A simple procedure for the extraction of the lipolytic enzyme from rice bran has been developed. High activity of lipolytic enzyme was obtained by first defatting the rice bran to remove lipid components with various extraction conditions. Then, after rove cycles of aqueous extraction, rice bran lipolytic enzyme was purified using micro- and ultrafiltration apparatus. Lipolytic enzyme activity was estimated by its hydrolytic action of tributyrin. The result indicated that the standard activity curve of butyric acid showed that the potential rice bran enzyme is a hydrolytic lipase enzyme. In addition, it showed higher lipolytic activity and specific enzyme activity with further purification by micro- and ultrafiltration. The size of rice bran lipase enzyme was identified through 15 % SDS-PAGE. The molecular weight of the rice bran lipase enzyme was 41 kDa.
A simple procedure for the extraction of the lipolytic enzyme from rice bran has been developed. High activity of lipolytic enzyme was obtained by first defatting the rice bran to remove lipid components with various extraction conditions. Then, after five cycles of aqueous extraction, rice bran lipolytic enzyme was purified using micro- and ultrafiltration apparatus. Lipolytic enzyme activity was estimated by its hydrolytic action of tributyrin. The result indicated that the standard activity curve of butyric acid showed that the potential rice bran enzyme is a hydrolytic lipase enzyme. In addition, it showed higher lipolytic activity and specific enzyme activity with further purification by micro- and ultrafiltration.
Park, In-Hye;Kim, Sun-Hee;Lee, Sang-Cheol;Ahn, Soon-Cheol;Kim, Cheol-Min;Choi, Yong-Lark
Journal of Life Science
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v.16
no.4
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pp.555-560
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2006
A bacterium producing novel lipolytic enzyme was isolated from house sewage and identified as Acinetobacter sp. BD5 based on physiological characterization and 16S rDNA sequencing. The lipolytic activity of Acinetobacter sp. BD5 was tested using an EL agar medium and CE agar medium supplemented with 1% tributyrin and olive oil, respectively. The formation of a clear zone around the colony was detected by agar medium supplemented with 1% tributyrin and olive oil, respectively and Acinetobacter sp. BD5 formed powder-like zone around the colony on LB agar medium containing Tween 20. The quantitative lipolytic activity was determined by using p-NP butyrate as substrate. Acinetobacter sp. BD5 secreted the lipolytic enzyme during exponential growth phase, reaching a maximum amount after 6 hours of incubation. The lipolytic enzyme was found to be optimally active at $60^{\circ}C$ and retained more than 70% at $70-80^{\circ}C$. It displayed a high degree of activity in a pH of 7.0 to 10.6, with an optimal pH of 9.0.
A microorganism (strain AR1) producing an extracellular lipolytic enzyme was isolated from hot springs located in Beppu, Japan. Phylogenetic analysis based on the 16S rDNA sequence and biochemical studies indicated that AR1 belongs to the genus Geobacillus. This study focused on novel strategies to increase extracellular lipolytic enzyme production by this novel Geobacillus sp. AR1. Cultures of the AR1 strain grew within a wide temperature range (from 35 to $75^{\circ}C$); the optimum temperature was $65^{\circ}C$. The pH for optimal growth was 6.5, whereas the optimum pH for lipolytic enzyme production was 8.5. The presence of oils in the culture medium led to improvements in lipolytic enzyme activity. Soybean oil was the most efficient inducer, and it yielded better results when added in the exponential phase. On the other hand, the addition of chemical surfactants led to lipolytic enzyme production. Their addition to the culture could affect the location of the enzyme activity. The addition of Tween 20 in the stationary phase significantly increased the proportion of the extracellular enzyme activity. According to the results, following the addition of soybean oil and Tween 20 in the exponential and stationary phases, the extracellular lipolytic activity was increased 2.4-fold compared with that of a control.
Kumar, G.Satheesh;Reddy, T. Kiran;Madhavi, B.;Teja, P.Charan;Chandra, M.Subhosh;Choi, Yong-Lark
Journal of Life Science
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v.20
no.5
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pp.662-669
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2010
Lipolytic enzyme-producing bacteria were isolated from edible oil mill effluents on tributyrin agar medium. The shake-flask-scale studies yielded a promising isolate and it was identified as Pseudomonas sp. An OME using various microbiological observations such as cultural, microscopic, and biochemical tests was undertaken and confirmed using PIBWIN bacterial identification software. Lipolytic enzyme production was screened with oils such as sunflower, caster, coconut, tributyrin, and olive. Amongst these, olive oil showed an increased lipase production 6.1 U/ml. In view of the highest lipolytic enzyme production with olive oil, further optimizations were carried out using olive oil as a carbon source. Lipolytic enzyme production was optimized by a conventional 'one variable at a time' approach and the significant factors were further analyzed statistically using response surface methodology (RSM). The effect of physical factors such as incubation time, temperature, initial medium pH, and nutritional factors such as concentration of olive oil and yeast extract were examined for lipase production. Lipolytic enzyme secretion was strongly affected by three variables (incubation time, concentration of yeast extract and olive oil). Therefore, the interaction of these three factors was further optimized using response surface methodology. The optimized conditions of lipase production using response surface methodology yielded a maximum of 9.62 U/ml with optimum conditions for incubation, yeast extract and olive oil concentrations were found to be 48 hr, 0.3 g. and 0.9 ml. respectively.
A metagenome is a unique resource to search for novel microbial enzymes from the unculturable microorganisms in soil. A forest soil metagenomic library using a fosmid and soil microbial DNA from Gwangneung forest, Korea, was constructed in Escherichia coli and screened to select lipolytic genes. A total of seven unique lipolytic clones were selected by screening of the 31,000-member forest soil metagenome library based on tributyrin hydrolysis. The ORFs for lipolytic activity were subcloned in a high copy number plasmid by screening the secondary shortgun libraries from the seven clones. Since the lipolytic enzymes were well secreted in E. coli into the culture broth, the lipolytic activity of the subclones was confirmed by the hydrolysis of p-nitrophenyl butyrate using culture supernatant. Deduced amino acid sequence analysis of the identified ORFs for lipolytic activity revealed that 4 genes encode hormone-sensitive lipase (HSL) in lipase family IV. Phylogenetic analysis indicated that 4 proteins were clustered with HSL in the database and other metagenomic HSLs. The other 2 genes and 1 gene encode non-heme peroxidase-like enzymes of lipase family V and a GDSL family esterase/lipase in family II, respectively. The gene for the GDSL enzyme is the first description of the enzyme from metagenomic screening.
KIM JEONG-NYEO;SEO MYUNG-JI;CHO EUN-AH;LEE SANG-JAE;KIM SEONG-BO;CHEIGH CHAN-ICK;PYUN YU-RYANG
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.15
no.5
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pp.1067-1072
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2005
A metagenomic library was constructed using a fosmid vector, and total genomic DNA was extracted directly from soil at Cisolok (hot spring area, Indonesia). This library was composed of 10,214 clones and screened for lipolytic enzyme on tributyrin agar plates. An esterase gene (estMa) was subcloned and sequenced from a positive lipolytic active clone. Esterase EstMa was encoded by a 954-bp open reading frame and showed low ($11-33\%$) amino acid similarity to known esterases. The amino acid sequence analysis demonstrated that the enzyme is a new member of lipolytic enzyme family VI. The estMa gene encodes a preprotein of 317 amino acids with a predicted molecular mass of 34,799 Da. The purified enzyme exhibited optimal activity at $50^{\circ}C$ and pH 6.5. The $K_m,\;and\;V_{max}$ values of EstMa for the hydrolysis of p-nitrophenyl valerate were $45.3\;{\mu}M$ and 4.45 U/mg, respectively.
Pathogenic microbes secrete various enzymes with lipolytic activities to facilitate their survival within the host. Lipolytic enzymes include extracellular lipases and phospholipases, and several lines of evidence have suggested that these enzymes contribute to the virulence of pathogenic fungi. Candida albicans and Cryptococcus neoformans are the most commonly isolated human fungal pathogens, and several biochemical and molecular approaches have identified their extracellular lipolytic enzymes. The role of lipases and phospholipases in the virulence of C. albicans has been extensively studied, and these enzymes have been shown to contribute to C. albicans morphological transition, colonization, cytotoxicity, and penetration to the host. While not much is known about the lipases in C. neoformans, the roles of phospholipases in the dissemination of fungal cells in the host and in signaling pathways have been described. Lipolytic enzymes may also influence the survival of the lipophilic cutaneous pathogenic yeast Malassezia species within the host, and an unusually high number of lipase-coding genes may complement the lipid dependency of this fungus. This review briefly describes the current understanding of the lipolytic enzymes in major human fungal pathogens, namely C. albicans, C. neoformans, and Malassezia spp.
Lipolytic characteristics of candia cylindracea lipase was studied by various triacylglycerols with different fatty acyl chains as substrate. The substrate was emulsified with gum arabic and the rate of hydrolysis was determined by pH stat method. The effects of gum concentration, pH, temperature, and $Ca^{2+}$ ion on the enzyme activities were examined. The results show that the effect of these factors are markedly depending on the structurla nature of substrates. The triolein was the best substrate among tested. Present study demonstrates that for characterization of lipolytic enzymes, it is critically important to select proper substrate and activator.r.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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