This study was aimed to develop a more rapid, simple and sensitive method to determine ceftiofur in bovine serum using LC/MS with electrospray interface. Separation was achieved on the Nova-Pak $C_{18}$ reverse phase column. The mobile phase consisted of 0.1% acetic add in water (A) and acetonitrile (B) and gradiently flowed at the rate of 0.4 mL/min. As a result of analysis of blank muscle samples, matrix interference was not shown. Limit of detection and limit of quantitaion was 5 ng/g and 20 ng/g, respectively. The values of precision and recovery satisfied the guideline of NVRQS. The precision and recovery developed in this method are suitable and sensitive to determine the concentration of ceftiofur in the bovine serum. These results could be applied for the confirmation and quantification in the biofluid.
Globotriaosylsphingosine (lyso-Gb3) is considered as one of the biological marker for Fabry disease. To date, a reliable biomarker that reflects disease severity and progression has not been discovered to guide the management of Fabry disease. A new method included a simple protein precipitation with acetonitrile in 100 μL of plasma following analyte separation on an Phenomenex Kintex- C18 column using a gradient elution (0.1% formic acid in 5-90% acetonitrile). Total run time was within 12 min including sample preparation and MS/MS analysis. The limit of detection and limit of quantitation were 1 ng/mL and 2 ng/mL, respectively. The calibration curve was linear over the concentration range of 2.0-200.0 ng/mL (r2 = 0.9999). Inter-day accuracy and precision at 7 level were 93.4-100.7% with RSD of 0.55-5.97%. Absolute recovery was 97.6-98.6%. The method was applied to human and mice plasma, proved the suitability for quantification of lyso-Gb3 for screening, diagnosis and therapeutic monitoring of Fabry disease patients.
A method determining the plasma concentration of clotiazepam was developed by using gas chromatography/mass spectrometry with an ion-trap detector and was validated for applying pharmacokinetics to human volunteers orally taken 5 mg dose of clotiazepam. The detection limit was 1 ng/ml and the limit of quantitation was 5 ng/mt. Intraday reproducibility and accuracy bias % were less than 8.2 and 10.2% with inter-day variations for those being within 7.0 and 13.8%, respectively. The recovery of clotiazepam was higher than 87%. The principal pharmacokinetic parameters were determined from the plasma concentration-time plot by non-compartmental or two-compartmental analysis. In non-compartmental analysis, the elimination half-life of 10.4 hr and the area under the curve of 651.3 ng hr/ml were determined, and the maximal concentration (158.6 ng/ml) in the plasma was obtained at 0.56 hr post-dose. The developed method can be appropriate to apply pharmacokinetics and bioequivalence of clotiazepam.
The convenient determination of methylsulfonylmethane (MSM) for a commercially available dietary supplement was developed using gas chromatography (GC)-flame ionization detector (FID). Chromatography was performed on a capillary column ($0.32mm\;I.D{\times}30m$, $0.25{\mu}m$) coated with dimethylpolysiloxane using diethylene glycol methyl ether as an internal standard. The performance characteristics of GC were evaluated in terms of selectivity, linearity, precision, accuracy, recovery, limit of detection (LOD) and limit of quantification (LOQ). The calibration curve was highly linear (the coefficient of determination: 0.9979) within the concentration range of $10.0{\sim}800.0{\mu}g/mL$ for MSM. The recoveries for three fortified concentrations were 96.7~97.1%, 96.6~97.3% and 96.8~97.2%, respectively. The LOD and LOQ of the method were $0.29{\mu}g/mL$ and $0.97{\mu}g/mL$, respectively. All obtained results were acceptable according to the guidelines of the Association of Official Analytical Chemists for dietary supplements. Thus, the validated analytical method using the GC-FID system is suitable for the determination of MSM in dietary supplement formulations for quality control.
This paper reports the example of headspace mulberry paper bag micro solid phase extraction (HS-MPB-$\mu$-SPE) as a new sampling method for the determination of volatile flavor composition of coriander seeds. Adsorption efficiencies between two configurations of mulberry paper bag were compared, and several parameters affecting the HS-MPB-$\mu$-SPE were investigated and optimized. The optimized technique uses an adsorbent (Tenax TA, 0.1 mg) contained in a mulberry paper bag of front configuration where fine surface was outside, and minimal amount of organic solvent (0.6 mL). Linalool and $\gamma$-terpinene were found as abundant flavor compounds from coriander seeds. The limit of detection (LOD) and the limit of quantitation (LOQ) for linalool of major flavor in coriander seeds were 10.3 ng/mL and 34.4 ng/mL, respectively. The proposed method showed good reproducibility and good recovery. The HS-MPB-$\mu$-SPE is very simple to use, inexpensive, requires small sample amounts and solvent consumption. Because the solvent for extraction is reduced to only a very small volume, there is minimal waste or exposure to toxic organic solvent and no further concentration step.
Peanut (Arachis hypogaea) often causes severe allergic reactions in sensitive people. Agglutinin is known to be one of the allergenic proteins in peanut. A polymerase chain reaction (PCR) method was developed to detect peanut ingredients in food using a primer pair corresponding to the agglutinin gene. This primer pair enabled PCR amplification of specific regions of agglutinin DNA from peanut, but not from 11 other nuts, beans, and cereals (pistachio, almond, sunflower seed, pine nut, walnut, soybean, black bean, kidney bean, azuki bean, rice, and black rice). The proposed PCR method successfully identified all of the 6 processed foods containing peanut whereas 13 other processed foods, which don't declare peanuts as an ingredient, were all negative. The detection limit of this method for purified peanut DNA was 100 pg/reaction. The sensitivity of this method was sufficient to detect peanut DNA in soybean DNA mixture which had been spiked with 0.1% peanut DNA.
Analysis of lysophosphatidic acids (LPAs) is of clinical importance as they can serve a potential marker for ovarian and other gynecological cancers and obesity. It is critically important to develop a highly sensitive and specific method for the early detection of gynecological cancers to improve the overall outcome of this disease. We have established a novel quantification method of LPAs in human plasma by negative ionization tandem mass spectrometry (MS-MS) using multiple reaction monitoring (MRM) mode without the conventional TLC step. Protein-bound lipids, LPAs in plasma were extracted with methanol : chloroform (2:1) containing LPA C14:0 as an internal standard under acidic condition. Following back extraction with chloroform and water, the centrifuged lower phase was evaporated and reconstituted in methanol. The reconstituted solution was directly injected into electrospray source of MS/MS. For MRM mode, Q1 ions selected were m/z 409, 433, 435, 437 and 457 which corresponds to molecular mass [M-H]- of C16:0, C18:2, C18:1, C18:0 and C20:4 LPA, respectively. Q2 ions selected for MRM were m/z 79, phosphoryl product. Using MS/MS with MRM mode, all the species of LPAs were completely separated from plasma matrix without severe interferences. This method allowed simultaneous detection and quantification of different species of LPAs in a plasma over a linear dynamic range of 0.01-25 ㎛olL-1 . The detection limit of the method was 0.3 pmol/mL, with a correlation coefficient of 0.9983 in most LPAs analyzed. When applied to the plasmas of normal and gynecological cancer patients, this new method differentiated two different groups by way of total LPA level.
Park, Ju-Hyun;Choi, Sangjun;Koh, Dong-Hee;Park, Donguk;Sung, Yeji
Journal of Korean Society of Occupational and Environmental Hygiene
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v.32
no.1
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pp.21-30
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2022
Objectives: The purpose of this study is to suggest an optimal method by comparing the analysis methods of work environment measurement datasets including left-censored data where one or more measurements are below the limit of detection (LOD). Methods: A computer program was used to generate left-censored datasets for various combinations of censoring rate (1% to 90%) and sample size (30 to 300). For the analysis of the censored data, the simple substitution method (LOD/2), β-substitution method, maximum likelihood estimation (MLE) method, Bayesian method, and regression on order statistics (ROS)were all compared. Each method was used to estimate four parameters of the log-normal distribution: (1) geometric mean (GM), (2) geometric standard deviation (GSD), (3) 95th percentile (X95), and (4) arithmetic mean (AM) for the censored dataset. The performance of each method was evaluated using relative bias and relative root mean squared error (rMSE). Results: In the case of the largest sample size (n=300), when the censoring rate was less than 40%, the relative bias and rMSE were small for all five methods. When the censoring rate was large (70%, 90%), the simple substitution method was inappropriate because the relative bias was the largest, regardless of the sample size. When the sample size was small and the censoring rate was large, the Bayesian method, the β-substitution method, and the MLE method showed the smallest relative bias. Conclusions: The accuracy and precision of all methods tended to increase as the sample size was larger and the censoring rate was smaller. The simple substitution method was inappropriate when the censoring rate was high, and the β-substitution method, MLE method, and Bayesian method can be widely applied.
A new column-switching high performance liquid chromatographic method was developed for the determination of lonazolac in plasma. This method was based on the on-line trace enrichment of lonazolac using a precolumn packed with Amberlite XAD-2. The analysis was complete in 20 min. between injections and the limit of detection was $0.1{\mu}g/ml$ using $100{\mu}l$ of plasma. The method was linear in range of $0.1-10{\mu}g/ml$ with a correlation coefficient of 0.9991. Absolute recovery of lonazolac from the spiked plasma samples ranged from 95.6% to 97.1%. The method was shown to be reproducible over the concentration range studied.
An indirect, sensitive and accurate method for the determination of trace amounts of hydrazine is described. The method is based on the oxidation of hydrazine by a known excess of iodate in the presence of hydrochloric acid. The unreacted iodate is used in the oxidation of hydroxylamine to nitrite. Sulfanilic acid is diazotized by the nitrite formed. The resulting diazonium ion is coupled with N-(1-naphthyl)ethylenediamine to form a stable azo dye, which shows an absorption maximum at 540 nm. Hydrazine can be determined in the range of 20-400 ng $mL^{-1}$ with a detection limit of 3.1 ng $mL^{-1}$. The relative standard deviation for 50, 200 and 400 ng $mL^{-1}$ of hydrazine is 2, 1.5 and 1.3%, respectively (n = 10). The method was applied to the determination of hydrazine in water samples.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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