For various oxidoreductases, the optimum pHs of the enzymes can be calculated using the rule based on proton transfer. Relative probability of a certain amino acid side chain to be in the water, or the relative affinity to the water was calculated using Boltzman distribution. Also, the protonated and deprotonated portions of a certain amino acid side chain were calculated using p$K_R$ of that and the effective protonated and deprotonated protions were the product of relative probability and the protonated and deproteonated protions. Where the total effective protonated portion was equal to the effective deprotonated portion of amino acid side chains, it was expected that oxidoreductases have max-imum activities. The optimum pHs calculated by our rule were compared with the experimental results.
Optimum conditions for the enzymatic hydrolysis of isolated sesame meal protein were investigated. Optimum conditions by papain were $60^{\circ}C$, pH 6.0, 3% enzyme concentration to substrate and 1.5% substrate concentration, respectively. The optimum operating conditions using pepsin were $55^{\circ}C$, pH 9.0, 3% enzyme concentration to substrate and 1% substrate concentration. The optimum operating conditions using trypsin were $60^{\circ}C$, pH 9.0, 1% enzyme concentration to substrate and 1% substrate concentration.
A biosensor for the determination of hydrogen peroxide was constructed by immobilizing of porcine small instestinal tissue in a plain carbon paste, and the effect of varying the $H_2O_2$ concentration and pH on the rate of catalytic reaction was evaluated. For the mathematical simplicity, no mediator was added. Electrochemical properties and the maximal rate could be derived from the quantitative analysis of the observed phenomena related to the electrode reaction. Also, pH dependence of the Michaelis constant enabled to calculate various thermodynamic parameters and subsequently to design a electrochemical method to determine the optimum pH of enzyme.
This study was carried out to determine the optimum culture conditions for Phellinus spp. known as white rot fungi showing anti-cancer activity. The optimum solid medium for mycelial growth at $25^{\circ}C$ was potato dextrose agar medium and optimum pH range was $6.0{\sim}8.0$, while all species showed reduced or no growth at pH 4.0. Most species showed good growth at $25{\sim}30^{\circ}C$. Out of 10 species of Phellinus examined, P. biscuspidatus was the best growing fungus in the range of pH $6.0{\sim}7.0$ based on mycelial density. Three species such as P. biscuspidatus, P. johnsonianus and P. lloydii could be grouped in mesophile fungi, showing $30{\sim}35^{\circ}C$ optimum temperature.
The effect of pH on anaerobic hydrogen production was investigated under various pH conditions ranging from pH 3 to 10. When the modified Gompertz equation was applied to the statistical analysis of the experimental data, the hydrogen production potential and specific hydrogen production rate at pH 5 were 1,182 ml and 112.5 ml/g biomass-h, respectively. In this experiment, the maximum theoretical hydrogen conversion ratio was 22.56%. The Haldane equation model was used to find the optimum pH for hydrogen production and the maximum specific hydrogen production rate. The optimum pH predicted by this model is 5.5 and the maximum specific hydrogen production rate is 119.6 ml/g VSS-h. These data fit well with the experimented data($r^2=0.98$).
Asp. usumii IAM 2185 was selected as a strain producing the powerful raw starch digesting glucoamylase. The optimum initial pH, the optimum temperature and the optimum cultural time for the enzyme production on wheat bran medium were pH 6-8,25-$30^{\circ}C$ and 72 hrs, respectively. The addition of ammonium nitrate and albumin on wheat bran medium, respectively, increase slightly the enzyme production. The enzyme was purified by ammonium sulfate fractionation, CM-cellulose and DEAE-cellulose column chromatography. The specific activity of the purified enzyme was 34.3 U/mg protein and the yield of enzyme activity was 10.3%. The purified enzyme showed a single band on polyacrylamide disc gel electrophoresis and its molecular weight was estimated to be 67,000 by SDS polyacrylamide disc gel electrophoresis. The isoelectric point for the purified enzyme was pR 3.7. The optimum temperature and optimum pH were $60^{\circ}C$and pH 3.0 and the purified enzyme was stable in the pH range of 1.0-11.0. The purified enzyme was stable below $50^{\circ}C$ and its thermostability was greatly increased by the addition of $Ca^{2+}$. The purified enzyme showed a high hydrolysis rate on various raw starches such as corn, rice, yam, arrow root, sweet potato and glutinous rice.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.23
no.5
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pp.856-862
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1994
In salt-preserved foods of every kinds, it was examined the growth condition of halophilic bacteria that induced a change of colour, taste, nutritive substance, a production condition of enzyme and a character of crude enzyme. Used bacteria is H. halobium a kind of extremely halophilic bacteria, and the required of optimum culture needed a quite long time of crude enzyme production is 168 hours. Optimum pH is about 7-7.5, so the traditional food of such neutrality pH as soybean paste and soy sauce particularly come into trouble because the growth can flourish in neutrality or alkaliescence, and the crude enzyme also appeared that best activation between pH 6 and pH 8. The optimum temperature is about 37$^{\circ}C$, the optimum temperature of enzyme is about 40 $^{\circ}C$ and the temperature stability is settled for 15 minutes and it is completely inactivated at 10 minutes. In the influence of each metal ion, Fe++ and Mn++ a stimulated the growth of H.halobium and the activation of enzyme, Cu++ and Zn++ were identified that made the growth and the activation of enzyme inhibit.
To utilize microbial lipases for hydrolysis of milk fat, optimum reaction conditions and characteristics of enzymatic reactions of lipases originated from Rhizopus delemar, Mucor sp., and Candida cylindracea were investigated. Optimum pH and temperature were pH 5.6 and $45^{\circ}C$ for Rhizopus delemar lipase, pH7.5 and $35^{\circ}C$ for Mucor sp. lipase, and pH7.5 and $35^{\circ}C$ for Candida cylindracea lipase. Optimum lipase concentration and optimum substrate concentration were $600{\sim}800\;units/ml$ and 20% milk fat, regardless of their origin. Km values were 6.06% milk fat for Rhizopus delemar lipase, 7.69% for Mucor sp. lipase and 7.99% for Candida cylindracea lipase. Rate of lipid hydrolysis was Rhizopus delemar lipase>Mucor sp. lipase>Candida cylindracea lipase. As the reaction time was extended, liberation of short chain fatty acids was increased. After 8 hours reaction, capric acid content significantly increased with Candida cylindracea lipase, palmitic acid with Mucor sp. lipase and butyric acid with Rhizopus delemar lipase.
The optimum concentrations of pH, sucrose and vitamins for the growth and tropane alkaloid production of hairy root clone DTLA9 (best growth line) were investigated. The optimum pH in growth and tropane alkaliod production of DTLA9 clone in SH (Schenk and Hildebrandt, 1972) basal medium without growth regulator were pH 6.3 and 6.5, respectively. Also, the optimum sucrose concentration in growth and tropane alkaliod production in the same medium were 3.0 and 2.8%, respectively. The optimum concentrations of ascorbic acid, D-pantothenate, nicotinic acid, pyridoxine, riboflavin, and thiamine on the growth of DTLA9 clone in SH basal medium without vitamins were 0.1 mM, 0.003 mM, 0.07 mM, 0.002 mM, 0.025 mM, and 0.01 mM, respectively. In particular, supplement of 0.1 mM ascorbic acid to SH basal medium without vitamins stimulated the tropane alkaloid production.
The objective of this study was to evaluate the effect of soluble carbohydrates (glucose, cellobiose), pH (6.0, 6.5, 7.0), and rumen microbial growth factors (VFA, vitamins) on biohydrogenation of linoleic acid (LA) by mixed rumen fungi. Addition of glucose or cellobiose to culture media slowed the rate of biohydrogenation; only 35-40% of LA was converted to conjugated linoleic acid (CLA) or vaccenic acid (VA) within 24 h of incubation, whereas in the control treatment, 100% of LA was converted within 24 h. Addition of VFA or vitamins did not affect biohydrogenation activity or CLA production. Culturing rumen fungi at pH 6.0 slowed biohydrogenation compared with pH 6.5 or 7.0. CLA production was reduced by pH 6.0 compared with control (pH 6.5), but was higher with pH 7.0. Biohydrogenation of LA to VA was complete within 72 h at pH 6.0, 24 h at pH 6.5, and 48 h at pH 7.0. It is concluded that optimum conditions for biohydrogenation of LA and for CLA production by rumen fungi were provided without addition of soluble carbohydrates, VFA or vitamins to the culture medium; optimum pH was 6.5 for biohydrogenation and 7.0 for CLA production.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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