ER-Golgi 분비 경로를 통해서 정확한 구조를 가지면서 post-translational modification 과정을 거친 재조합 단백질의 발현을 최대화하는 것은 ER stress반응에 대한 연구의 중요한 계기가 된다. 세포가 스트레스를 받지 않는 상태라도 ER stress signaling은 재조합 단백질의 생산량을 제한하고 품질을 떨어뜨리는 여러 가지 조건을 만들게 된다. ER stress signaling을 막는 여러 가지 방법들이 제시되고 있으며 표 2는 이러한 방법들 중 일부를 나타내고 있다. 일반적으로는 pro-survival 경로에 관련되어 있는 인자를 촉진하고 pro-apoptosis에 관련되어 있는 인자를 억제하는 것들이다. 그러나 ER stress 반응은 매우 복잡하고 적응과 사멸 기작(adaptation and elimination mechanism)의 중간 역할을 하기 때문에 ER stress에 관련된 주요 인자를 산업적으로 응용하기 위해선 이들의 기능에 대해 보다 깊은 연구가 이루어져야 한다. 현재까지 재조합단백질의 생산량을 최대한으로 높이는 방법은 ER stress 반응이 생기지 않도록 fed-batch process를 개선하고 세포 사멸 기작을 조절하며 단백질의 glycosylation 처리를 하는 것이다.
Hu, Bo;Liang, Minjian;Hong, Guoqiang;Li, Zhaoxia;Zhu, Zhenyu;Li, Lin
BMB Reports
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제38권6호
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pp.683-689
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2005
Antibody to hepatitis B surface antigen (HBsAb) is the important serological marker of the hepatitis B virus (HBV) infection. Conventionally, the hepatitis B surface antigen (HBsAg) obtained from the plasma of HBV carriers is used as the diagnostic antigen for detection of HBsAb. This blood-origin antigen has some disadvantages involved in high cost, over-elaborate preparation, risk of infection, et al. In an attempt to explore the suitable recombinant HBsAg for the diagnostic purpose, the HBV S gene was expressed in Pichia pastoris and the product was applied for detection of HBsAb. Hepatitis B virus S gene was inserted into the yeast vector and the expressed product was analyzed by sodium dodecyl sulphate polyacrolamide gel electrophoresis (SDS-PAGE), immunoblot, electronic microscope and enzyme linked immunosorbent assay (ELISA). The preparations of synthesized S protein were applied to detect HBsAb by sandwich ELISA. The S gene encoding the 226 amino acid of HBsAg carrying ahexa-histidine tag at C terminus was successfully expressed in Pichia pastoris. The His-Tagged S protein in this strain was expressed at a level of about 14.5% of total cell protein. Immunoblot showed the recombinant HBsAg recognized by monoclonal HBsAb and there was no cross reaction between all proteins from the host and normal sera. HBsAb detection indicated that the sensitivity reached 10 mIu (micro international unit)/ml and the specificity was 100% with HBsAb standard of National Center for Clinical Laboratories. A total of 293 random sera were assayed using recombinant S protein and a commercial HBsAb ELISA kit (produced by blood-origin HBsAg), 35 HBsAb positive sera and 258 HBsAb negative sera were examined. The same results were obtained with two different reagents and there was no significant difference in the value of S/CO between the two reagents. The recombinant HBV S protein with good immunoreactivity and specificity was successfully expressed in Pichia pastoris. The reagent for HBsAb detection prepared by Pichia pastoris-derived S protein showed high sensitivity and specificity for detection of HBsAb standard. And a good correlation was obtained between the reagent produced by recombinant S protein and commercial kit produced by blood-origin HBsAg in random samples.
Sphingomonas chlorophenolica ATCC39723 was successfully labeled with the gfp (green fluorescent protein) gene inserted into the pcpB gene by homologous recombination. As the gfp recombinant was easily distinguished from other indigenous organisms, the population of gfp recombinant was monitored after being released into the soil microcosms. Their population density dropped from 10$\^$8/ to 10$\^$6/ (cfu/$m\ell$) in the non-sterilized soil microcosms during the first 6 days. Moreover, the gfp recombinant was not detected even at lower dilution rates after a certain time period. The recombinant, however, survived for at least 28 days in the sterilized soil microcosms. Although the gfp recombinant did not degrade pentachlorophenol (PCP), this experiment showed the possibility of using gfp as a monitoring reporter system for S. chlorophenolica ATCC39723 and potentially other species of Sphingomonas.
To detect goat vascular endothelial growth factor (VEGF)-mediated regrowth of hair, full-length VEGF164 cDNA was cloned from Inner Mongolia cashmere goat (Capra hircus) into the pET-his prokaryotic expression vector, and the recombinant plasmid was transferred into E. coli BL21 cells. The expression of recombinant $6{\times}his-gVEGF164$ protein was induced by 0.5 mM isopropyl thio-${\beta}$-D-galactoside at $32^{\circ}C$. Recombinant goat VEGF164 (rgVEGF164) was purified and identified by western blot using monoclonal anti-his and anti-VEGF antibodies. The rgVEGF164 was smeared onto the dorsal area of a shaved mouse, and we noted that hair regrowth in this area was faster than in the control group. Thus, rgVEGF164 increases hair growth in mice.
The poliovirus Sabin 1 strain has features that make it a particularly attractive live recombinant mucosal vaccine vehicle. Sabin 1 cDNA was manipulated to have multiple cloning sites and a viral specific 3C-protease cutting site at the N-terminal end of the polyprotein. The gene for the N-terminal 169 amino acids of the HIV-1 p24 was cloned into the multiple cloning site of the manipulated Sabin cDNA. A recombinant progeny virus was produced from HeLa cells when it was transfected with the RNA synthesized from the p24-Sabin chimeric cDNA. The recombinant progeny virus expresses substantial amounts of the HIV-1 p24 protein, which was clearly detected in the infected cell lysates and culture supernatants in Western blot experiments with rabbit anti-p24 serum and AIDS patients' sera. Differing from the Mahoney strain, the recombinant Sabin 1 poliovirus maintained the foreign gene stably during the subsequent passages. Replication capacity was about 1 to 1.5 log lower than that of the wild-type Sabin 1. Other physicochemical stability characteristics of the recombinant virus were similar to that of the wild-type Sabin 1. These results suggest that the manipulated Sabin 1 poliovirus can be used as a live viral vaccine vector for the development of mucosal vaccines.
Kex2 protease (Kex2p) is a membrane-bound serine protease responsible for the proteolytic maturation of various secretory proteins by cleaving after dibasic residues in the late Golgi network. In this study, we present an application of Kex2p as an alternative endoprotease for the in vitro processing of recombinant fusion proteins produced by the yeast Saccharomyces cerevisiae. The proteins were expressed with a fusion partner connected by a Kex2p cleavage sequence for enhanced expression and easy purification. To avoid in vivo processing of fusion proteins by Kex2p during secretion and to guarantee efficient removal of the fusion partners by in vitro Kex2p processing, P1', P2', P4, and P3 sites of Kex2p cleavage sites were elaborately manipulated. The general use of Kex2p in recombinant protein production was confirmed using several recombinant proteins.
We assessed heterologous protein expression in 64 strains obtained from the Escherichia coli Reference (ECOR) collection, a collection representing diverse natural E. coli populations. A plasmid generating a glutathione S-transferase and plant carbonic anhydrase fusion protein (GST-CA) under the control of the tac promoter was introduced into the ECOR strains, and the quantity of the fusion protein was determined by SDS-PAGE. The foreign protein was generated at various levels, from very high (40 strains, high producers) to very low (six strains, low producers). Immunoblotting showed that the high producers expressed approximately 250-500 times more GST-CA protein than the low producers. The results of semi-quantitative RT-PCR showed that the low producers generated mRNA levels comparable to those of the high producers, thereby suggesting that, at least in this case, inefficient translation is a major cause of the low production. We introduced a different plasmid, which expressed a maltose binding protein and plant guanylate kinase fusion protein (MBP-GK) into the six low producers. Interestingly, five of these expressed MBP-GK at very high levels. Thus, we conclude that the production of a particular protein from an expression vector can vary considerably, depending on the host strain. Strains in the ECOR collection could function as useful alternative hosts when a desired level of protein expression is not obtained from commonly used strains, such as E. coli K12 or B derivatives.
Vascular endothelial growth factors (VEGFs) are a family of proteins that mediate angiogenesis. $VEGF_{165}$ is a VEGF-A isoform and has been extensively studied owing to its potential use in therapeutic angiogenesis. This study established Chinese hamster ovary (CHO) cells overexpressing recombinant human $VEGF_{165}$$(rhVEGF_{165})$ protein. The production rate of the established CHO cells was over 80mg/l of $rhVEGF_{165}$ protein from a 7-day batch culture process using a 7.5-l bioreactor with a 5-l working volume and serum-free medium. The $rhVEGF_{165}$ protein was purified to homogeneity from the culture supernatant using a two-step chromatographic procedure that resulted in a 48% recovery rate. The purified $rhVEGF_{165}$ protein was a glycosylated homodimeric protein with a higher molecular weight (MW) than the protein expressed from insect cells, suggesting that the glycosylation of the $rhVEGF_{165}$ protein in CHO cells differed from that in insect cells. The purified $rhVEGF_{165}$ protein in this study was functionally active with a half-maximal effective concentration of 3.8ng/ml and specific activity of $2.5{\times}10^5U/mg$.
AcNPV 와 BmNPV의 배양세포주에서의 동시감염에 의해 선발된 재조합 바이러스 RecS-A6는 그 다각체 외부 형태가 모바이러스와 다를뿐만 아니라 배양 세포주에 따라서도 그 형태에 차이가 있었다. 이러한 다각체의 특징적인 형태가 나타나는 요인을 다각체 단백질 유전자를 중심으로 조사한 결과 RecS-A6는 AcNPV 와 BmNPV의 다각체 단백질 유전자를 모두 갖고 있는 것이 확인되었으며, 또한 RecS-A6의 다각체를 단백질 전기영동하여 분석한 결과 RecS-A6의 다각체를 단백질 전기영동하여 분석한 결과 AcNPV와 BmNPV의 다각체 단백질이 모두 다각체 형성에 이용되었음을 확인할 수 있었다.
Effects of IPTG induction on cell growth and production of ${\beta}$-galactosidase-preS2 fusion protein (${\beta}$gal-preS2) were studied in a defined medium using a recombinant Escherichia coli JM109/pCMHB30. IPTG was added (0.2 mM) to induce the cloned-gene expression in the early-, mid-, and late-log growth phases. The most serious decreases in growth rate and plasmid stability were observed for the induction in the early-log growth phase. The expression level of ${\beta}$gal-preS2 attained by the induction in the mid-log phase was about 0.51 mg fusion protein/mg total cellular protein, which was 2- and 5-fold improvement over the levels obtained with the inductions in the early- and late-log phases. Formation of acidic byproducts including acetate and pyruvate showed different profiles during the fermentation period for each cases of induction; pyruvate was the major byproduct for the induction in the early-log phase while acetate production became more significant for the cases of inductions in the mid- and late-log phases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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