Lee, Jeoung Eun;Chung, Young Gie;Eum, Jin Hee;Lee, Yumie;Lee, Dong Ryul
BMB Reports
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제49권4호
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pp.197-198
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2016
Although three different research groups have reported successful derivations of human somatic cell nuclear transfer-derived embryonic stem cell (SCNT-ESC) lines using fetal, neonatal and adult fibroblasts, the extremely poor development of cloned embryos has hindered its potential applications in regenerative medicine. Recently, however, our group discovered that the severe methylation of lysine 9 in Histone H3 in a human somatic cell genome was a major SCNT reprogramming barrier, and the overexpression of KDM4A, a H3K9me3 demethylase, significantly improved the blastocyst formation of SCNT embryos. In particular, by applying this new approach, we were able to produce multiple SCNT-ES cell lines using oocytes obtained from donors whose eggs previously failed to develop to the blastocyst stage. Moreover, the success rate was closer to 25%, which is comparable to that of IVF embryos, so that our new human SCNT method seems to be a practical approach to establishing a pluripotent stem cell bank for the general public as well as for individual patients.
Mitochondrial respiratory defect is a key bioenergetics feature of hepatocellular carcinoma (HCC) cells. However, their involvement and roles in HCC development and progression remain unclear. Recently, we identified 10 common mitochondrial defect (CMD) signature genes that may be induced by retrograde signaling-mediated transcriptional reprogramming in response to HCC mitochondrial defects. HCC patients with enriched expression of these genes had poor prognostic outcomes, such as shorter periods of overall survival and recurrence-free survival. Nuclear protein 1 (NUPR1), a key transcription regulator, was up-regulated by Ca++-mediated retrograde signaling. NUPR1-centric network analysis and a biochemical promoter-binding assay demonstrated that granulin (GRN) is a key downstream effector of NUPR1 for the regulation of HCC cell invasiveness; association analysis of the NUPR1-GRN pathway supported this conclusion. Mitochondrial respiratory defects and retrograde signaling thus play pivotal roles in HCC progression, highlighting the potential of the NUPR1-GRN axis as a novel diagnostic marker and therapeutic target for HCC.
Cho, Eunae Sandra;Cha, Yong Hoon;Kim, Hyun Sil;Kim, Nam Hee;Yook, Jong In
Biomolecules & Therapeutics
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제26권1호
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pp.29-38
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2018
During cancer progression, cancer cells are repeatedly exposed to metabolic stress conditions in a resource-limited environment which they must escape. Increasing evidence indicates the importance of nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADPH) homeostasis in the survival of cancer cells under metabolic stress conditions, such as metabolic resource limitation and therapeutic intervention. NADPH is essential for scavenging of reactive oxygen species (ROS) mainly derived from oxidative phosphorylation required for ATP generation. Thus, metabolic reprogramming of NADPH homeostasis is an important step in cancer progression as well as in combinational therapeutic approaches. In mammalian, the pentose phosphate pathway (PPP) and one-carbon metabolism are major sources of NADPH production. In this review, we focus on the importance of glucose flux control towards PPP regulated by oncogenic pathways and the potential therein for metabolic targeting as a cancer therapy. We also summarize the role of Snail (Snai1), an important regulator of the epithelial mesenchymal transition (EMT), in controlling glucose flux towards PPP and thus potentiating cancer cell survival under oxidative and metabolic stress.
Zhang, L.;Wang, S.H.;Fan, B.L.;Dai, Y.P.;Fei, J.;Li, N.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제19권8호
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pp.1090-1094
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2006
Histone acetylation modification is one key mechanism in the regulation of gene activation. In this study, we investigated the global levels of histone H4 acetylation of insulin like growth factor I (IGF1) and growth hormone (GH) genes in the lungs of two somatic cell cloned calves. Data showed the levels of histone H4 acetylation of IGF1 and GH genes vary widely within different gene regions, and, in almost all regions of the two genes, acetylation levels are lower in the aberrant clone than in the normal clone. Thus we suggest that inefficient epigenetic reprogramming in the clone may affect the balance between acetylation and deacetylation, which will affect normal growth and development. These findings will also have implications for improvement of cloning success rates.
The development of embryos reconstructed by somatic cell nuclear transfer (SCNT) is dependent upon numerous factors. Central to development is the quality and developmental competence of the recipient cytoplast and the type of the donor nucleus. Typically metaphase of the second meiotic division (MII) has become the cytoplast of choice. Production of a cytoplast requires removal of the recipient genetic material, however, it may remove proteins which are essential for development or reduce the levels of cytoplasmic proteins to influence subsequent reprogramming of the donor nucleus. In this study, enucleation at MII did not affect the activities of either MPF or MAPK kinases. Immunocytochemical staining showed that both Cyclin B1 (MPF) and Erk1/2 (MAPK) were associated with the meiotic spindle of AI/TI oocytes with little staining in the cytoplasm, however, at MII association of both proteins with the spindle had reduced and a greater degree of cytoplasmic distribution was observed. The analysis of oocyte proteins removed during enucleation is a difficult approach to the identification of factors which may be depleted in the cytoplast. This is primarily due to the large numbers of aspirated karyoplasts which would be required for the analysis.
Several cloned animals have been produced using somatic cell nuclear transfer (SCNT) and have interested in producing the transgenic cloned animals to date. But still its efficiency was low due to a number of reasons, such as sub-optimal culture condition, aberrant gene expression and nuclear reprogramming. The purpose of this study was to analyze gene expression pattern in in vitro fertilized (IVF) or SCNT pre-implantation embryos. IVF- or SCNT-embryos were cultured in media supplemented with different proteins (FBS and BSA) or energy sources (glucose or fructose). Blastocysts from IVF or SCNT were analyzed using semi-quantitative RT-PCR in terms of developmentor metabolic-related genes. Culture medium supplemented different proteins or energy sources had affected on the expression of developmental or metabolic genes in the SCNT blastocysts.
Methods for activation of reconstructed oocytes were examined for the production of nuclear transfer (NT) rat embryos using fetal neural stem cells as donor. Neural stem cells were isolated from Day 14.5 rat fetuses, and the oocytes for recipient cytoplasm were recovered from 4-week old Sprague Dawley rats. After enucleation and nuclear injection, the reconstructed oocytes were immediately exposed to activation medium consisting of 10 mM $SrCl_2$ for 4 h (immediate activation after injection; IAI), or cultured in vitro for $2\~3$ h before activation treatment (injection before activation; IBA). Pre-activated oocytes were also used for NT to test reprogramming potential of artificially activated oocytes. The oocytes were grouped as IIA (immediate injection after activation) and ABI (activation $2\~3$ h before injection). Following NT, the oocytes were cultured in vitro. Development of the NT embryos was monitored at 44 and 119 h after activation. The embryos in groups IAI, mA, and IIA were cleaved to the 2-cell stage at the rates of $36.6\%\;(15/41),\;39.5\%\;(17/43)\;and\;46.3\%$ (25/54), respectively. However, in the ABI group, only one embryo ($1.8\%$, 1/55) was cleaved after activation. After in vitro culture, two NT embryos from IAI group had developed to the morula stage $(4.9\%\cdot2/41)$. However, no morula or blastocyst was obtained in the other groups. These results suggest that immediate activation after injection (IAI) method may be used for the production of rat somatic cell NT embryos.
Immediately after fertilization, a chromatin remodeling process in the oocyte cytoplasm extracts protamine molecules from the sperm-derived DNA and loads histones onto it. We examined how the histone H3-lysine 9 methylation system is established on the remodeled sperm chromatin in mice. We found that the paternal pronucleus was not stained for dimethylated H3-K9 (H3-$m_2K9$) during pronucleus development, while the maternal genome stained intensively. Such H3-$m_2K9$ asymmetry between the parental pronuclei was independent of $HP1{\beta}$ localization and, much like DNA methylation, was preserved to the two-cell stage when the nucleus appeared to be compartmentalized for H3-$m_2K9$. A conspicuous increase in H3-$m_2K9$ level was observed at the four-cell stage, and then the level was maintained without a visible change up to the blastocyst stage. The behavior of H3-$m_2K9$ was very similar, but not identical, to that of 5-methylcytosine during preimplantation development, suggesting that there is some connection between methylation of histone and of DNA in early mouse development.
Fiber type-specific programs controlled by the transcription factor MEF2 dictate muscle functionality. Here, we show that HDAC4, a potent MEF2 inhibitor, is predominantly localized to the nuclei in fast/glycolytic fibers in contrast to the sarcoplasm in slow/oxidative fibers. The cytoplasmic localization is associated with HDAC4 hyper-phosphorylation in slow/oxidative-fibers. Genetic reprogramming of fast/glycolytic fibers to oxidative fibers by active CaMKII or calcineurin leads to increased HDAC4 phosphorylation, HDAC4 nuclear export, and an increase in markers associated with oxidative fibers. Indeed, HDAC4 represses the MEF2-dependent, PGC-$1{\alpha}$-mediated oxidative metabolic gene program. Thus differential phosphorylation and localization of HDAC4 contributes to establishing fiber type-specific transcriptional programs.
Plant cells have a remarkable ability to induce pluripotent cell masses and regenerate whole plant organs under the appropriate culture conditions. Although the in vitro regeneration system is widely applied to manipulate agronomic traits, an understanding of the molecular mechanisms underlying callus formation is starting to emerge. Here, we performed genome-wide transcriptome profiling of wild-type leaves and leaf explant-derived calli for comparison and identified 10,405 differentially expressed genes (> two-fold change). In addition to the well-defined signaling pathways involved in callus formation, we uncovered additional biological processes that may contribute to robust cellular dedifferentiation. Particular emphasis is placed on molecular components involved in leaf development, circadian clock, stress and hormone signaling, carbohydrate metabolism, and chromatin organization. Genetic and pharmacological analyses further supported that homeostasis of clock activity and stress signaling is crucial for proper callus induction. In addition, gibberellic acid (GA) and brassinosteroid (BR) signaling also participates in intricate cellular reprogramming. Collectively, our findings indicate that multiple signaling pathways are intertwined to allow reversible transition of cellular differentiation and dedifferentiation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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