Nopaline-type Agrobacterium tumefaciens strain C58 cannot utilize octopine (Oct) as the sole carbon and nitrogen sources. This strain harbors two plasmids; a virulent plasmid, pTiC58, and a megaplasmid, pAtC58. From strain NT1, which is a derivative of C58 harboring only pAtC58, we isolated spontaneous mutants that utilize Oct as the sole nitrogen source. These Oct-catabolizing mutants, however, could not utilize the opine as the sole carbon source. In contrast, strain UIA5, a plasmid-free derivative of C58, could not give rise to such mutants. The mutations isolated from NT1 were mapped to socR in pAtC58, which is a negative regulator of the soc operon responsible for the uptake and catabolism of an Amadori opine, deoxyfructosyl glutamine (Dfg). A derivative of UIA5 carrying a clone of the soc operon with a transposon inserted in socR also utilizes Oct as the sole nitrogen source. However, UIA5 harboring the operon with mutations in each of the structural genes in the soc operon, socA, B, C, and D, lost the ability to generate spontaneous Oct-utilizing mutants, suggesting that soc genes in pAtC58 are required for the utilization of Oct as a nitrogen source, and that derepressed expression of these genes allows cells to utilize Oct. In contrast, Oct-catabolizing mutants derived from C58, which grew using Oct as the sole nitrogen source, could also utilize the opine as the sole carbon source. These mutants did not carry any detectable mutations in socR or the region upstream to the gene in pAtC58, suggesting that mutations occurring elsewhere in the genome, most likely in pTiC58, allow the uptake and catabolism of the opine.
Molecular characterization of ten marine cyanobacterial isolates belonging to the order Oscillatoriales was carried out using the phycocyanin locus (cpcBA-IGS) and the 16S-23S internally transcribed spacer region. DNA sequences from the phycocyanin operon discriminated ten genotypes, which corresponded to seven morphotypes identified by traditional microscopic analysis. The cpcB coding region revealed 17% nucleotide variation, while cpcA exhibited 29% variation across the studied species. Phylogenetic analyses support the conclusion that the Phormidium and Leptolyngbya genera are not monophyletic. The nucleotide variations were heterogeneously distributed with no or minimal informative nucleotides. Our results suggest that the discriminatory power of the phycocyanin region varies across the cyanobacterial species and strains. The DNA sequence analysis of the 16S-23S internally transcribed spacer region also supports the polyphyletic nature of the studied oscillatorian cyanobacteria. This study demonstrated that morphologically very similar strains might differ genotypically. Thus, molecular approaches comprising different gene regions in combination with morphological criteria may provide better taxonomical resolution of the order Oscillatoriales.
Ji, Sang-Chun;Wang, Xun;Jeon, Heung-Jin;Yun, Sang-Hoon;Lee, Hee-Jung;Lim, Heon-M.
BMB Reports
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v.43
no.7
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pp.474-479
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2010
Three assay methods for quantification of the two galactose-operon mRNAs that only differ by 5 bases in their 5'-end are presented. The 5' ends of each mRNA were extended by ligating the 3'-end of the abundant 5S rRNA. This ligation extends the 5' ends of the two gal mRNAs long enough to be distinguished by the specific PCR primers in the following quantification reactions. Quantification of the corresponding cDNAs was performed either by primer extension assay or real-time qPCR. To circumvent the problem of the RNA ligation reaction (i.e. very low ligation efficiency), we devised a new method that employs real-time qPCR directly for the quantification of the gal transcripts which differ by 5 bases in their 5'-ends.
Yeast mitochondrial transformation has been confirmed by cell death and CFP expression (CDF: cell death factor gene). Expression vector containing CDF and CFP driven by one TPI (Triose-phosphate isomerase) promoter (called artificial operon type) was bombarded to Yeast. Interestingly, yeast cells were progressively deformed into unusual shapes and lysed inner cytoplasm resulting in ell death after all after bombarding with expression vector (CDC and GFP). Since there is no report about more than one gene expression simultaneously in a single mitochondria, this report is very important to novel type of eukaryotic gene expression. Successful yeast cell transformation in this report implies possible eukaryotic mitochodrial transformation including plants and animals and moreover two or more gene expression which can be excellent applicable protocols to pharmaceutical field including antibody production.
Streptomyces setonii (ATCC 39116) is a Gram-positive thermophilic soil actinomycetes capable of degrading single aromatic compounds including phenol and benzoate via ortho-cleavage pathway. we isolated approximately 6.3-kb S. setonii DNA fragment containing a thermophilic catechol 1,2-dioxygenase(C12O) gene. Here we further revealed that the 6.3-kb S. setonii DNA fragment was organized into two putative divergently-transcribed clusters with 6 complete and one incomplete open reading frames (ORFs). The first cluster with 3 ORFs showed significant homologies to previously known benA, benB, and benC, implying a part of benzoate catabolic operon. The second cluster revealed an ortho-cleavage catechol catabolic operon with three translationally-coupled ORFs (catR, catB, catA). Each of these individually-cloned ORFs was expressed in E. coli and identified as a distinct protein band with a theoretical molecular weight in SDS-PAGE. The expression of the cloned S. setonii catechol operon was induced in a heterologous S. lividans by specific single aromatic compounds including catechol, phenol, and 4-chlorophenol. The simitar induction pattern was also observed using a luciferase gene-fused reporter system, implying that S. setonii employs an inducer-specific regulatory mechanism for aromatic compound metabolism.
The aeg-46.5 operon of Escherichia coli is induced by nitrate and anaerobic conditions. Positive regulators Fnr and NarP, and a negative regulator NarL control the expression of the aeg-46.5. It has two symmetry regions [6], one of which is located between +37 and +56 bp from the 5'end of the anaerobic transcription initiation site. In this study, mutagenized symmetry regions were transferred from plasmid to chromosome by homologous recombination to evaluate the mutation as a single copy in the fnr, narL, narP, and narL-narP double mutant background. The expressions of the aeg-46.5 operon with these mutations indicated that the control was not through the possible stem-loop structure. Whether there is a protein that mediates this control remains to be seen. The results from the narL-narP double mutant indicated that the anaerobic Fill induction was independent of NarL repression.
Investigation of the expression of the riboflavin (rib) genes, which are found immediately downstream of luxG in the lux operon in Photobacterium phosphoreum, provides more information relevant to the evolution of bioluminescence, as well as to the regulation of supply of flavin substrate for bacterial bioluminescence reactions. In order to answer the question of whether or not the transcriptions of lux and rib genes are integrated, a transcriptional termination assay was performed with P. phoxphoreum DNA, containing the possible stem-loop structures, located in the intergenic region of luxF and luxE ($\Omega$$\_$A/), of luxG and ribE ($\Omega$$\_$B/), and downstream of ribA ($\Omega$$\_$c/). The expression of the CAT (Chloram-phenicol Acetyl Transferase) reporter gene was remarkably decreased upon the insertion of the stem-loop structure ($\Omega$$\_$c/) into the strong lux promoter and the reporter gene. However, the insertion of the structure ($\Omega$$\_$B/) into the intergenic region of the lux and the rib genes caused no significant change in expression from the CAT gene. In addition, the single stranded DNA in the same region was protected by the P. phosphoreum mRNA from the Sl nuclease protection assay. These results suggest that lux genes and rib genes are part of the same operon in P. phosphoreum.
In this study, we investigated colistin resistance mechanisms associated with the regulation of the pbgP operon in Klebsiella pneumoniae, using four isogenic pairs of colistin-susceptible strains and their colistin-resistant derivatives and two colistin-resistant clinical isolates. Amino acid sequence alterations of PhoPQ, PmrAB, and MgrB were investigated, and mRNA expression levels of phoQ, pmrB, pmrD, and pbgP were measured using quantitative real-time PCR. The phoQ and pmrB genes were deleted from two colistin-resistant derivatives, 134R and 063R. We found that phoQ, pmrD, and pbgP were significantly upregulated in all colistin-resistant derivatives. However, pmrB was significantly upregulated in only two colistin-resistant derivatives and one clinical strain. pmrB was not overexpressed in the other strains. The minimum inhibitory concentration of colistin was drastically lower in both phoQ- and pmrB-deleted mutants from a colistin-resistant derivative (134R) that was overexpressing phoQ and pmrB. However, colistin susceptibility was restored only in a phoQ-deleted mutant from a colistin-resistant derivative (063R) without overexpression of pmrB. In conclusion, two different regulations of the pbgP operon may associate with the development of colistinresisant K. pneumoniae.
The proline utilization (put) operon of Vibrio vulnificus consists of the putAP genes encoding a proline dehydrogenase and proline permease. The result of put-lux transcriptional fusion analysis suggests that the V vulnificus putAP operon is not autoregulated by the PutA protein. A putR null mutation decreased proline dehydrogenase activity and the level of the put transcripts, indicating that transcription of putAP is under the positive control of PutR. The deduced amino acid sequence of the putR was similar to those reported from other bacteria with high levels of identity. Chromatin IP and GST pull-down assays revealed that PutR specifically binds to the putAP promoter region in vivo, and interacts with CRP in vitro. Taken together, the results suggested that PutR exerts its effect on putAP expression by directly interacting with CRP bound to the upstream region of P$_{put}$.
The D-xylose operon in Escherichia coli is known to be regulated by a transcriptional activator protein, XyIR, which is responsible for the expression of both xylAB and xylFGH gene clusters. The XyIR was purified to homogeneity by using the maltose binding protein fusion expression and purification systems involving two chromatography steps. The purified XyIR protein was composed of two subunits of 45 kDa, which was determined by both sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis and gel filtration. The purified XyIR was specifically bounded to the xylA promoter, regardless of adding xylose to the reaction mixture, but binding of XylR was specifically bounded to the xylA promoter, regardless of adding xylose to the reaction mixture, but binding of XylR to the xylA promoter was enhanced by adding xylose. The enhanced binding ability of XyIR in the presence of xylose was not diminished by adding glucose. The presumed XyIR binding site is located between 120 bp to 100 bp upstream the xylA initiation codon.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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