Jatropha curcas L. (Physic nut) is a commercially important non-edible oil seed crop known for its use as an alternate source of biodiesel. In order to investigate the morphogenic potential of immature embryo, explants from four developmental stages were cultured on medium supplemented with combinations of auxins and cytokinins. It was found that the size of embryo is critical for the establishment of callus. Immature embryos (1.1-1.5 cm) obtained from the fruits 6 weeks after pollination showed a good response of morphogenic callus induction (85.7%) and subsequent plant regeneration (70%) with the maximum number of plantlets (4.7/explant) on Murashige and Skoog's (MS) medium supplemented with IBA (0.5 $mg\;l^{-1}$) and BA (1.0 $mg\;l^{-1}$). The above medium when supplemented with growth adjuvants such as 100 $mg\;l^{-1}$ casein hydrolysate + 200 $mg\;l^{-1}$ L-glutamine + 8.0 $mg\;l^{-1}$$CuSO_4$ resulted in an even higher frequency of callus induction (100%). Plant regeneration (90%) with the maximum number of plantlets (10/explant) was achieved on MS medium supplemented with 500 $mg\;l^{-1}$ polyvinyl pyrrolidone + 30 $mg\;l^{-1}$ citric acid + 1 $mg\;l^{-1}$ BA + 0.5 $mg\;l^{-1}$ Kn + 0.25 $mg\;l^{-1}$ IBA. It was observed that plantlet regeneration could occur either through organogenesis of morphogenic callus or via multiplication of pre-existing meristem in immature embryos. The age of immature embryos and addition of a combination of growth adjuvants to the culture medium appear to be critical for obtaining high regeneration rates. Well-developed shoots rooted on half-halfstrength MS medium supplemented with 0.5 $mg\;l^{-1}$ IBA and 342 $mg\;l^{-1}$ trehalose. The rooted plants after acclimatization were successfully transferred to the field in different agro-climatic zones in India. This protocol has been successfully evaluated on five elite lines of J. curcas.
Kim Young-Sook;Kim Mi-Young;Kang Tae-Jin;Kwon Tae-Ho;Jang Yong-Suk;Yang Moon-Sik
Journal of Plant Biotechnology
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v.7
no.2
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pp.97-103
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2005
This study was carried out to obtain basic information for gene manipulation in potent edible tobacco (Nicotiana tabacum cv. TI 516). N. tabacum cv. TI 516 is a plant for a possible candidate to use as an edible vaccine, since it contains a low level of nicotine. The effective plant regeneration system through leaf disc culture was achieved using a MS basal medium supplemented with 0.1 mg $1^{-1}$ NAA and 0.5 mg $1^{-1}$ BA. In order to transform the N. tabacum cv. TI 516 with the green fluorescent protein (GFP) gene, Agrobacterium tumefaciens LBA 4404 containing the GFP gene was used. Genomic PCR confirmed the integration of the GFP gene into nuclear genome of transgenic plants. Expression of the GFP gene was identified in callus, apical meristem and root tissue of transgenic N. tabacum cv. TI 516 plants using fluorescence microscopy. Western blot analysis revealed the expression of GFP protein in the transgenic edible tobacco plants. The amount of GFP protein detected in the transgenic tobacco plants was approximately 0.16% of the total soluble plant protein (TSP), which was determined by ELISA.
Park, Jong-Suk;Kim, Suk-Weon;In, Dong-Su;Eun, Jong-Seon
Journal of Plant Biotechnology
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v.30
no.1
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pp.109-113
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2003
Cryopreservation of embryogenic callus derived from apical meristem culture was attempted by slow prefreezing method (two-step method) with various cryoprotectants in sweetpotato cv. 'Yulmi' Precultured embryogenic calli on medium containing 10 mg/L ABA prior to slow prefreezing in liquid nitrogen indicated higher survival rate than 1.0 mg/L ABA preteatment. The cryoprotectant comprising 1.28 M DMSO in 0.4 M sucrose solution gave the best survival (over 46%) of sweetpotato cells exposed to liquid nitrogen as determined by TTC reduction and FDA staining method. Cryopreserved calli cultured on MS medium with 1.0 mg/L 2,4-D were grown for 4 weeks in the dark and induced embryos after another 4 weeks. They were subcultured on MS medium supplemented with 0.1 mg/L 2,4-D+0.1 mg/L kinetin for 2 weeks and regenerated into normal plantlets in MS basal medium.
$\beta$-Glucuronidase (GUS) gene of Escherichia coli was introduced into sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam.) cells by particle bombardment and expressed in the regenerated plants. Microprojectiles coated with DNA of a binary vector pBI121 carrying CaMV35S promoter-GUS gene fusion and a neomycin phosphotransferase gene as selection marker were bombarded on embryogenic calli which originated from shoot apical meristem-derived callus and transferred to Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 1 mg/L 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and 100 mg/L kanamycin. Bombarded calli were subcultured at 4 week intervals for six months. Kanamycin-resistant calli transferred to MS medium supplemented with 0.03 mg/L 2iP, 0.03 mg/L ABA, and 50 mg/L kanamycin gave rise to somatic embryos. Upon transfer to MS basal medium without kanamycin, they developed into plantlets. PCR and northern analyses of six regenerants transplanted to potting soil confirmed that the GUS gene was inserted into the genome of the six regenerated plants. A histochemical assay revealed that the GUS gene was preferentially expressed in the vascular bundle and the epidermal layer of leaf, petiole, and tuberous root.
The repeated subcultures of in vitro plant materials in wasabi became highly vitrified and the capacity for multiple shoot formation from the vitrified plant materials was very low. In order to improve the quality of in vitro propagated planting materials, the experiments were carried out using culture vessels capped with membrane filter(MF). When vitrified shoots were cultured on MS medium with 0.2mg/L BA in the vessels with MF or without MF for 60 days, the shoots in the vessels with MF did not vitrified. In contrast, the shoots grown in the vessels without MF vitrified at 65%. The stomates of vitrified leaves were circular and inflated, whereas those of normal leaves acclimatizated in the vessels with MF were ovate in shape. The hardened shoots were also cultured on MS media without sucrose containing 0.01mg/L IBA in vessels with(photoautotrophic culture) or without(control) MF. Sucrose was necessary for survival of the in vitro plantlets in the vessels without MF. After 20 days of culture, the shoots in the vessels without MF on the sucrose-free media turned yellow and died. But the shoots in the vessels with MF in the sucrose-free media produced a lot of roots. When shoots were cultured on MS medium with 2% sucrose containing 0.01mg/L IBA in the vessels with(photomixotrophic culture) or without(heterotrophic culture) MF, best growth occured in photomixotrophic culture.
The single node cuttings of sweet potato (cv. Mokpo #29) plantlets maintained in vitro were cultured with (MF+) or without membrane filter (MF-) under photomixotrophic (PM), hetrotrophic (HT) and autotrophic (AT) conditions. Shoot length was the greatest (11.9cm) in 3$0^{\circ}C$ (HT) treatment and it was the shortest (3.4 cm) in $25^{\circ}C$ (PM) treatment. Nodal explants cultured in 3$0^{\circ}C$ treatment looked more vigorous than those of $25^{\circ}C$ in appearance, and node number was the greatest (10.5 per plantlet) among the treatments. But plantlets grew in 3$0^{\circ}C$ (HT) treatment were observed all overgrown. The size in leaf area was about 2 times greater and shoot length was about 2 times shorter in PM than in HT condition. Percent dry matter of shoots was 5.9% (HT) and 7.4% (PM) in $25^{\circ}C$ treatment and 6.1% (HT) and 7.4% (PM) in 3$0^{\circ}C$ treatment. Plantlets cultured in the MF+ treatments were less succulent than those cultured in the MF- treatment. Vitrified plantlets were examinated 14.8% (both $25^{\circ}C$ and 3$0^{\circ}C$) in PM condition and 22.2% ($25^{\circ}C$) and 31.5% (3$0^{\circ}C$) in HT condition. Sucrose was necessary for the survival of in vitro plantlets. In the sucrose-free medium, explants cultured in the MF- had turned yellow and were dead after 30 days of culture. But explants cultured in the MF+ were alive and produced plantlets with shoot and root (AT). On the other hand, the survival of explants on the MS basal medium (sucrose-free and hormone-free) depended entirely upon the MF attachment.
This was carried out to develop a chromosome-doubled (12x) persimmon that will be used as a crossing parent to select seedless persimmon cultivars with the change of the consumption trend recently. To obtain a chromosome-doubled (12x) persimmon, colchicine was applied at the meristem of seedlings in vitro derived from cross among hexaploid persimmon (Diopyros kaki Thunb.). These were treated with 0.03%, 0.05% and 0.1% colchicine respectively for doubling chromosome, and it was most effective at the concentration of 0.05% colchicine. After colchicine treatment, we conducted tests to elucidate conditions for inducing shoot and root development. As the result, the shoots grew best when cultivated at 1/2MS media plus 10 and $30{\mu}M$ zeatin respectively, and the roots grew best when cultivated at 1/2MS media after dipping for 5 seconds at 10 mM NAA+5% DMSO. We also compared seedlings that have chromosome (6x) do not doubled and crossing parents (6x) and chromosome-doubled seedlings (12x). As the result, these chromosome-doubled seedlings (12x) showed lower stomatal density and larger stomatal size.
Useful Dianthus species were collected and selected from two native and seven foreign species distributed in Gangwon province. For in vitro breeding,. callus was induced from the explants of apical meristem, leaf, stem and the in vitro adventitious shoots on MS basal medium with 2.0 mg/L 2,4-D and 0.5 mg/L BA at 27$^{\circ}C$ under continuous light. After 3 weeks of culture, calli initiated the most highly from the leaf explants of D. chinensis Organogenic calli were able to be selected from the adventitious shoot-derived calli. For shoot regeneration, these organogenic calli were cultured on MS medium with the combination of 0.1 mg/L NAA+1.0 mg/L BA under continuous light. Multiple shoots were proliferated with low frequency (about 30%) from those adventitious shootderived calli. Also, shoots initiated directly from the adventitious shoot explants without callus formation at high frequency of 52% when cultured on N6 medium containing 0.1 mg/L NAA and 1.0 mg/L BA in D. gratianopol. Multiple shoots and plantlets grew well and rooted on MS medium supplemented with 0.1 mg/L NAA. Regenerants with well-developed roots were transferred to 8-cm pots containing vermiculite at 85% relative humidity and 27$^{\circ}C$ These plantlets were acclimatized in artificial soil mixture and transferred to the greenhouse for flowering with normal phenotypes. M28 Mutant line was selected with white flowers from 0.03M EMS-treated organogenic calli derived from in vitro adventitious shoot explants of D. chinensis and set seeds.
In order to investigate the effect of plant growth regulators on effective in vitro micropropagation, apical meristems of Pulsatilla cernua var. koreana were cultured on Murashige and Skoog's (MS) medium with 2,4-D, NAA, TDZ and BA. Media containing 2,4-D and kinetin, 2,4-D and TDZ, NAA and TDZ were not effective on callus induction. However, embryogenic or organogenic callus was obtained on media containing NAA and BA. Especially, on MS medium with 0.5mg/L NAA and 1.0mg/L BA was optimal for a high frequency (62%) of shoot or shoot bud obtained from callus. Callus proliferation, shoot multiplication and elongation were significantly increased by adding 10% coconut water on MS media with 0.5mg/L NAA and 1.0mg/L BA. Repeated subculturing of in vitro grown shoots resulted in propagation rate of 12.9 shoots per explant every 30 days. Root formation from the adventitious shoots was not easily achieved. However, roots were only produced through callus on MS medium with 2.0mg/L NAA alone or 0.5mg/L NAA and 1.0mg/L BA. These roots were used materials for callus and shoot production repetitively.
In order to determine the effects of cytokinin and auxin on organ formation from tissue of garlic cloves, leaf blades and basal tissues contained meristem of garlic (Allium sativum L.) cloves harvested in 1979 (old cloves) and 1980 (new cloves) were explanted on a MS medium contained various levels of BA ($N^6$-benzyl amino purine), NAA (naphthalene acetic acid), and 2, 4-D (2, 4-dichlorophenoxyacetic acid). And some of the new cloves were explanted on a media contained BA and NAA after chilling treatment at $4^{\circ}C$ for 10, 20, 30 and 40 days. 1. In a culture of leaf blades of old cloves, shoots were differentiated on a medium supplemented with 2mg/l of BA and NAA. 2. Callus was grown as a quite straw-coloured globular mass on a medium contained 0.2 or 2mg/l 2.4-D. 3. As subcultures of globular calli, shoots and roots were differentiated on a medium contained 2mg/l BA and 0.5 or 1 mg/l NAA, whereas no shoots was shown on a conterol. 4. Shoots were differentiated in a culture of leaf blades of new cloves, but they were not in an old cloves in control, and better effect was shown on a medium contained 2mg/l BA and 1mg/l NAA. However shoots were no differentiated from leaf blades chilled at $4^{\circ}C$ for 30 or 40 days at the same condition. 5. Large numbers of adventitious shoots could be obtained from basal region of garlic cultured on a medium contained 1mg/l BA and 4mg/l NAA, or 2mg/l BA and 2mg/l NAA.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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