A simple procedure for rapid isolation of plasmid DNA from lactobacillus species and streptococcus species is described. Lactic acid bacteria were cultured in the TCM broth containing 0.5% glycine and plasmid DNA was isolated from cells treated with mutanolysin by alkaline-detergent lysis method. Good results for releasing and isolating plasmid DNA from lactobacillus species were obtained by treatment of cells with 30$\mu\textrm{g}$ of mutanolysin per ml at 37$^{\circ}C$ for 5 to 10 min. For the streptococcus species, the optimum conditions were slightly different. The procedure could be used for rapid characterization of plasmid DNA in Lactobacillus casei, Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus helveticus, Streptococcus lactis, Streptococcus faecalis, Streptococcus faecium, and Streptococcus cremoris strains. Using this procedure, plasmids isolated from $1.5m\ell$ cultures could readily be visualized in agarose gel.
Lactic acid bacteria (LAB) are widely used for various food fermentation. With the recent advances in modern biotechnology, a variety of bio-products with the high economic values have been produced using microorganisms. For molecular cloning and expression studies on the gene of interest, E. coli has been widely used mainly because vector systems are fully developed. Most plasmid vectors currently used for E, coli carry antibiotic-resistant markers. As it is generally believed that the antibiotic resistance markers are potentially transferred to other bacteria, application of the plasmid vectors carrying antibiotic resistance genes as selection markers should be avoided, especially for human consump-tion. By contrast, as LAB have some desirable traits such that the they are GRAS(generally recognized as safe), able to secrete gene products out of cell, and their low protease activities, they are regarded as an ideal organism for the genetic manipulation, including cloning and expression of homologous and heterologous genes. However, the vec-tor systems established for LAB are stil insufficient to over-produce gene products, stably, limiting the use of these organisms for industrial applications. For a past decade, the two popular plasmid vectors, pAM$\beta$1 of Streptococcus faecalis and pGK12 theB. subtilis-E. coli shuttle vector derived from pWV01 of Lactococcus lactis ssp. cremoris wg 2, were most widely used to construct efficient chimeric vectors to be stably maintained in many industrial strains of LAB. Currently, non-antibiotic markers such as nisin resistance($Nis^{r}$ ) are explored for selecting recombi-nant clone. In addition, a gene encoding S-layer protein, slp/A, on bacterial cell wall was successfully recombined with the proper LAB vectors LAB vectors for excretion of the heterologous gene product from LAB Many food-grade host vec-tor systems were successfully developed, which allowed stable integration of multiple plasmid copies in the vec-mosome of LAB. More recently, an integration vector system based on the site-specific integration apparatus of temperate lactococcal bacteriophage, containing the integrase gene(int) and phage attachment site(attP), was pub-lished. In conclusion, when various vector system, which are maintain stably and expressed strongly in LAB, are developed, lost of such food products as enzymes, pharmaceuticals, bioactive food ingredients for human consump-tion would be produced at a full scale in LAB.
Lee, Deog-Yong;Seo, Yeon-Soo;Kang, Sang-Gyun;Yoo, Han Sang
Korean Journal of Veterinary Research
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v.47
no.2
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pp.157-162
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2007
Lactic acid bacteria (LAB) has been regarded as a useful microorganism and tried to manipulate plasmid DNA for increasing the usefulness. Although several methods have been developed to isolate plasmid DNA from Escherichia coli (E. coli), these methods were not sufficient to apply to LAB with exception of O'Sullivan's lysis method. So, we evaluated plasmid DNA extraction from LAB using general E. coli preparation methods and tried to improve the extraction yield and DNA purity by modifying O'Sullivan's alkaline lysis method. To improve the extraction yield, salt and carrier were added to precipitant and those were incubated at $-70{^{\circ}C}$. Only incubation at $-70{^{\circ}C}$ was the effective method of those modifications. Purity of plasmid DNA was improved by two times of each centrifugation and phenol/chloroform extraction. However, DNA was damaged by twice extraction with phenol/chloroform. Also, exclusion of ethidium bromide showed negative effect to purity. Additionally, it was recommended that improvement of the extraction yield may be due to centrifugation at high speed for more time and to dissolving complete DNA pellet before addition of 7.5 M ammonium acetate. Extraction using this modification produced higher quality of plasmid DNA.
From the extensive screening for small cryptic plasmid among about 23 lactic acid bacteria (LAB), 2.4 kb of cryptic plasmid was isolated from Lactobacillus farciminis strain KCTC 3681 and named as pLF24. The plasmid pLF24 was a circular molecule of 2,396 base-pairs in length with a G+C content of 38%. Two protein-coding sequences could be predicted. ORF1 and ORF2 showed homologies to plasmids of gram-positive bacteria. The replication protein coded by ORF2 and the plus origin, were similar to replication regions of other gram-positive bacteria as shown in plasmids such as pLH2, pLS141-1 and pLC2. The nucleotide sequence of pLF24 was deposited into Genbank data base with an accession number of EU429343. The newly isolated plasmid can be used for construction of shuttle vector in Lactobacillus bacteria.
Pediococcus acidilactici strain M produced a bacteriocin which was proteinaceous, heat stable, and exhibited antimicrobial activity against lactic acid bacteria, variety of food spoilage and pathogenic bacteria. The antimicrobial activity was not caused by $H_2$$O_2$ and organic acid, and was remained between pHs of 4.0 to 9. Molecular weight of crude bacteriocin was approximately 2, 500. Phenotypic assignment after plasmid cruing experiment demonstrated that a 53.7 kilobase (kb) plasmid, designated as pSUC53, was responsible for the sucrose fermentation phenotype ($Suc^+$) and a 11.1 kb plasmid, designated as pBAC11, was associated with bacteriocin production phenotype ($Bac^+$). Neither of the two plasmids were linked to antibiotic resistance.
Three distinct plasmids, with approximate molecular weights of 1, 4.5, and 33 megadaltons, were found in Lactococcus lactis subsp. lactis (L. lactis) ML8. Slow acid-producing mutants of L. lactis ML8, isolated by plasmid curing with acriflavine treatment, lacked the 33-megadalton plasmids. The plasmid-cured mutant showed lactose-negative (Lac) characteristics and the alteration of extracellular proteinase pattern. The possible involvement of extracellular proteinase with the 33-megadalton plasmid is highlighted in this research.
The nucleotide sequence contains 2 open reading frames encoding a 45-amino-acid protein homologous to a transcriptional repressor protein CopG, and a 203-amino-acid protein homologous to a replication protein RepB. Putative countertranscribed RNA, a double-strand origin, and a single-strand origin were also identified. A shuttle vector, pUCL2.1, for various lactic acid bacteria (LAB) was constructed on the basis of the pCL2.1 replicon, into which an erythromycin-resistance gene as a marker and Escherichia coli ColE1 replication origin were inserted. pUCL2.1 was introduced into E. coli, Lc. lactis, Lactobacillus (Lb.) plantarum, Lb. paraplantarum, and Leuconostoc mesenteroides. The recombinant LAB maintained traits of transformed plasmid in the absence of selection pressure over 40 generations. Therefore, pUCL2.1 could be used as an E. coli/LAB shuttle vector, which is an essential to engineer recombinant LAB strains that are useful for food fermentations.
The cured mutant strains (CW, CSM, CEM, CAM) we obtained from Lactobacillus casei YIT 9018 spontaneously and by ethidium bromide treatments. The lactose fermenting ability of those mutants was tested and plasmid was found to have some functions in lactose metabolism. Plasmid (PLC) has been detected in Lactobacillus casei YIT 9018, but has not been detected in mutants CSM, CEM, CAM. These plasmid curred mutants showed a decrease in the ability to produce lactic acid from lactose.
Chae, Han Seung;Lee, Jeong Min;Lee, Ju-Hoon;Lee, Pyung Cheon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.23
no.6
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pp.837-842
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2013
A cryptic plasmid, pMBLR00, from Leuconostoc mesenteroides subsp. mesenteroides KCTC 3733 was isolated, characterized, and used for the construction of a cloning vector to engineer Leuconostoc species. pMBLR00 is a rolling circle replication plasmid, containing 3,370 base pairs. Sequence analysis revealed that pMBLR00 has 3 open reading frames: Cop (copy number control protein), Rep (replication protein), and Mob (mobilization protein). pMBLR00 replicates by rolling circle replication, which was confirmed by the presence of a conserved double-stranded origin and single-stranded DNA intermediates. An Escherichia coli-Leuconostoc shuttle vector, pMBLR02, was constructed and was able to replicate in Leuconostoc citreum 95. pMBLR02 could be a useful genetic tool for metabolic engineering and the genetic study of Leuconostoc species.
Tetracycline resistant bacterial strains were isolated from 10 batches of Kimchi among 50 batches collected in Taegu restrict. The MIC of tetracycline ranged between 25 and> 100 ㎖/l. Total genomic DNA preparation from all 10 tetracycline resistant lactic acid bacterial isolates were subjected to PCR amplification with class-specific primers for tet(M) and tet(O). In only one isolate, HJ9, tet(M) was detected. By Southern blotting and hybridization with a tet(M)-specific probe, the tet(M) gene of HJ9 isolate could be localized on a plasmid. The partial nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of tet(M) of HJ9 showed 90-99% and 94-100% homology to those of Gram positive bacteria, respectively. With sequencing of 16S rRNA, HJ9 isolate from Kimchi was identified as Lactobacillus sakei. From these results, Kimchi can be considered potential vehicle for the spread of antibiotic-resistant lactic acid bacteria along the food chain to the consumer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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