깨다시 꽃게(Ovalipes punctatus)는 갑각류로서 우리나라에서 잡히는 매끈 꽃겟속, 주름 꽃겟속, 톱날 꽃겟속, 민 꽃겟속, 두갈래 민꽃겟속 들 중에 하나이다. 대부분의 꽃게는 가공되지 않은 상태로 찜 또는 찜육 등 반 가공 형태로 산업화 되었지만 최근에 게로부터 생리활성을 나타내는 펩타이드를 생산하는 연구가 발표되고 있다. 본 연구는 항산화 기능성을 나타내는 펩타이드를 선별하고 생산 최저 공정 확립에 연구를 수행 하였다. 사용된 효소 alcalase, bromelain, flavourzyme, neutrase, papain, protamex들 중에서 bromelain으로 생산된 꽃게육 단백질 가수분해물이 가장 높은 활성을 보여 주었다. 꽃게육 단백질의 bromelain 가수분해물의 펩타이드들의 분자량 분포는 500-3,200 Da로서 7 종류의 이상의 펩타이드들로 구성되었다. 가수분해물의 구성아미노산 분포는 항산화 기능성에 관련된 소수성 아미노산은 전체 42.54%를 차지하였다. 가수분해물의 최적 생산 수율 조건을 확립하기 위하여 공정 조건, 효소 반응 온도 $40-60^{\circ}C$, pH 6-8, 효소의 농도 1-3%(w/v)로 표면반응 분석법을 수행한 결과 효소 반응온도 $55^{\circ}C$, 반응 pH 6.5, 효소의 양은 3%(w/v)에서 결정되었다. 최적 조건에서 단백질 가수분해도는 최대 71.60%에 도달하였다.
In this study was selected the cellulolytic microorganism and investigated optimum condition of cellulase production for the cellulosic bioethanol production. A bacterial strain Paenibacillus jamilae BRC15-1, was isolated from soil of domestic reclaimed land. For optimizing cellulase production from the selected strain, various culture parameters were investigated such as culture medium, pH (pH 4~10), temperature ($25{\sim}50^{\circ}C$) and culture time (2~72 h). As a result, P. jamilae BRC15-1 efficiently produced cellulase from cellulosic biomass under following conditions: 24 h of culture time (pH 7, $40^{\circ}C$) in manufactured media of CMC (carboxymethyl cellulose) with peptone. Optimum saccharifying condition of crude enzyme produced from P. jamilae BRC15-1 was identified on pH 6 and $40^{\circ}C$ of reaction temperature, respectively. This crude enzyme from P. jamilae BRC15-1 was used for saccharification of pretreated sweet sorghum (Sorghum bicolor var. dulciusculum Ohwi) bagasse under the optimal condition. Finally, pretreated sweet sorghum bagasse including 0.1 g of glucan was saccharified by crude enzyme of P. jamilae BRC15-1 into 2.75 mg glucose, 0.79 mg xylose and 1.12 mg arabinose.
삼림지역의 고목에서 분리한 Peniophora sp. JS17 균주는 사람 머리카락 유래 멜라닌을 탈색하는 세포 외 분비효소를 생산했다. JS17 균주는 laccase 및 manganese peroxidase 활성을 나타냈지만 lignin peroxidase 활성은 나타내지 않았다. 본 균주를 회분배양한 결과 멜라닌 탈색 활성은 laccase 활성으로부터 유래하는 것으로 확인되었다. Peniophora sp. JS17 균사체로부터 멜라닌 탈색 효소를 생산하기 위한 배지 조건을 조사하였다. 다양한 합성 배지 중에서 minimal medium (2% glucose, 0.2% malt extract, 0.1% $KH_2PO_4$, 0.4% $MgSO_4{\cdot}7H_2O$)이 가장 높은 laccase 활성을 나타내었다. Laccase 생산에 대한 배양 조건을 최적화하기 위하여 minimal medium의 조성 중에서 탄소원 및 질소원에 대한 영향을 조사하였다. 다양한 탄소원 및 질소원 중에서 각각 2% xylose 및 0.4% tryptone의 경우에 가장 높은 laccase 활성을 나타내었다. Ammonium sulfate 침전 및 Hitrap Q Sepharose column을 이용하여 정제한 효소는 SDS-PAGE에서 약 70 kDa의 분자량 부근에 2종류의 isozyme 형태로 존재 하였다. 멜라닌 탈색율은 HBT 및 syringaldehyde의 존재하에서 48시간 만에 각각 77% 및 55%를 나타내었고, mediator가 없는 조건에서는 9%의 멜라닌 탈색율을 나타내었다.
Urokinase is an enzyme with fibrinolytic activity (plasminogen activator) isolated from fresh urine of healthy men. Viral safety is an important prerequisite for clinical preparation of the protein from urine. In order to increase the viral safety of a high purity urokinase in regard to non-enveloped viruses, a virus removal process using a novel polyvinylidene fluoride membrane filter (Viresolve NFP) has been optimized. Urokinase was able to pass through the filter with recoveries of 95% in the production scale process. No substantial changes were observed in physical and biochemical characteristics of the filtered urokinase in comparison with those of the enzyme before filtration. A 47-mm disk membrane filter was used to simulate the process performance of the production scale cartridges and tested if it could remove several experimental model viruses for human pathogenic viruses, including porcine parvovirus (PPV), human hepatitis A virus (HAV), murine encephalomyocarditis virus (EMCV), bovine viral diarrhoea virus (BVDV), and bovine herpes virus (BHV). Non-enveloped viruses (PPV, HAV, and EMCV) as well as enveloped viruses (BVDV and BHV) were completely removed during filtration. The log reduction factors achieved were $\geq$4.86 for PPV, $\geq$4.60 for HAV, $\geq$6.87 for EMCV, $\geq$4.60 for BVDV, and $\geq$5.44 for BHV. These results indicate that the virus filtration process successfully improved the viral safety of the final products.
Entomogenous fungi which attack living insects are powerful means for microbiological insecticide. The purpose of this study is to establish the culture conditions and media for mass production of Beauveria sp. C208 which has a broad host range as a potential microbiological pesticide. The temperature and pH range for optimal cultivation of this strain were 28$circ$C and pH 5.0-7.0. For Beauveria sp. C 208, 2% rice straw and 0.6% tryptone were found as the proper carbon and nitrogen sources, considering cell mass, enzyme activities such as chitinase, protease and lipase, and spore concentration.
The well-characterized gram-positive bacterium Bacillus subtilis is an outstanding industrial candidate for protein expression owing to its single membrane and high capacity of secretion, simplifying the downstream processing of secretory proteins. During the last few years, there has been continuous progress in the illustration of secretion mechanisms and application of this robust host in various fields of life science, such as enzyme production, feed additives, and food and pharmaceutical industries. Here, we review the developments of Bacillus subtilis as a highly promising expression system illuminating strong chemical- and temperatureinducible and other types of promoters, strategies for ribosome-binding-site utilization, and the novel approach of signal peptide selection. Furthermore, we outline the main steps of the Sec pathway and the relevant elements as well as their interactions. In addition, we introduce the latest discoveries of Tat-related complex structures and functions and the countless applications of this full-folded protein secretion pathway. This review also lists some of the current understandings of ATP-binding cassette transporters. According to the extensive knowledge on the genetic modification strategies and molecular biology of Bacillus subtilis, we propose some suggestions and strategies for improving the yield of intended productions. We expect this to promote striking future developments in the optimization and application of this bacterium.
With the aim to produce ascorbic acid-2-phosphate(AsA-2-P) from L-ascorbic acid(AsA, Vitamin C), nine bacteria conferring the ability to transform AsA to AsA-2-P were isolated from soil samples alongside known strains from culture collections. Most isolates were classified to the genus Brevundimonas by 16S phylogenetic analysis. Among them, Brevundimonas diminuta KACC 10306 was selected as the experimental strain because of its the highest productivity of AsA-2-P. The optimum set of conditions for the AsA-2-P production from AsA using resting cells as the source of the enzyme was also investigated. The optimum cultivation time was 16 h and the cell concentration was 120g/l(wet weight). The optimum concentrations of AsA and pyrophosphate were 550mM and 450mM, respectively. The most effective buffer was 50mM sodium formate. The optimum pH was 4.5 and temperature was $40^{\circ}C$. Under the above conditions, 27.5g/l of AsA-2-P was produced from AsA after 36 h of incubation, which corresponded to a 19.7% conversion efficiency based on the initial concentration of AsA.
In this study, an efficient whole cell-based biotransformation for the production of liquiritigenin was developed using Laetiporus sulphureus CS0218 as biocatalyst and aqueous extracts of Glycyrrhiza uralensis as co-substrate, respectively. In order to determine the efficacy of this method, the optimal bioconversion conditions including mycelial growth, three important enzyme activities (${\beta}$-glucosidase, ${\alpha}$-rhamnosidase and ${\beta}$-xylosidase), and apparent viscosity of culture broth were monitored. After optimization, aqueous extracts of G. uralensis were added to the culture medium to directly produce algycone liquiritigenin. By applying this strategy, 67.5% of liquiritin was converted to liquiritigenin at pH 3.0 after 9 days of incubation and finally liquiritigenin was purified from the reaction mixture. And then, their biological activities including anti-oxidant and superoxide dismutase were observed. In fact, purified liquiritigenin was capable of bi-directional functions (i.e., either up-regulation or down-regulation of SIRT1 which is associated with aging). The results indicate that this strategy would be beneficial to produce biologically active liquiritigenin and could be used in pharmaceutical, cosmetic and food applications.
소 고환 유래의 hyaluronidase 효소 PH-20을 pPIC9 expression vector를 사용하여 Pichia pastoris에서 발현하였다. 생산된 재조합 단백질 rPH-20b는 75 kDa의 분자량을 보였고 7460 units/L의 효소활성을 보였다. 세포내보다 세포외의 효소활성이 두배 높았다. pH 의 경우 buffer를 사용 안 한 경우가, 또한 $30^{\circ}C$ 배양 조건에서 높은 활성을 보였다. 1 M sorbitol 삼투압조건과 0.3% 메탄올의 생산유도인자를 사용시 성장과 생산에 유리하였으며 0.4 M 아르기닌을 첨가시 재조합 단백질의 분해가 감소하였다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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