Here, we show that an endophytic bacterial strain, Enterobacter asburiae B1 exhibits the ability to elicit ISR in cucumber, tobacco and Arabidopsis thaliana. This indicates that strain B1 has a widespread ability to elicit ISR on various host plants. In this study, E. asburiae strain B1 did not show antifungal activity against tested major fungal pathogens, Colletotrichum orbiculare, Botrytis cinerea, Phytophthora capsici, Rhizoctonia solani, and Fusarium oxysporum. Moreover, the siderophore production by E. asburiae strain B1 was observed under in vitro condition. In greenhouse experiments, the root treatment of strain B1 significantly reduced disease severity of cucumber anthracnose caused by fungal pathogen C. orbiculare compared to nontreated control plants. By root treatment of strain B1 more than 50% disease control against anthracnose on cucumber was observed in all greenhouse experiments. Simultaneously, under the greenhouse condition, the soil drench of strain B1 and a chemical inducer benzothiadiazole (BTH) to tobacco plants induced GUS activity which is linked with activation of PR promoter gene. Furthermore, in Arabidopsis thaliana plants the soil drench of strain B1 induced the defense gene expression of PR1 and PDF1.2 related to salicylic acid and jasmonic acid/ethylene signaling pathways, respectively. In this study, for the main focus on root colonization by strain B1 associated with defense responses, bacterial cells of strain B1 was tagged with the gfp gene encoding the green fluorescent protein in order to determine the colonization pattern of strain B1 in cucumber. The gfp-tagged B1 cells were found on root surface and internal colonization in root, stem, and leaf. In addition to this, the scanning electron microscopy observation showed that E. asburiae strain B1 was able to colonized cucumber root surface.
A phosphate-solubilizing bacterial strain isolated from Hippophae rhamnoides rhizosphere was identified as Rahnella sp. based on its phenotypic features and 16S rRNA gene sequence. The bacterial strain showed the growth characteristics of a cold-adapted psychrotroph, with the multiple plant growth-promoting traits of inorganic and organic phosphate solubilization, 1-aminocyclopropane-1-carboxylate-deaminase activity, ammonia generation, and siderophore production. The strain also produced indole-3-acetic acid, indole-3-acetaldehyde, indole-3-acetamide, indole-3-acetonitrile, indole-3-lactic acid, and indole-3-pyruvic acid in tryptophan-supplemented nutrient broth. Gluconic, citric and isocitric acids were the major organic acids detected during tricalcium phosphate solubilization. A rifampicin-resistant mutant of the strain exhibited high rhizosphere competence without disturbance to the resident microbial populations in pea rhizosphere. Seed bacterization with a charcoal-based inoculum significantly increased growth in barley, chickpea, pea, and maize under the controlled environment. Microplot testing of the inoculum at two different locations in pea also showed significant increase in growth and yield. The attributes of cold-tolerance, high rhizosphere competence, and broad-spectrum plant growth-promoting activity exhibited the potential of Rahnella sp. BIHB 783 for increasing agriculture productivity.
Saline or alkaline condition in soil inhibits growth of most crop plants and limits crop yields in many parts of the world. Augmenting an alkaline soil with alkali-tolerant bacteria capable of promoting plant growth can be a promising approach in expanding fertile agricultural land. Near-shore environments of Dokdo Island, a remote island located in the middle of the East Sea, appear to have patches of seawater-influenced haloalkaline soil that is unsupportive for growth of conventional plants. To exploit metabolic capacities of alkali-tolerant bacteria for promoting plant growth in saline or alkaline soils, we isolated of alkali-tolerant bacteria from near-shore soil samples in Dokdo and investigated properties of the isolates. Alkali-tolerant bacteria were selectively cultivated by inoculating suspended and diluted soil samples on a plate medium adjusted to pH 10. Fifty colonies were identified based on their $GTG_5$-PCR genomic fingerprints and 16S rRNA gene sequences. Most isolates were affiliated to alkali-tolerant and/or halotolerant genera or species of the phyla Firmicutes (68%), Proteobacteria (30%) and Actinobacteria (2%). Unlike the typical soil bacterial flora in the island, alkali-tolerant isolates belonged to only certain taxa of terrestrial origin under the three phyla, which have traits of plant growth promoting activities including detoxification, phytohormone production, disease/pest control, nitrogen-fixation, phosphate solubilization or siderophore production. However, Firmicutes of marine origin generally dominated the alkali-tolerant community. Results of this study suggest that haloalkaline environments like Dokdo shore soils are important sources for plant growth promoting bacteria that can be employed in bio-augmentation of vegetation-poor alkaline soils.
Ahn, Seong-Ho;Kim, Dayeon;Park, Byeng-Yong;Han, Ji Hee;Lee, Sang-Yeop
Korean Journal of Organic Agriculture
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v.29
no.2
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pp.257-273
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2021
Koreans consume cham-chwi (Aster scaber thunb.) as a common vegetable in a meal because of its bitter taste and rich flavor. In addition, it is the crop with the most residual pesticides detected in the last five years. Among the detected pesticides, the most common was azoxystrobin, which is a drug used primarily to prevent the leaf spot disease of A. scaber caused by Septoria sp.. We isolated the microorganisms that antifungal activity against Septoria sp.. The optimum incubation conditions (temperature, pH and growth medium) were examined for the growth of the isolates. Additionally, cellulase and protease activity and siderophore production ability were also examined. According to 16S rRNA sequencing of the isolate was affiliated to Paenibacillus polymyxa JE201. Largest inhibition zone measuring up to 9.2 mm was observed for P. polymyxa JE201 after 7 days of inoculation. P. polymyxa JE201 strain showed antifungal activity against various fungal phytopathogens Altanaria sp., Botrytis cinerea, Colletotrichum acutatum, Fusarium oxysporum, Phytophthora capsici, Ph. drechesleria, Rhizoctonia solani and Stemphylium sp.. Based on these observations, P. polymyxa. JE201 can be used as a promising biocontrol agent for preventing the leaf spot disease and other phytopathogens.
In this study Streptomyces strains were isolated from soils and their antifungal activities and involved mechanisms were investigated. Among over 400 isolates of actinomycetes, Streptomyces costaricanus HR391 was selected as a potential antagonist to control several plant-pathogenic fungi. S. costaricanus HR391 inhibited mycelial growth of Fusarium oxysporum f. sp. raphani, F. oxysporum f. sp. niveum, F. oxysporum f. sp. lycopersici, and Rhizoctonia solani by 26.5, 26.2, 21.2, and 23.8%, respectively compared to those of uninoculated control after 7-day incubation on PDB medium. S. costaricanus HR391 produced $89{\mu}M$ of siderphore, and showed fungal cell wall-degrading activity including $0.46{\mu}mol/min/mg$ of chitinase and $0.83{\mu}mol/min/mg$ of ${\beta}$-1,3 glucanase. S. costaricanus HR391 secreted 87.49 mg/L of rhamnolipid, and produced 9.49 mg/L and 4.3 mM of lipopeptide, iturin A and surfactin, respectively, all they are membrane-disrupting biosurfactants. It also produced antimicrobial peptide and antibiotics phenazine. In addition to antifungal substances, S. costaricanus HR391 secreted plant growth-promoting phytohormones, zeatin, gibberellins and IAA. These results suggest that S. costaricanus HR391 may be utilized as an environment-friendly biocontrol agent against some important pathogenic fungi.
The cellulase gene of Bacillus licheniformis K11 which has plant growth-promoting activity by auxin and antagonistic ability by siderophore was cloned in pUC18 using PCR employing heterologous primers. The 1.6kb PCR fragment contained the full sequence of the cellulase gene, denoted celW which has been reported to encode a 499 amino acid protein. Similarity search in protein data base revealed that the cellulase from B. licheniformis K11 was more than 97% identical in amino acid sequence to those of various Bacillus spp. The cellulase protein from B. licheniformis K11, overproduced in E. coli DH5${\alpha}$ by the lac promoter on the vector, had apparent molecular weight of 55 kDa upon CMC-SDS-PAGE analysis. The protein not only had enzymatic activity toward carboxymethyl-cellulose (CMC), but also was able to degrade insoluble cellulose, such as Avicel and filter paper (Whatman$^{\circledR}$ No. 1). In addition, the cellulase could degrade a fungal cell wall of Phytophthora capsici. Consequently B. licheniformis K11 was able to suppress the peperblight causing P. capsici by its cellulase. Biochemical analysis showed that the enzyme had a maximum activity at 60$^{\circ}C$ and pH 6.0. Also, the enzyme activity was activated by Co$^{2+}$ of Mn$^{2+}$ but inhibited by Fe$^{3+}$ or Hg$^{2+}$. Moreover, enzyme activity was not inhibited by SDS or sodium azide.
This research was executed to select beneficial antagonists from digestive organ of Allomyrina dichotoma larva that can be put on environment friendly control against phytopathogenic fungi. We screened 38 bacterial strains inhibiting mycelial growth against eight plant pathogens through dual culture assay. The 10 strains among 38 bacterial strains were selected as beneficial microbes showing antifungal activity against Botrytis cinerea, Plasmodiophora brassicae, Colletotrichum acutatum and Phytophthora capsici through under greenhouse pot trials. The 10 bacterial strains that shown strongest antifungal activity were classified into 3 genera and 10 species, and identified as the genus Bacillus (DM146, DM152, DH2, and DH16), Paenibacillus (DF30, DH14, and DM142) and Streptomyces (DF137, DM48, and DH92) by morphological characteristics and 16s rRNA gene sequence. The 10 bacterial strains had solubilizing activity of insoluble phosphates, production of IAA (indole-3-acetic acid), β-1,3-glucanase and protease. Among the 10 bacterial strains, DM152 strain was produced significant enhancement of all growth parameters of chili pepper and tomato seedlings under greenhouse condition. Thus, this study demonstrated that gut microbes of Allomyrina dichotoma larva will be useful as a potential biocontrol agent against plant pathogens and biofertilizer.
In the pursuit of sustainable and environmentally-friendly agricultural practices, we conducted an extensive study on the rhizosphere bacteria inhabiting soils that have been devoid of chemical fertilizers for an extended period exceeding 40 years. Through this investigation, we isolated a total of 80 species of plant growth-promoting rhizosphere bacteria and assessed their potential to enhance plant growth. Among these isolates, Burkholderia cepacia CD2 displayed remarkable plant growth-promoting activity, making it an optimal candidate for further analysis. Burkholderia cepacia CD2 exhibited a range of beneficial characteristics conducive to plant growth, including phosphate solubilization, siderophore production, denitrification, nitrate utilization, and urease activity. These attributes are well-known to positively influence the growth and development of plants. To validate the taxonomic classification of the strain, 16S rRNA gene sequencing confirmed its placement within the Burkholderia genus, providing further insights into its phylogenetic relationship. To delve deeper into the potential mechanisms underlying its plant growth-promoting properties, we sought to confirm the presence of specific genes associated with plant growth promotion in CD2. To achieve this, whole genome sequencing (WGS) was performed by Plasmidsaurus Inc. (USA) utilizing Oxford Nanopore technology (Abingdon, UK). The WGS analysis of the genome of CD2 revealed the existence of a subsystem function, which is thought to be a pivotal factor contributing to improved plant growth. Based on these findings, it can be concluded that Burkholderia cepacia CD2 has the potential to serve as a microbial fertilizer, offering a sustainable alternative to chemical fertilizers.
The growth of germ tube of Fusarium oxysporum f. sp. cucumerinum was remarkably inhibited on the water agar treated with 100ppm of Fe-EDDHA, a synthetic iron chelating agent, whereas germination rate of microconidia did not show much differences compare with that of non treated water agar. Both of the germination and the germ tube elongation of microconidia were suppressed significantly in King's B agar by the bacterial siderophores produced by Pseudomonas putida. The highest germination of the chlamydospores was obtained in the soil added with $0.25\%$ of glucose plus $0.05\%$ of asparagine. The chlamydospores of cucumber wil fungus germinated about $14\%$ in rhizosphere soil of 2 day-old cucumber seedlings within 48 hours, and the germination was enhanced notably in rhizosphere soil of 10 day-old seedling. But the rates of germination was not increased according to cucumber growth age after 10 day-old seedling. The effect of P. putida and Fe-EDDHA on the germination on chlamydospores in conducive soil was not pronounced in the non-rhizosphere soil added with nutrient. However, the germination was suppressed significantly both in rhizosphere soil and in rhizosphere soil added with nutrient. The suppression of chlamydospore germination was greater in the bacteria inoculated soil than that in Fe-EDDHA treated soil.
Fluorescent pseudomonads have been isolated from halophytes, mesophytes, and xerophytes of Pakistan. Among these, eight isolates, GS-1, GS-3, GS-4, GS-6, GS-7, FS-2 (cactus), ARS-38 (cotton), and RP-4 (para grass), showed antifungal activity and were selected for detailed study. Based on biochemical tests and 16S rRNA gene sequences, these were identified as strains of P. chlororaphis subsp. chlororaphis and aurantiaca. Secondary metabolites of these strains were analyzed by LC-MS. Phenazine-1-carboxylic acid (PCA), 2-hydroxy-phenazine, Cyclic Lipopeptide (white line-inducing principle (WLIP)), and lahorenoic acid A were detected in variable amounts in these strains. P. aurantiaca PB-St2 was used as a reference as it is known for the production of these compounds. The phzO and PCA genes were amplified to assure that production of these compounds is not an artifact. Indole acetic acid production was confirmed and quantified by HPLC. HCN and siderophore production by all strains was observed by plate assays. These strains did not solubilize phosphate, but five strains were positive for zinc solubilization. Wheat seedlings were inoculated with these strains to observe their effect on plant growth. P. aurantiaca strains PB-St2 and GS-6 and P. chlororaphis RP-4 significantly increased both root and shoot dry weights, as compared with uninoculated plants. However, P. aurantiaca strains FS-2 and ARS-38 significantly increased root and shoot dry weights, respectively. All strains except PB-St2 and ARS-38 significantly increased the root length. This is the first report of the isolation of P. aurantiaca from cotton and cactus, P. chlororaphis from para grass, WLIP and lahorenoic acid A production by P. chlororaphis, and zinc solubilization by P. chlororaphis and P. aurantiaca.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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