Japanese encephalitis virus (JEV) envelope (E) protein holds great promise for use in the development of a recombinant vaccine. Purified recombinant E (rE) protein may be useful for numerous clinical applications; however, there are limitations in using the Escherichia coli expression system for producing high-quality rE protein. Therefore, in this study, the yeast expression system was used to generate the rE protein. For protein production using the yeast system, the full-length JEV E gene was cloned into Pichia pastoris. SDS-PAGE and immunoblotting analysis demonstrated that the rE protein had a molecular mass of 58 kDa and was glycosylated. The predicted size of the mature unmodified E protein is 53 kDa, suggesting that post-translational modifications resulted in the higher molecular mass. The rE protein was purified to greater than 95% purity using combined ammonium sulfate precipitation and a SP-Sepharose Fast Flow column. This purified rE protein was evaluated for immunogenicity and protective efficacy in mice. The survival rates of mice immunized with the rE protein were significantly increased over that of Hyphantria cunea nuclear polyhedrosis virus E protein (HcE). Our results indicate that the rE protein expressed in the P. pastoris expression system holds great promise for use in the development of a subunit vaccine against JEV.
In the present study, we analyzed the defensin protein deduced from Korean radish (Raphanus sativus L.) seeds.To express the genes in E. coli, we constructed a recombinant expression vector with a defensin gene, named rKRs-AFP gene isolated from Korean radish seeds. Over expressed rKRs-AFP proteins was separated by SDS-PAGE to determine the purity, and protein concentration was determined by the Bradford method. Antifungal activity was assessed by disk assay method against the tested fungi. As a result, when 500 mL of cell culture were disrupted by sonicator, 32.5 mg total proteins were obtained. The purified protein showed a single band on SDS-PAGE with estimated molecular weight about 6 KDa, consistent with the molecular mass calculated from the deduced amino acid sequence. The purified rKRs-AFP protein showed remarkable antifungal activities against several fungi including Aspergillus niger, Botrytis cinerea causing the gray mold disease, and Candida albicans. In field tests using the purified rKRs-AFP protein, the protein showed the reducing activity of disease spot and the mitigating effect of spreading of disease like agrichemicals. The immuno-assay of rKRs-AFP protein showed that the purified protein entirely accumulated at B. cinerea cytoplasm through the hyphal septa shown by fluorescence imaging. There was no fluorescence inside the cell, when the hypha was incubated without the protein. These all results indicate that the recombinant rKRs-AFP proteins can be utilized as a potential antifungal drug to control harmful plant fungal pathogens.
Background: Hu syndrome, a neurological disorder, is characterized by the remote effect of small cell lung cancer on the neural degeneration. The suspicious effectors for this disease are anti-Hu autoantibodies or Hu-related CD8+ T lymphocytes. Interestingly, the same effectors have been suggested to act against tumor growth and this phenomenon may represent natural tumor immunity. For these diagnostic and therapeutic reasons, the demand for antibodies against Hu protein is rapidly growing. Methods: Polyclonal and monoclonal antibodies were generated using recombinant HuR protein. Western blot analyses were performed to check the specificity of generated antibodies using various recombinant proteins and cell lysates. Extracellular stimuli for HuR expression had been searched and HuR-associated proteins were isolated from polysome lysates and then separated in a 2-dimensional gel. Results: Polyclonal and monoclonal antibodies against HuR protein were generated and these antibodies showed HuR specificity. Antibodies were also useful to detect and immunoprecipitate endogenous HuR protein in Jurkat and BJAB. This report also revealed that TNF-${\alpha}$ treatment in BJAB up-regulated HuR expression. Lastly, protein profile in HuR-associated mRNAprotein complexes was mapped by 2-dimensional gel electrophoresis. Conclusion: This study reported that new antibodies against HuR protein were successfully generated. Currently, project to develop a diagnostic kit is in process. Also, this report showed that TNF-${\alpha}$ up-regulated HuR expression in BJAB and protein profile associated with HuR protein was mapped.
Papaya ringspot virus (PRSV) causes the most widespread and devastating disease in papaya. Isolates of PRSV originating from different geographical regions in south India were collected and maintained on natural host papaya. The entire coat protein (CP) gene of Papaya ringspot virus-P biotype (PRSV-P) was amplified by RTPCR. The amplicon was inserted into pGEM-T vector, sequenced and sub cloned into a bacterial expression vector pRSET-A using a directional cloning strategy. The PRSV coat protein was over-expressed as a fusion protein in Escherichia coli. SDS-PAGE gel revealed that CP expressed as a ~40 kDa protein. The recombinant coat protein (rCP) fused with 6x His-tag was purified from E.coli using Ni-NTA resin. The antigenicity of the fusion protein was determined by western blot analysis using antibodies raised against purified PRSV. The purified rCP was used as an antigen to produce high titer PRSV specific polyclonal antiserum. The resulting antiserum was used to develop an immunocapture reverse transcription-polymerase chain reaction (IC-RT-PCR) assay and compared its sensitivity levels with ELISA based assays for detection of PRSV isolates. IC-RT-PCR was shown to be the most sensitive test followed by dot-blot immunobinding assay (DBIA) and plate trapped ELISA.
A chitinase cDNA named CHT1 was cloned from the hard tick, Haemaphysalis longicornis, and the enzymatic properties of its recombinant proteins were characterized. The CHT1 cDNA encodes 930 amino-acid (aa) residues including a 22 aa putative signal peptide, with the calculated molecular mass of the putative mature protein 104 kDa. The E coli-expressed rCHT1 exhibited weak chitinolytic activity against $4MU-(GlcNAc)_3$. The rCHT1 protein with higher activity was obtained using recombinant Autographa californica multiple nuclear polyhedrosis virus (AcMNPV), which expresses rCHT1 under polyhedrin promoter. These findings suggest that the rCHT1 expressed in baculovirus-mediated Sf 9 cells has a high activity than E coli-expressed rCHT1.
Kim, Jong-Oh;Kim, Jae-Ok;Kim, Wi-Sik;Oh, Myung-Joo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.25
no.10
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pp.1761-1767
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2015
Sevenband grouper, Epinephelus septemfasciatus, is becoming an important aquaculture species in Korea. However, viral nervous necrosis disease is a large problem causing mass mortality in sevenband grouper aquaculture. Recombinant protein vaccines are one of the best methods to reduce these economic losses. However, the cell-based expression method mainly produces inclusion bodies and requires additional procedures. In this study, we expressed a recombinant viral coat protein of sevenband grouper nervous necrosis virus (NNV) using a cell-free protein synthesis system. The purified recombinant NNV coat protein (rNNV-CP) was injected into sevenband grouper at different doses followed by a NNV challenge. Nonimmunized fish in the first trial (20 μg/fish) began to die 5 days post-challenge and reached 70% cumulative mortality. In contrast, immunized fish also starting dying 5 days postchallenge but lower cumulative mortality (10%) was observed. Cumulative morality in the second trial with different doses (20, 4, and 0.8 μg/fish) was 10%, 40%, and 50%, respectively. These results suggest that rNNV-CP can effectively immunize sevenband grouper depending on the dose administered. This study provides a new approach to develop a recombinant vaccine against NNV infection for sevenband grouper.
Adjuvants are immune enhancers that are often used in vaccination to augment the immune response of a vaccine, thereby enhancing the protective immunity against the targeted disease. In the present study, we used the recombinant protein, such as rRbCC1, this protein was produced from rock bream CC chemokine 1. To verify the adjuvant effects of this recombinant protein, the immune responses of rock bream to Streptococcus iniae (S. iniae) FKC vaccination, which alone or in combination with recombinant protein was analyzed and then also performed experimental challenge with live S. iniae. The result of serum agglutination titres was showed relatively low levels however, the efficacy of FKC vaccine still conferred protection against S. iniae. Moreover, the adverse effects result showed that no statistically significant difference was revealed between high concentration injected and non-injected fish groups, generally. The relative percent survival (RPS) of FKC + recombinant vaccination group was significantly higher than that of vaccinated group with FKC alone. After experimental challenge to the rock bream by injection with live bacteria (S. iniae), the FKC + rRbCC1 vaccination group was showed 87.0% RPS, however, the RPS of FKC alone vaccination was 68.2%. The results indicated that the recombinant protein as an adjuvant had a clear synergism to injection vaccine of rock bream.
Current influenza vaccines are produced in embryonated chicken eggs. However, egg-based vaccines have various problems. To address these problems, recombinant protein vaccines have been developed as new vaccine candidates. Unfortunately, recombinant proteins frequently encounter aggregation and low stability during their biogenesis. It has been previously demonstrated that recombinantly expressed proteins can be greatly stabilized with high solubility by fusing stabilizing peptide (SP) derived from the C-terminal acidic tail of human synuclein (ATS). To investigate whether SP fusion proteins can induce protective immunity in mice, we produced influenza HA and SP fusion protein using a baculovirus expression system. In in vitro tests, SP-fused recombinant HA1 (SP-rHA1) was shown to be more stable than recombinant HA1 (rHA1). Mice were immunized intramuscularly with baculovirus-expressed rHA1 protein or SP-rHA1 protein ($2{\mu}g/mouse$) formulated with aluminum hydroxide. Antibody responses were determined by ELISA and hemagglutination inhibition assay. We observed that SP-rHA1 immunization elicited HA-specific antibody responses that were comparable to rHA1 immunization. These results indicate that fusion of SP to rHA1 does not negatively affect the immunogenicity of the vaccine candidate. Therefore, it is possible to apply SP fusion technology to develop stable recombinant protein vaccines with high solubility.
This study was carried out to evaluate the vaccination effects of recombinant fusion protein rVP19+28 against WSSV in shrimp, Litopenaeus vannamei. The VP19+28 gene fused with VP19 and VP28 genes was inserted into pET-28a(+) expression vector and cloned in E. coli BL21 (DE3) to produce fused gene product recombinant VP19+VP28 as a single protein. For the vaccination, the shrimps were fed with pellets coated with purified recombinant protein, rVP19+28, for 2 weeks. Then, constant amounts of WSSV at $1{\times}10^2$ diluted stocks were injected to the muscle of the shrimp for the in vivo challenge tests. Non-vaccinated shrimps showed a cumulative mortality of 100% at 11 days post-challenge. The shrimps vaccinated with the inactivated E. coli BL21 as a host cell control showed cumulative mortality of 100% at 17 days post-challenge. The shrimps vaccinated with rVP19, rVP28 and rVP19+28 showed mortalities of 66.7%, 41.7% and 41.7% at 21 days post-challenge, respectively. These results indicated that the rVP28 and rVP19+28 had relatively high vaccination effects against WSSV infection. However, this study suggests that the fusion protein rVP19+28 was more effective for the protection of shrimp against WSSV than rVP28, even though the cumulative mortalities were the same 21 days post-challenge.
Kim, Sung-Won;Jo, Min-Young;Yokota, Yasuhiro;Chung, Yun-Jo;Park, Chung-Ung;Kim, Kyung-Suk
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.25
no.2
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pp.237-242
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2004
Recombinant human ferritin homopolymers (rHF and rLF) were successfully produced in the Saccharomyces cerevisiae Y2805, which was transformed with human ferritin H or L-chain genes, respectively. In order to characterize the molecular properties of the recombinant ferritins in relation to mineralization, the proteins were isolated and apoferritins were prepared. The apoferritins were reconstituted with 2000 Fe atoms per protein molecule under various experimental conditions (the concentration of the protein, the buffer concentration of the MOPS buffer, the total volume of the reaction and the reconstitution method). The structure and composition of the iron cores formed in the ferritins were examined using transmission electron microscopy. The recombinant ferritins behaved in a similar manner to other mammalian ferritins in accumulating iron in the core. Proteins of rHF and rLF showed varying reconstitution yields of 37-72% depending on the reaction conditions. In general, the rHF showed higher reconstitution yield than the rLF at the protein concentrations and the reaction volumes we examined. Iron cores with a similar mean particle size were obtained in the rHF, rLF and horse spleen ferritin reconstituted at a protein concentration of 1.0 mg/mL. Electron diffraction of all the three ferritins showed 2-3 diffuse lines, with d-spacings corresponding to those of the mineral ferrihydrite with a limited crystallinity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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