Barley yellow dwarf virus (BYDV) is an economically important plant pathogen that causes stunted growth, delayed heading, leaf yellowing, and purple leaf tip, thereby reducing the yields of cereal crops worldwide. In the present study, a reverse transcription recombinase polymerase amplification (RT-RPA) assay was developed for the detection of BYDV in oat leaf samples. The RT-RPA assay involved incubation at an isothermal temperature (42℃) and could be performed rapidly in 5 min. In addition, no cross-reactivity was observed to occur with other cereal-infecting viruses, and the method was 100 times more sensitive than conventional reverse transcription polymerase chain reaction. Furthermore, the assay was validated for the detection of BYDV in both field-collected oat leaves and viruliferous aphids. Thus, the RT-RPA assay developed in the present study represents a simple, rapid, sensitive, and reliable method for detecting BYDV in oats.
To determine the nucleotide sequence of the ds RNA segment B containing the RNA dependent RNA polymerase (RdRp) gene of the DRT strain of infectious pancreatic necrosis virus (lPNV), the cDNA of the ds RNA segment B of the DRT strain of IPNV was synthesized using the reverse transcriptase (RT)-polymerase chain reaction (PCR) and its cDNA nucleotide sequence was determined. The DRT segment B was 2, 783 bp long and contained only a single long open reading frame (ORF) of 2, 535 bp in length. This ORF nucleotides encoded the VPl protein, the putative RdRp of IPNV. The VPl protein comsisted of 845 amino acids. The molecular weight of the RdRp, as deduced from the nucleotide sequence, is 94, 426. The nucleotide sequence of the ORF of the DRT showed 89.7% homology to the Jasper strain, but 80.8% to the Sp strain. The amino acid sequence of the ORF of the DRT sho.wed 97.6% homology to the Jasper strain, but 88.7% to the Sp strain. The conserved GTP-binding motif was detected in VPl protein.
Kim, Min-Soo;Park, Chan-Hee;Lee, Jong-Ho;Myung, Hee-Joon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.2
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pp.328-333
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2008
A series of pep tides binding to the HCV NS5B polymerase was selected from phage display peptide libraries. A conserved motif of Ser-Arg-X-Arg/Leu was identified among the selected peptides, and Pep2 (Trp-Ser-Arg-Pro-Arg-Ser-Leu) was chosen for further characterization. The binding of Pep2 to HCV NS5B in vivo was shown by a yeast two-hybrid assay and by subcellular colocalization analysis using immunofluorescence confocal microscopy. The in vitro interaction was also confirmed by GST pulldown assay. The replication of the HCV 1b subgenomic replicon was efficiently inhibited by the presence of the peptide. By using a subtractive biopanning against Pep2, the binding site of the peptide was mapped at the pocket of Pro388 to Pro391 in the thumb subdomain of the polymerase. A yeast two-hybrid analysis using Pro388Ala and Pro391Ala mutants of NS5B confirmed the binding.
Human caliciviruses (HuCVs) cause sporadic cases and outbreaks of acute gastroenteritis (AGE). Three major genogroups of HuCVs have been described including the Norwalk virus (NV)-, the Snow Mountain virus (SMA)-, and the Sapporo-genogroups. This study describes the detection and genetic variation of HuCVs from hospitalized infants with AGE in Korea by RT-PCR and sequencing. The cDNA fragments of 206 to 470bp corresponding to the region of 3 primer pairs (36/35, 35/51 or 3/51) in the polymerase region of NV were generated. Of 185 stools screened, 8% were positive by RT-PCR and their sequences showed that all strains contained the GLPSG and YGDD motifs which are conserved for HuCVs. Amino acid (aa) sequence analysis showed that these strains can be divided into 3 major genogroups. High conservation was observed in that one strain shares 100% of aa sequence with Southampton virus, another shares 99% with the Sapporo virus, and six strains share 90 to 95% with Snow Mountain virus. However, significant sequence variation was also found in other strains. This study indicates that all major genogroups of HuCVs are circulating in Korea.
Two linear plasmid-like DNAs, 10.2 kb and 7.2 kb were found in the mitochondria of P. ostreatus. They have covalently linked 5'-terminal proteins in both ends. Two continuous fragments of 4.7 kb and 2.3 kb from 7.2 kb DNA were cloned and sequenced. Two long open reading frames (ORF1; 2982 bp, 993 a.a and ORF2; 2703 bp, 900 a.a) and one short open reading frame(ORF3; 771 bp, 256 a.a) were found in the 7.2 kb plasmid. The putative ORF1 and ORF2 have conserved motifs of DNA polymerases and RNA polymerases, respectively, while the ORF3 has homologous regions with phosphatase from Plasmodium, and also with adhesine from Mycoplasma.
RNA polymerase II C-terminal domain phosphatase 1 containing ubiquitin like domain (UBLCP1) has been identified as a regulatory molecule of RNA polymerase II. UBLCP1 consists of ubiquitin like domain (UBL) and phosphatase domain homologous with UDP and CTD phosphatase. UBLCP1 was cloned into the E.coli expression vectors, pET32a and pGEX 4T-1 with TEV protease cleavage site and purified using both affinity and gel-filtration chromatography. Domains of UBLCP1 protein were successfully purified as 7 mg/500 mL (UBLCP1, 36.78 KDa), 32 mg/500 mL (UBL, 9 KDa) and 8 mg/500 mL (phosphatase domain, 25 KDa) yielded in LB medium, respectively. Isotope-labeled samples including triple-labeled ($^2H/^{15}N/^{13}C$) UBLCP1 were also prepared for hetero-nuclear NMR experiments. $^{15}N-^{1}H$ 2D-HSQC spectra of UBLCP1 suggest that both UBL and phosphatase domain are properly folded and structurally independent each other. These data will promise us further structural investigation of UBLCP1 by NMR spectroscopy and/or X-ray crystallography.
The production of extended-spectrum ${\beta}$-lactamases ($ESBL_S$) is the main mechanism of bacterial resistance to third-generation cephalosporins and monobactams, whose prevalence varies depending on the different geographical areas. In the last years it has increased notably to the point of being considered a health problem of great importance. The characterization of the ESBLs producing Klebsiella penumoniae strains present in clinical isolates is time-consuming. I describe here the development of a new system, which consists of a multiplex PCR. I found 51 K. pneumoniae strains to be presumptive strains ESBLs producers by clinical and laboratory standards institute (CLSI) guidelines. The double disc synergy test showed 47 positive K. pneumoniae, which were K. pneumoniae isolates. All ESBLs producing K. pneumoniae strains were resistant to antibiotic amikacin, gentamicin and ciprofloxacin. By multiplex PCR analysis, $bla_{TEM}$ gene in 17 strains 44 $bla_{SHV}$ genes and $bla_{CTX}$ genes in 33 strains were identified. In this study, the multiplex polymerase chain reaction (PCR) assay was a good method to detect and differentiate ESBLs producing K. penumoniae strains in clinical isolates.
Kim, Na-Kyeong;Lee, Hyo-Jeong;Ryu, Tae-Ho;Cho, In-Sook;Ju, Ho-Jong;Jeong, Rae-Dong
Research in Plant Disease
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v.27
no.2
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pp.79-83
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2021
The aim of the present study was to develop a sensitive and specific detection method for the rapid detection of apple scar skin viroid (ASSVd) in apple leaves. The resulting reverse transcription recombinase polymerase amplification (RT-RPA) assay can be completed in 10 min at 42℃, is 10 times more sensitive than conventional reverse transcription polymerase chain reaction, and can specifically amplify ASSVd without any cross-reactivity with other common apple viruses, including apple stem grooving virus, apple stem pitting virus, and apple chlorotic leaf spot virus. The reliability of the RT-RPA assay was assessed, and the findings suggested that it can be successfully utilized to detect ASSVd in field-collected samples. The RT-RPA assay developed in the present study provides a potentially valuable means for improving the detection of ASSVd in viroid-free certification programs, especially in resource-limited conditions.
Kim, Na-Kyeong;Lee, Hyo-Jeong;Kim, Sang-Min;Jeong, Rae-Dong
The Plant Pathology Journal
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v.38
no.2
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pp.159-166
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2022
Barley yellow dwarf virus (BYDV) has been a major viral pathogen causing significant losses of cereal crops including oats worldwide. It spreads naturally through aphids, and a rapid, specific, and reliable diagnostic method is imperative for disease monitoring and management. Here, we established a rapid and reliable method for isothermal reverse transcription recombinase polymerase amplification (RT-RPA) combined with a lateral flow strips (LFS) assay for the detection of BYDV-infected oat samples based on the conserved sequences of the BYDV coat protein gene. Specific primers and a probe for RT-RPA reacted and optimally incubated at 42℃ for 10 min, and the end-labeled amplification products were visualized on LFS within 10 min. The RT-RPA-LFS assay showed no cross-reactivity with other major cereal viruses, including barley mild mosaic virus, barley yellow mosaic virus, and rice black streaked dwarf virus, indicating high specificity of the assay. The sensitivity of the RT-RPA-LFS assay was similar to that of reverse transcription polymerase chain reaction, and it was successfully validated to detect BYDV in oat samples from six different regions and in individual aphids. These results confirm the outstanding potential of the RT-RPA-LFS assay for rapid detection of BYDV.
Slipchip offers advantages such as high-throughout, low cost, and simple operation, and therefore, it is one of the technologies with the greatest potential for high-throughput, single-cell, and single-molecule analyses. Slipchip devices have achieved remarkable advances over the past decades, with its simplified molecular diagnostics gaining particular attention, especially during the COVID-19 pandemic and in various infectious diseases scenarios. Medical testing based on nucleic acid amplification in the Slipchip has become a promising alternative simple and rapid diagnostic tool in field situations. Herein, we present a comprehensive review of Slipchip device advances in molecular diagnostics, highlighting its use in digital recombinase polymerase amplification (RPA), loop-mediated isothermal amplification (LAMP), and polymerase chain reaction (PCR). Slipchip technology allows users to conduct reliable droplet transfers with high-throughput potential for single-cell and molecule analyses. This review explores the device's versatility in miniaturized and rapid molecular diagnostics. A complete Slipchip device can be operated without special equipment or skilled handling, and provides high-throughput results in minimum settings. This review focuses on recent developments and Slipchip device challenges that need to be addressed for further advancements in microfluidics technology.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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