Liposome-entrapped atypical Aeromonas hydrophila antigen was prepared to investigate the potential protective efficacy for A. hydrophila infection. Carp (Cyprinus carpio) were immunized orally with liposome-entrapped A. hydrophila antigen. After immunization, significantly more antigen-specific antibodies were detected in serum, intestinal mucus and bile than non-immunized control group. The immunized carp were then challenged by immersion with $1{\times}10^{6}$ cfu/ml of A. hyrdophila for 60 min. Of the eight non-immunized carp, three carp died (62.5% survival), whereas five out of six (83.5%) of the immunized survived. Furthermore, development of skin ulcers was significantly inhibited in carp immunized with liposomes containing A. hydrophila antigen. These results suggest that liposomes containing A. hydrophila antigen have a potential for induction of protective immune responses against atypical A. hydrophila infection and also suggest the possibility of developing a vaccine that may ultimately be used for prevention of fish diseases.
Vsrio vulnificus is an estuarine gram-negative human pathogen that affects people with chronic hepatitis, alcoholic cirrhosis, diabetes mellitus or other underlying diseases. V. vulnificus infection is mediated primarily by consumption of raw fish or by exposure of pre-existing wounds to seawater, causing permanent tissue damages or fatal septic shock. We have been developing a vaccine against V. vulnificus composed of whole cell Iysate of a V. vulnificus O-antigen serotype 4 strain. Oral administration of the V. vulnificus;oral vaccine;immunogenicity;protective efficacy vaccine elicited a high serum antibody response in rabbits. The induced antibodies were reactive not only to the homologous strain but also to heterologous O-antigen serotype strains, indicating cross-reactivities among serotypes. Western blot analysis revealed that the antibodies are mainly specific for outer membrane proteins (OMPs) and reacted equally well with OMPs purified from 9 O-antigen serotypes. The rabbit antisera showed opsonophagocytic killing activity against heterologous strains as well as the homologous strain. Passively transferred rabbit antisera into mice were protective against a lethal V. vulnificus infection. These data demonstrate that oral administration of the V. vulnificus vaccine induced a systemic antibody response which had a protective efficacy against V. vulnificus infections, suggesting that this vaccine preparation could be used to develop an oral vaccine against V. vulnificus.
Proceedings of the Korean Society for Applied Microbiology Conference
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2003.06a
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pp.55-62
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2003
The mucosal immune system provides a first line of defense against invasion of infectious agents via inhalation, ingestion and sexual contact. For the induction of protective immunity at these invasion sites, one must consider the use of the CMIS, which interconnects inductive tissues, including PP and NALT, and effector tissues of the intestinal, respiratory and genitourinary tracts. In order for the CMIS to induce maximal protective mucosal immunity, co-administration of mucosal adjuvant or use of mucosal antigen delivery vehicle has been shown to be essential. When vaccine antigen is administered via oral or nasal route, antigen-specific Th 1 and Th2 cells, cytotoxic T lymphocytes(CTLs) and IgA B cell responses are effectively induced by the CMIS. In the early stages of induction of mucosal immune response, the uptake of orally or nasally administered antigens is achieved through a unique set of antigen-sampling cells, M cells located in follicle-associated epithelium(FAE) of inductive sites. After successful uptake, the antigens are immediately processed and presented by the underlying DCs for the generation of antigen-specific T cells and IgA committed B cells. These antigen-specific lymphocytes are then home to the distant mucosal effector tissues for the induction of antigen-specific humoral(e.g., IgA) and cell-mediated (e.g., CTL and Th1) immune responses in order to form the first line of defense. Elucidation of the molecular/cellular characteristics of the immunological sequence of mucosal immune response beginning from the antigen sampling and processing/presentation by M cells and mucosal DCs followed by the effector phase with antigen-specific lymphocytes will greatly facilitate the design of a new generation of effective mucosal antigen-specific lymphocytes will greatly facilitate the design of a new generation of a new generation of effective mucosal adjuvants and of a vaccine deliver vehicle that maximizes the use of the CMIS.
Zebrafish was firstly applied to an experimental model for scuticociliatosis caused by Philasterides dicentrarchi, a facultative parasitic ciliate in cultured marine fish. The susceptibility of zebrafish to infection of P. dicentrarchi was assessed by intraperitoneal injection of the ciliates, which produced typical symptoms of scuticociliatosis and significant mortality. The potential use of zebrafish as a model to evaluate the vaccine efficacy against scuticociliatosis was analyzed by immunization of zebrafish with the ciliates lysate. Furthermore, the effect of different adjuvants, such as Quillaja saponin (QS), Montanide, and Freund’s incomplete adjuvant (FIA) on the protective efficacy of the vaccine was investigated. Groups of zebrafish injected with QS or Montanide alone showed higher survival of fish against challenge test compared to control fish. The results suggest that adjuvant-mediated enhancement of innate immune responses play important roles in protection of fish against scuticociliatosis. The considerably high survival in the fish immunized with the antigen alone indicates that the ciliate lysate itself is highly immunogenic to zebrafish, which can elicit protective immune responses. The protective potential of the antigen, ciliate lysate, was enforced through combined administration with adjuvants including QS, Montinide and FIA. No or low mortalities in the groups of fish immunized with the antigen plus adjuvants suggests that the adaptive immune responses of zebrafish might be accelerated by the adjuvants or the protective potential of the antigen and adjuvants might synergistically interact. In spite of several shortcomings such as difficulties in sampling of serum and leucocytes enough to routine immunological analyses, zebrafsih might be the most convenient experimental animal for scuticociliatosis.
Kim, Joung-Mok;Park, Hye-Yeon;Choi, Kyoung-Jae;Jung, Hoe-Il;Han, Sung-Hwan;Lee, Jae-Seong;Park, Joon-Shik;Yoon, Moon-Young
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.11
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pp.1784-1790
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2006
Bacillus anthracis is a causative agent of anthrax. Anthrax toxins are composed of a protective antigen (PA), lethal factor (LF), and edema factor (EF), in which the PA is a central mediator for the delivery of the two enzymatic moieties LF and EF. Therefore, the PA has been an attractive target in the prevention and vaccinization for anthrax toxin. Recently, it has been reported that the molecule consisting of multiple copies of PA-binding peptide, covalently linked to a flexible polymer backbone, blocked intoxification of anthrax toxin in an animal model. In the present study, we have screened novel diverse peptides that bind to PA with a high affinity (picomolar range) from an M13 peptide display library and characterized the binding regions of the peptides. Our works provide a basis to develop novel potent inhibitors or diagnostic probes with a diverse polyvalence.
The oil emulsion and alhydrogel vaccines were prepared from a strain of enterotoxigenic Escherichia coli isolated from calves with diarrhea and their protective efficacy and immunogenicity were tested in Guinea-pigs. Enterotoxigenic Escherichia coli, isolated from calves with diarrhea, has K99 and F4l antigen as 46.2% and 50.9% with 48 and 53 strains respectively out of 104 strains. The protective efficacy of the gel and oil vaccines were 60% and 80% respectively. Agglutinin titers to sera of Guinea-pigs vaccinated with experimental gel and oil vaccines peaked at 5 and 6 weeks after vaccination.
To clarify the role of surface protective antigen A (SpaA) in the pathogenesis of Erysipelothrix rhusiopathiae C43065 (serotype 2), the spaA deletion mutant of E. rhusiopathiae ${\Delta}spaA$ was constructed by homologous recombination. The virulence of the ${\Delta}spaA$ mutant decreased more than 76-fold compared with that of the wild-type strain C43065 in mice. The mutant strain was sensitive to the bactericidal action of swine serum, whereas the wild-type strain was resistant. The adhesion of wild-type strain to MEF cells was inhibited significantly by treatment with rabbit antiserum against recombinant SpaA (rSpaA) as compared with the treatment with normal rabbit serum, but the mutant strain was not affected. The mutant strain was readily taken up by mouse peritoneal macrophages in the normal rabbit serum, whereas the wild-type strain was resistant. Whereas the rabbit antiserum against rSpaA promoted the phagocytosis of wild-type strain by macrophages, the mutant strain was not affected. In addition, mice vaccinated with the formalin-killed mutant strain were provided 40% protection against challenge by the homologous virulent strain as compared with those with wild-type strain, NaOH-extracted antigen, or rSpaA, which provided more than 80% protection against the same infection. These suggested that SpaA has an important role in the pathogenesis of E. rhusiopathiae infection and could be a target for vaccination against swine erysipelas.
Kim, Jang-Seoung;Chang, Ji-Hoon;Park, Eun-Jeong;Chung, Soo-Il;Yum, Jung-Sun
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.10
no.6
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pp.865-872
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2000
Helocobacter phylori is the major cause of gastritis, peptic ulcer, and a principal risk factor for gastric cancer. As the firs step towards a vaccine against H. pylori infection, Hy.pylori urease was expressed and purified as a recombinant apoenzyme (rUrease) in E. coli. In order to develop an effective immunization protocol using rUrease, the host immune responses were evaluated after the oral immunization of mice with rUrease preparations plus cholera toxin relative to various conditions, such as the physical nature of the antigen, the frequency of the booster immunization, the dose of the antigen, and the route of administration. The protective efficacy was assessed using a quantitative culture following an H. pylori SS1 challenge. It was demonstrated that rUrease, due to its particulated nature, was more superior than the UreB subunit as a vaccine antigen. The oral immunization of rUrease elicited significant systemic and secretory antibody responses, and activated predominantly Th2-type cellular responses. The bacterial colonization was significantly reduced (~100-fold) in those mice immunized with three or four weekly oran doses of rUrease plus cholera toxin (p<0.05), when compared to the non-immunized/challenged controls. The protection correlated well with the elicited secretory IgA level against rUrease, and these secretory antibody responses were highly dependent on the frequency of the booster immunization, yet unaffected by the dose of the antigen (25-200$\mu\textrm{g}$). These results demonstrate the remarkable potential of rUrease as a vaccine antigen, thereby strengthening the possibility of developing an H. pylori vaccine for humans.
Kim Jong-Hyun;Cho Seung-Hak;Jang Hyun-Chul;Lee Hee-Cheul;Kim Young-Il;Kang Yeon-Ho;Lee Bok-Kwon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.8
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pp.1180-1184
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2006
The capsule that surrounds Yersinia pestis cells is composed of a protein-polysacchride complex; the purified protein component is fraction I (F1) antigen. We report the cloning of the cafl gene and its expression in Escherichia coli using the vector pETl02/D-TOPO and the F1-specific monoclonal antibody. The recombinant F1 (rF1) antigen had a molecular size of 17.5 kDa, which was identical to that of the F1 antigen produced by Y. pestis. Recombinant F1 protein was found to react to polyclonal antiserum to Y. pestis Fl. Recombinant F1 was purified by ProBond purification system and induced a protective immune response in BALB/c mice challenged with up to 10$^5$ virulent Y. pestis. Purified rF1 protein was used in an ELISA to evaluate the ability of a method to detect antibodies to Y. pestis in animal sera. These results strongly indicated that the rF1 protein is a suitable species-specific immunodiagnostic antigen and vaccine candidate.
Kim, Kyoung-A.;Son, Young-Ok;Kim, So-Soon;Jang, Yong-Suk;Baek, Young-Hyun;Kim, Chun-Chu;Lee, Jeong-Hoon;Lee, Jeong-Chae
Food Science and Biotechnology
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v.27
no.6
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pp.1823-1831
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2018
This study examined the efficacy of Atractylodes macrocephala Koidz (AMK) protein and polysaccharide extracts as adjuvant or adjuvant booster when given together with porcine pleuropneumonia vaccine. Experimental mice (n = 5/group) were subcutaneously immunized with $25{\mu}g$ ApxIIA #3 antigen, a target protein against A. pleuropneumoniae, together with alum and/or various concentrations ($0-500{\mu}g$) of the AMK extracts, while the control group received PBS only. Immunization with ApxIIA #3 antigen increased the antigen-specific IgG titer and this increase was enhanced in the immunization together with AMK protein, but not polysaccharide extract. Supplementation of AMK protein extract exhibited dose-dependent increases in the antigen-induced protective immunity against A. pleuropneumoniae challenge and in the lymphocyte proliferation specific to the antigen. Glycoproteins present in the AMK extract were the active components responsible for immune response induction. Collectively, the present findings suggest that AMK glycoproteins are useful as immune stimulating adjuvant or adjuvant booster.
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