage sag compensator adopts a single phase p-q theory. Effectiveness of the proposed the system is verified by the PSIM(power electronics simulation tool) simulation in the steady state and transient state which the proposed system is able to simultaneously compensate the harmonic current and source voltage sag or swell.
In situ detection of RNAs is becoming increasingly important for analysis of gene expression within and between intact cells in tissues. International genomics efforts are now cataloging patterns of RNA transcription that play roles in cell function, differentiation, and disease formation, and they are demon-strating the importance of coding and noncoding RNA transcripts in these processes. However, these techniques typically provide ensemble averages of transcription across many cells. In situ hybridization-based analysis methods complement these studies by providing information about how expression levels change between cells within normal and diseased tissues, and they provide information about the localization of transcripts within cells, which is important in understanding mechanisms of gene regulation. Multi-color, single-molecule fluorescence in situ hybridization (smFISH) is particularly useful since it enables analysis of several different transcripts simultaneously. Combining smFISH with immunofluorescent protein detection provides additional information about the association between transcription level, cellular localization, and protein expression in individual cells.
Senescent cells that gradually accumulate during aging are one of the leading causes of aging. While senolytics can improve aging in humans as well as mice by specifically eliminating senescent cells, the effect of the senolytics varies in different cell types, suggesting variations in senescence. Various factors can induce cellular senescence, and the rate of accumulation of senescent cells differ depending on the organ. In addition, since the heterogeneity is due to the spatiotemporal context of senescent cells, in vivo studies are needed to increase the understanding of senescent cells. Since current methods are often unable to distinguish senescent cells from other cells, efforts are being made to find markers commonly expressed in senescent cells using bulk RNA-sequencing. Moreover, single-cell RNA (scRNA) sequencing, which analyzes the transcripts of each cell, has been utilized to understand the in vivo characteristics of the rare senescent cells. Recently, transcriptomic cell atlases for each organ using this technology have been published in various species. Novel senescent cells that do not express previously established marker genes have been discovered in some organs. However, there is still insufficient information on senescent cells due to the limited throughput of the scRNA sequencing technology. Therefore, it is necessary to improve the throughput of the scRNA sequencing technology or develop a way to enrich the rare senescent cells. The in vivo senescent cell atlas that is established using rapidly developing single-cell technologies will contribute to the precise rejuvenation by specifically removing senescent cells in each tissue and individual.
Son, Young-Bum;Jeong, Yeon Ik;Jeong, Yeon Woo;Hossein, Mohammad Shamim;Hwang, Woo Suk
Animal Bioscience
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v.35
no.9
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pp.1360-1366
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2022
Objective: The present study analyzed the influence of co-transferring embryos with high and low cloning efficiencies produced via somatic cell nuclear transfer (SCNT) on pregnancy outcomes in dogs. Methods: Cloned dogs were produced by SCNT using donor cells derived from a Tibetan Mastiff (TM) and Toy Poodle (TP). The in vivo developmental capacity of cloned embryos was evaluated. The pregnancy and parturition rates were determined following single transfer of 284 fused oocytes into 21 surrogates and co-transfer of 47 fused oocytes into four surrogates. Results: When cloned embryos produced using a single type of donor cell were transferred into surrogates, the pregnancy and live birth rates were significantly higher following transfer of embryos produced using TP donor cells than following transfer of embryos produced using TM donor cells. Next, pregnancy and live birth rates were compared following single and co-transfer of these cloned embryos. The pregnancy and live birth rates were similar upon co-transfer of embryos and single transfer of embryos produced using TP donor cells but were significantly lower upon single transfer of embryos produced using TM donor cells. Furthermore, the parturition rate for TM dogs and the percentage of these dogs that remained alive until weaning was significantly higher upon co-transfer than upon single transfer of embryos. However, there was no difference between the two embryo transfer methods for TP dogs. The mean birth weight of cloned TM dogs was significantly higher upon single transfer than upon co-transfer of embryos. However, the body weight of TM dogs did not significantly differ between the two embryo transfer methods after day 5. Conclusion: For cloned embryos with a lower developmental competence, the parturition rate and percentage of dogs that remain alive until weaning are increased when they are co-transferred with cloned embryos with a greater developmental competence.
The present study was done to investigate the effect of co-culturing muscle satellite cells (MSCs) and intramuscular preadipocytes (IPs) on the differentiation of adipocytes and muscle cells isolated from Korean native cattle. MSCs and IPs were single-cultured in 10% fetal bovine serum/Dulbecco's modified Eagles medium (FBS/DMEM) for 48 h followed by culturing in 5% FBS/DMEM as the growth media. Then, the growth media was replaced by differentiation media composed of 2% FBS/DMEM without any additives for the single- or co-culture of muscle cells and intramuscular adipocytes to induce the differentiation of both cell types. Cell differentiation was measured by morphological investigation and cytosolic enzyme analysis of glycerol-3-phosphate dehydrogenase (GPDH) for the adipocytes and creatine kinase (CK) for the muscle cells. In the morphological test, the presence of muscle cells did not stimulate adipocyte differentiation showing more differentiation of the adipocytes in the single-culture compared to the co-culture condition. However, the differentiation of muscle cells was promoted by adipocytes in the co-culture. The results of the enzymatic analysis were highly associated with the morphological results with a statistically higher GPDH activity (p < 0.05) appearing in the single-culture than in the co-culture, whereas the opposite was true for the CK activity of the muscle cells (p < 0.05). By manipulating in vivo the milieu using a co-culture, we could detect the difference in the rate of cell differentiation and suggest that a co-culture system is a more reliable and precise technique compared to a single-culture. Further studies on various co-culture trials including supplementation of differentiating substances, gene expression analysis, etc. should be done to obtain practical and fundamental data.
Yi, Jaeu;Jung, Jisun;Han, Daehee;Surh, Charles D.;Lee, You Jeong
Molecules and Cells
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v.42
no.3
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pp.228-236
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2019
CD4 T cells differentiate into $ROR{\gamma}t/IL$-17A-expressing cells in the small intestine following colonization by segmented filamentous bacteria (SFB). However, it remains unclear whether SFB-specific CD4 T cells can differentiate directly from naïve precursors, and whether their effector differentiation is solely directed towards the Th17 lineage. In this study, we used adoptive T cell transfer experiments and showed that naïve CD4 T cells can migrate to the small intestinal lamina propria (sLP) and differentiate into effector T cells that synthesize IL-17A in response to SFB colonization. Using single cell RT-PCR analysis, we showed that the progenies of SFB responding T cells are not uniform but composed of transcriptionally divergent populations including Th1, Th17 and follicular helper T cells. We further confirmed this finding using in vitro culture of SFB specific intestinal CD4 T cells in the presence of cognate antigens, which also generated heterogeneous population with similar features. Collectively, these findings indicate that a single species of intestinal bacteria can generate a divergent population of antigen-specific effector CD4 T cells, rather than it provides a cytokine milieu for the development of a particular effector T cell subset.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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