We developed and subsequently characterized mouse monoclonal antibodies (MAbs) against nervous necrosis virus (NNV, RGNNV genotype). We established six hybridoma clones secreting MAbs against NNV antigen: 2B1, 2B11, 2C12, 13C1-1, 13C1-2 and 14D11. All six MAbs belonged to the IgG2a isotype with a kappa light chain and their reactivity recognized against the 41 kDa coat protein of NNV by Western blot analysis. The affinity constants of the six MAbs were measured by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). All six MAbs reacted with two NNV isolates (SgNag05 and Gemunodo06), while no reactivity was observed with five know fish viruses, namely marine birnavirus, infectious pancreatic necrosis virus, viral hemorrhagic septicemia virus, hirame rhabdovirus, and infectious hematopoietic necrosis virus. Moreover, high ELISA optical density (OD) values (0.87-1.42) were observed in the brain tissues of NNV-infected sevenband grouper, while low OD values (less than 0.12) were recorded in the brain tissues of uninfected fish. These results suggest that these six MAbs are highly competent and useful for the detection of NNV with the RGNNV genotype.
In order to use nervous necrosis virus (NNV) virus-like particles (VLPs) as a delivery tool for heterologous antigens or plasmids, we attempted to produce red-spotted grouper nervous necrosis virus (RGNNV) VLPs displaying a partial region of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) glycoprotein at the surface and VLPs that are harboring DNA vaccine plasmids within the VLP. A peptide encoding 105 amino acids of VHSV glycoprotein was genetically inserted in the loop region of NNV capsid gene, and VLPs expressing the partial part of VHSV glycoprotein were successfully produced. However, in the transmission electron microscope analysis, the shape and size of the partial VHSV glycoprotein-expressing NNV VLPs were irregular and variable, respectively, indicating that the normal assembly of capsid proteins was inhibited by the relatively long foreign peptide (105 aa) on the loop region. To encapsulate by simultaneous transformation with both NNV capsid gene expressing plasmids and DNA vaccine plasmids (having an eGFP expressing cassette under the CMV promoter), NNV VLPs containing plasmids were produced. The encapsulation of plasmids in the NNV VLPs was demonstrated by PCR and cells exposed to the VLPs encapsulating DNA vaccine plasmids showed fluorescence. These results suggest that the encapsulation of plasmids in NNV VLPs can be done with a simple one-step process, excluding the process of disassembly-reassembly of VLPs, and NNV VLPs can be used as a delivery tool for DNA vaccine vectors.
Viral nervous necrosis (VNN) is a serious disease of sevenband grouper Epinephelus septemfasciatus in Korean aquaculture farms. However, we suggest the following preventative methods for hatcheries: 1) disinfecting rearing water, 2) selecting spawners via ELISA and PCR, 3) selecting eggs via PCR, 4) disinfecting fertilized eggs, and 5) proper facilities management. When these methods are implemented, nervous necrosis virus (NNV)-free fish are produced because vertical and horizontal transmission is prevented. However, horizontal transmission of NNV through rearing seawater sourced from the environment during grow-out stages in sea cages can still occur. Live NNV vaccines with a low rearing temperature or Poly(I:C) immunization are very effective at preventing horizontal transmission of NNV in rearing farms. Furthermore, even after VNN is contracted, fish mortality can be reduced by administering Poly(I:C).
We investigated the infection of nervous necrosis virus (NNV) in seven band grouper Hyporthodus septemfasciatus broodstocks, which have been reared in aquaculture farms in South Korea during 2012-2014. To investigate the prevalence of NNV within the broodstock, egg, sperm, and blood were sampled in the spawning season. The egg and sperm samples were subjected to a nested reverse transcription (RT) polymerase chain reaction (PCR) assay to detect NNV and were inoculated on SSN-1 cells to culture the virus. Blood samples were used to detect antibodies against NNV using enzyme linked immunosorbent assay (ELSIA). Positive values from ELISA were found in 39 of 162 samples (24%) in 2012, and 13 of 28 samples (46%) in 2014. Additionally, 4 of 34 broodstocks (11%) investigated in 2013-2014 were determined to be carriers from the nested RT-PCR and in vitro cultivation. The broodstocks in which antibodies against NNV were detected by ELISA, or in which NNV was detected by the nested RT-PCR assay, posed a risk of vertical transmission of NNV. Therefore, it is necessary to select virus-free broodstocks in seed production to reduce the possibility of the vertical transmission of NNV.
홍민어의 종묘 생산 중에 자어의 대량 폐사를 일으키는 nervous necrosis virus (NNV)의 감염에 의한 피해를 방지하기 위하여 NNV 미감염 친어의 선발에 의한 종묘 생산을 시도함과 동시에 수정란, 부화자어, 먹이생물, 사육 용수 등의 NNV 감염 여부를 확인하였다. RT-PCR법에 의한 홍민어 친어의 바이러스 감염 여부를 확인한 결과, 총 40마리의 검사어 중에서 양성인 개체가 18마리, 음성인 개체는 22마리였다. 시험어로부터 자연 산란된 수정란 및 경과 단계별 부화 자어로부터 PCR법을 이용한 NNV 감염 확인 결과, 미감염 친어로부터의 수정란에서는 바이러스가 확인되지 않았으나, 감염된 친어로부터의 수정란에서는 바이러스 감염이 확인되었다. 또한 자어의 먹이생물인 클로렐라, 로티퍼, 알테미아 및 사육 용수를 대상으로 한 NNV 검출 결과, 모두 음성으로 나타났다. 부화 후 8주간의 감염 및 미감염 자치어의 사육 결과에 있어서는 초기 2주째까지의 생존율이 각각 80%, 85%로서 양호하였으나, 부화 후 25일째부터 폐사가 일어나기 시작하였다. 감염 친어구의 경우 41일째에 100% 폐사한 반면, 미감염 친어구는 최종적으로 18.3%의 생존율을 보여, 이러한 결과는 친어에 대한 NNV 검사를 실시하여 바이러스에 감염되지 않은 홍민어 종묘를 생산할 수 있다는 것을 제시한다.
2017년 1월에서 4월까지 강원도 고성에서 사육중인 명태 친어로부터 수정란을 채집하여 신경괴사증바이러스(nervous necrosis virus, NNV)의 검출을 시도하였다. 매 회 50 mg씩 수정란을 채집하여 이를 1 set로 간주하였으며 총 37 set를 제작하였다. RNA를 추출하고 cDNA를 합성하여 NNV를 대상으로 reverse transcriptase PCR을 실시하였다. 그 결과, one-step PCR법으로는 37 set의 시료가 모두 음성이었으며, two-step PCR법으로는 5.4% (2/37)의 시료가 양성을 나타내었다. 그러나, band의 농도가 매우 낮아 시퀀싱은 불가능하였다. 본 연구의 결과 및 이전 연구의 결과로부터 현재 국내에서 양식하고 있는 명태에서 NNV 감염에 의한 폐사는 발생하지 않는 것으로 추정된다. 하지만, 지속적인 모니터링 및 양성 개체 출현 시 바이러스 분리의 시도 등은 필요할 것으로 생각된다.
신경괴사증바이러스(NNV)는 25 nm의 작은 입자 크기에 RNA1 (3.4 kb, RdRp), RNA2 (1.4 kb, capsid protein) 두 가닥의 RNA를 유전정보를 가진다. NNV는 1980년대 말 처음 보고된 이후 전 세계적으로 120여종의 어류에 감염을 일으키며 심각한 피해를 일으키고 있는 바이러스이다. NNV 감염에 의한 피해를 최소화하고 효율적인 백신들을 개발하기 위해서는 무엇보다 NNV 감염에 따른 세포내 신호전달체계를 이해할 필요가 있다. NNV는 세포내 감염 이후 숙주가 가진 바이러스 복제에 필요한 요소들을 이용할 수 있도록 숙주세포의 cell cycle arrest 등의 기작을 이용하는 것으로 알려졌다. 반면에 숙주 세포는 NNV와 감염된 세포를 제어하기 위해 RIG-1-like receptor signaling pathway 등을 통해 NNV 감염을 인지한 다음 IFN signaling pathway를 통해 항바이러스 작용에 필요한 ISG들을 발현시킨다. 또한 감염된 세포들을 사멸시키기 위해 ER stress를 통한 unfolded protein response (UPR), mitochondria-mediated cell death 작용을 통해 감염된 세포의 apoptosis를 유발한다. NNV 감염 기작에 대한 세포신호전달연구는 아직 초기단계이며 검증해야 할 pathway들이 아직도 많이 남아있는 상황이다. 따라서 NNV 감염과 연관된 다양한 세포신호전달체계를 탐색하고 질병 특이적인 세포신호전달체계를 이해함으로써 신속하고 정확한 진단법 및 백신 개발에 많은 도움이 될 것으로 생각된다.
Kim, Jong-Oh;Kim, Jae-Ok;Kim, Wi-Sik;Oh, Myung-Joo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제25권10호
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pp.1761-1767
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2015
Sevenband grouper, Epinephelus septemfasciatus, is becoming an important aquaculture species in Korea. However, viral nervous necrosis disease is a large problem causing mass mortality in sevenband grouper aquaculture. Recombinant protein vaccines are one of the best methods to reduce these economic losses. However, the cell-based expression method mainly produces inclusion bodies and requires additional procedures. In this study, we expressed a recombinant viral coat protein of sevenband grouper nervous necrosis virus (NNV) using a cell-free protein synthesis system. The purified recombinant NNV coat protein (rNNV-CP) was injected into sevenband grouper at different doses followed by a NNV challenge. Nonimmunized fish in the first trial (20 μg/fish) began to die 5 days post-challenge and reached 70% cumulative mortality. In contrast, immunized fish also starting dying 5 days postchallenge but lower cumulative mortality (10%) was observed. Cumulative morality in the second trial with different doses (20, 4, and 0.8 μg/fish) was 10%, 40%, and 50%, respectively. These results suggest that rNNV-CP can effectively immunize sevenband grouper depending on the dose administered. This study provides a new approach to develop a recombinant vaccine against NNV infection for sevenband grouper.
Vaccines based on single-cycle viruses that are replication-incompetent due to knockout of replication-related structural gene(s) are more immunogenic than inactivated or subunit vaccines and can be used as delivery vehicles for foreign antigens without concerns on the reverting to virulent forms. The aim of this study was to develop a delivery vehicle for nervous necrosis virus (NNV)-like particles (VLPs) using G gene deleted single-cycle VHSV (rVHSV-𝚫G). Recombinant single-cycle VHSVs carrying NNV capsid protein gene between N and P gene of rVHSV-𝚫G genome (rVHSV-𝚫G-NNVCap) were rescued by reverse genetic technology. The successful expression of NNV capsid protein in cells infected with rVHSV-𝚫G-NNVCap was demonstrated by Western blot analysis, and the production of NNV VLPs in infected cells was confirmed using an electron microscopy. The results suggest that single-cycle VHSVs can be used as a safe delivery vehicle for NNV VLPs, and can be extended to other pathogens for the development of prophylactic vaccines.
2016년 2월에서 9월까지 강원도 고성, 양양, 강릉에서 각각 양성 중인 명태를 샘플링하여 RT-PCR법으로 바이러스(viral hemorrhagic septicemia virus, VHSV; nervous necrosis virus, NNV; marine birnavirus, MABV)의 검출을 시도하였다. 비장시료를 대상으로 한 one-step PCR에서 VHSV, NNV, MABV 모두 검출되지 않았으며, 뇌시료에서 NNV가 1.8%(1/55)의 검출률을 나타내었다. Two-step PCR에서는 VHSV가 51.6%(32/62 set), NNV가 1.6%(1/62 set)의 비장시료에서 검출되었으며 MABV는 검출되지 않았다. 뇌시료에서는 NNV가 3.6%(2/55)의 검출률을 나타내었다. 본 연구결과를 통해 양식산 명태에서 처음으로 VHSV와 NNV가 검출되었다. 그러나 거의 모든 양성개체에서 two-step PCR법으로 해당 바이러스의 유전자가 검출되었으며, 모니터링 기간 동안 바이러스 감염이 의심되는 외관증상을 보이는 개체 및 폐사 개체는 발견되지 않아 바이러스의 역가는 매우 낮을 것으로 생각된다. 차후 지속적인 모니터링 및 세포주를 사용한 바이러스의 분리, 병원성의 확인, PCR 양성개체의 캐리어 가능성 확인 등이 필요할 것으로 생각된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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