The efficiency of somatic cell nuclear transfer (NT) in pigs is low and requires enhancement. We identified the most efficient method for zona pellucida (ZP) removal and blastomere aggregation in pigs and investigated whether the aggregation of NT and parthenogenetic activation (PA) of blastomeres could reduce embryonic apoptosis and improve the quality of NT-derived embryos by investigating. Embryonic developmental competence after ZP removal using acid Tyrode's solution or protease (pronase E). The embryonic developmental potential of NT-derived blastomeres was also investigated using well-of-the-well or phytohemagglutinin-L. We analyzed apoptosis in aggregate-derived blastocysts. The aggregation rate of protease-treated embryos was lower than that of Tyrode's solution-treated embryos (69.2% vs. 88.3%). No significant difference was observed between phytohemagglutinin-L and well-of-the-well (35.7%-38.5%). However, 2P1N showed a higher number of blastocysts compared to 3N (73.8% vs. 24.3%) and an increased blastocyst diameter compared to the control and 1P2N (274 ㎛ vs. 230-234 ㎛). In blastomeres aggregated using phytohemagglutinin-L, the apoptotic cell ratio was significantly higher in 1P2N and 3N than in 3P (5.91%-6.46% vs. 2.94%, respectively). Our results indicate that aggregation of one NT embryo with two PA embryos improved the rate of blastocysts with increased blastocyst diameter.
Kim Y.S.;Song S.H.;Cho S.K.;Kwack D.O.;Kim C.W.;Park C.S.;Chung K.H.
Journal of Embryo Transfer
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v.21
no.2
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pp.101-107
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2006
The objective of this study was to investigative the effects of retinol supplement to IVM and/or IVC medium on maturation, fertilization and development of pig oocytes. North Carolina State University (NCSU) 23 medium containing porcine follicular fluid (pFF) was used as base medium. Each 1 uM, 5 uM and 10 uM concentration of retinol was supplemented to IVM and /or IVC medium. When the retinol was supplemented to maturation medium, the maturation rates were not different (p>0.05) among treatment groups ($66.7{\pm}6.0{\sim}69.2{\pm}5.3%$), but the developmental rate to blastocyst stage was higher (p<0.05) in $5{\mu}M$ group ($20.4{\pm}2.6%$) than in 0 uM ($13.6{\pm}2.1%$) and 10 uM groups ($9.7{\pm}1.7%$). Moreover, total cell number was significantly greater (p<0.05) in the 5 uM group ($37.0{\pm}1.6$) than in the other groups ($29.8{\pm}1.0{\sim}33.2{\pm}1.0$). Retinol supplement to maturation medium did not significantly affect the rates of fertilization and polyspermy (p>0.05). When the retinol was supplemented to culture medium or both maturation and culture medium, the rates of cleavage, and develop to morula and blastocyst stage were not affected, while those of 10 uM group were significantly decreased (p<0.05). These results indicate that 5 uM retinol supplement in maturation medium significantly stimulates embryo development, also improves the total cell number of blastocyst stage in pig.
The objective of this study was to examine the effect of embryos development following IVF of in vitro-matured porcine oocytes treated with epidermal growth factor (EGF). When cumulus-enclosed oocytes were incubated in TCM 199 medium supplemented with (1) control group, (2) 10 ng/ml EGF, (3) 10${\mu}g$ml FSH and 10% FBS, or (4) 10 ng/ml EGF, 10 ${\mu}g$/ml FSH, and 10% FBS for 42 hr, the late developmental rates on NCSU (0.4% BSA) medium after fertilization were higher in (3) and (4) groups (13.4, 18.3%) than in (2) group (5.2%, p < 0.005), but (2) group is significantly higher than the development to blastocyst of oocytes of (1) group (1.2%). Also, when the cell number of total, ICM, and TE of those blastocysts at 6 day produced in vitro was investigated by double staining (PI and bisbenzimide), total cell number of (4) group (58.80${\pm}$ 11.90) was higher than that of (2) and (3) groups (42.17${\pm}$9.97, 49.07${\pm}$9.77, P < 0.05). ICM cell number of blastocysts of (4) group (11.69${\pm}$5.56) was higher than that of (2) and (3) groups (5.00${\pm}$4.24, 6.77${\pm}$4. 92, P < 0.05). Furthermore, the proportion of ICM in (4) group (19.0${\pm}$1.6) was higher than that in (2) and (3) groups (11.1${\pm}$3.0, 12. 7${\pm}$2.1). These results suggested that in vitromatured porcine oocytes treated with EGF alone can be developed to blastocyst, but high proportion on the development to blastocyst and number of total cell and ICM in blastocyst can be obtained when supplemented with additional FSH and FBS.
Objective: This study was conducted to investigate the roles of LIM kinases (LIMK1 and LIMK2) during porcine early embryo development. We checked the mRNA expression patterns and localization of LIMK1/2 to evaluate their characterization. We further explored the function of LIMK1/2 in developmental competence and their relationship between actin assembly and cell junction integrity, specifically during the first cleavage and compaction. Methods: Pig ovaries were transferred from a local slaughterhouse within 1 h and cumulus oocyte complexes (COCs) were collected. COCs were matured in in vitro maturation medium in a CO2 incubator. Metaphase II oocytes were activated using an Electro Cell Manipulator 2001 and microinjected to insert LIMK1/2 dsRNA into the cytoplasm. To confirm the roles of LIMK1/2 during compaction and subsequent blastocyst formation, we employed a LIMK inhibitor (LIMKi3). Results: LIMK1/2 was localized in cytoplasm in embryos and co-localized with actin in cell-to-cell boundaries after the morula stage. LIMK1/2 knockdown using LIMK1/2 dsRNA significantly decreased the cleavage rate, compared to the control group. Protein levels of E-cadherin and β-catenin, present in adherens junctions, were reduced at the cell-to-cell boundaries in the LIMK1/2 knockdown embryos. Embryos treated with LIMKi3 at the morula stage failed to undergo compaction and could not develop into blastocysts. Actin intensity at the cortical region was considerably reduced in LIMKi3-treated embryos. LIMKi3-induced decrease in cortical actin levels was attributed to the disruption of adherens junction and tight junction assembly. Phosphorylation of cofilin was also reduced in LIMKi3-treated embryos. Conclusion: The above results suggest that LIMK1/2 is crucial for cleavage and compaction through regulation of actin organization and cell junction assembly.
Kim, Se Eun;Kim, Ji Woo;Kim, Yeong Ji;Kwon, Deug-Nam;Kim, Jin-Hoi;Kang, Man-Jong
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.29
no.4
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pp.564-570
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2016
The Sal-like 1 gene (Sall1) is essential for kidney development, and mutations in this gene result in abnormalities in the kidneys. Mice lacking Sall1 show agenesis or severe dysgenesis of the kidneys. In a recent study, blastocyst complementation was used to develop mice and pigs with exogenic organs. In the present study, transcription activator-like effector nuclease (TALEN)-mediated homologous recombination was used to produce Sall1-knockout porcine fibroblasts for developing knockout pigs. The vector targeting the Sall1 locus included a 5.5-kb 5' arm, 1.8-kb 3' arm, and a neomycin resistance gene as a positive selection marker. The knockout vector and TALEN were introduced into porcine fibroblasts by electroporation. Antibiotic selection was performed over 11 days by using $300{\mu}g/mL$ G418. DNA of cells from G418-resistant colonies was amplified using polymerase chain reaction (PCR) to confirm the presence of fragments corresponding to the 3' and 5' arms of Sall1. Further, mono- and bi-allelic knockout cells were isolated and analyzed using PCR-restriction fragment length polymorphism. The results of our study indicated that TALEN-mediated homologous recombination induced bi-allelic knockout of the endogenous gene.
The effects of cytochalasin B was studied for the cleavage and development of in vitro matured porcine follicular oocytes. The follicular oocytes were collected from slaughtered pig ovaries and matured for 65 hours. The matured oocytes were activated by 7% ethanol(v/v) in DPBS and the activated oocytes were subjected to cytochalasin B concentrations of 2.5, 5.0 and $7.5\;{\mu}g/mL$ for 3, 5 and 7 hours, and then the treated oocytes were cultured in NCSU23 with 0.4% BSA for 7 days. The cleavage rates were not different significantly in each treatment. However, the oocytes treated with $5.0\;{\mu}g/mL$ for 5 hours yielded a significantly higher morula rate(19.7%) than oocytes treated with $2.5\;{\mu}g/mL$ for 3 and 5 hours(9.4%). The sum rate of $2.5\;{\mu}g/mL$ concentration(10.5%) by hour was also significantly lower than those of 5.0(18.0%) and $7.5\;{\mu}g/mL$ concentration(14.6%). The blastocyst rate in oocytes treated with $5.0\;{\mu}g/mL$ for 3(9.4%) and 5 hours(9.0%) was significantly higher than the rate in oocytes treated with $2.5\;{\mu}g/mL$ for 3 hours(0%). The sum rate of $5.0\;{\mu}g/mL$ concentration also significantly higher than those of 2.5 and $7.5\;{\mu}g/mL$ concentration. The results demonstrated that the treatment of oocytes with cytochalasin B of $5.0\;{\mu}g/mL$ for $3{\sim}5$ hours was the optimal concentration and duration for parthenogenetic activation and blastocyst formation of in vitro matured porcine oocytes.
Mitochondrial dysfunction is found in oocytes and transmitted to offspring due to maternal obesity. Treatment of obese mothers with endoplasmic reticulum (ER) stress inhibitors such as salubrinal (SAL) can reverse the mitochondrial dysfunction and result in normal embryonic development. Pig oocytes have also shown ER stress mostly in metaphase II stage. ER stress in oocytes may hinder the in vitro production of pig embryos. This study investigated the effect of ER stress inhibition by SAL treatment during in vitro maturation (IVM) of porcine oocytes at 1, 10, 50 and 100 nM concentrations. Firstly, we tested various concentrations of SAL. SAL at 10 nM showed higher (P < 0.05) developmental competence to the blastocyst stage (55.6%) after parthenogenesis (PA) than control (44.2%) while not different from other concentrations (49.2, 51.6, and 50.8% for 1, 50, and 100 nM, respectively). Secondly, we performed time-dependent treatment at 10 nM of SAL for IVM of oocytes. It revealed that treatment with SAL during 22 to 44 h of IVM significantly improved PA embryonic development to the blastocyst stage compared to control (40.5, 46.3, 51.7 and 60.2% for control, 0 to 22 h, 22 to 44 h and 0 to 44 h of IVM, respectively, P < 0.05). Glutathione (GSH) content is an indicator of cytoplasmic maturation of oocytes. Reactive oxygen species (ROS) have a harmful effect on developmental competence of oocytes. For this, we determined the intraoocyte levels of GSH and ROS after 44 h of IVM. It was found that SAL increased intraoocyte GSH level and also decreased ROS level (P < 0.05). Finally, we performed somatic cell nuclear transfer (SCNT) after treating oocytes with 10 nM SAL during IVM. SAL treatment significantly improved blastocyst formation of SCNT embryos compared to control (39.6% vs. 24.7%, P < 0.05). Our results indicate that treatment of pig oocytes with ER stress inhibitor SAL during IVM improves preimplantation development PA and cloned pig embryos by influencing cytoplasmic maturation in terms of increased GSH content and decreased ROS level in IVM pig oocytes.
The aim of the present study was to investigate the ovulation rate and its relationship to fertilization ability in Landrace, Durock and Crossbred pigs. Gilts were natural mated at a body weight of at least 120 kg under the same hormone treatment. Embryos were surgically collected 1 day after natural mating (Day 0). Embryos derived from in vivo-fertilized oocytes were cultured in medium PZM-3. The ovaries were examined and the pathological findings were recorded. The number of corpus hemorrhagicum was counted, and was assumed to equal the ovulation rate. There was no difference in the number of corpus hemorrhagicum (20.4, 28.8 and 23.2) and ovulation (13.5, 26.8 and 17.2) in the Landrace, Durock and Crossbred pigs. The two pronucleus formation was 76.0, 80.0 and 86.9%. The Day-7 embryos had blastocyst rates of 68.0, 75.0 and 73.9%. There was no difference in the number of total cells and apoptotic cells. In the future, more studies require determining relationships between ovulation and fertilization rate in different species of pigs.
Porcine fibroblasts were transferred into enucleated bovine oocytes for the interspecies nuclear transfer (NT). After NT, the embryos were cultured in three different culture systems. The media used for the experiment were CR1aa and NCSU23. The culture systems used for the experiment were: 1. Culture in CR1aa for 7 days (CR). 2. Culture in CR1aa for 2 days and subsequently in NCSU23 for 5 days (CR-NC). 3. Culture in NCSU23 for 7 days (NC). Bovine (intraspecies) NT group was used as a control. The oocytes in bovine NT group were treated the same as interspecies NT embryos except using bovine fibroblasts as nuclear donors. Regardless of their nuclear origin (interspecies vs bovine), the embryos in CR (68.4% vs 77.2%) and CR-NC (67.8% vs 70.5%) showed better developmental competence to the 2-cell stage (p<0.05) than those in NC (41.0% vs 10.0%). Bovine NT embryos in CR-NC did not develop over the 4-cell stage after the medium replacement, while interspecies NT embryos in CR-NC continued to develop and could reach over the 8-cell stage (12.2%). Blastocysts were only found in bovine NT group (17.4%), but no blastocyst was found in interspecies NT group. This study suggests that the development of interspecies NT embryos mostly depends on their recipient cytoplasm during the culture in vitro.
Shin J. S.;Kim, C.;S. J. Uhm;Kim, N. H.;Lee, H. T.;K. S. Chung
Korean Journal of Animal Reproduction
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v.22
no.4
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pp.395-403
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1998
In this study we determined fertilization processes and developmental ability of porcine oocytes following injection of round spermatid in the presence and absence of artificial activation. Electrical stimulation at 2 h before spermatid injection significantly increased the incidence of normal fertilization as compared to those following injection without stimulation or with stimulation immediately after injection. The incidences of two pronuclear formation and apposition were not different in oocytes between following intracytoplasmic spermatid and spermatid nucleus injection. Indirect immunocyto chemistry and laser scanning confocal microscopy study revealed that microtubuels were organized from the oocyte cortex following round spermatid injection, and this seemed to move both male and female pronuclei into the oocyte center. At 6 days following injection blastocoele formation was seen in the eggs following round spermatid (25%) and round spermatid nucleus injection (27%). However, none of oocytes developed to the blastocyst stage at 6 days following sham injection. The average cell numbers of blastocysts at 8 days following injection of spermatid and spermatid nucleus were 87 to 99. These results suggested that either round spermatid or it's nudeus can be used to produce viable embryos by injection into unfertilized oocytes in the pig.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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