Using the nodY::lacZ fusion system in Bradyrhizobium japonicum USDA 110, 22 flavonoids, which have structurally different features, were tested to define the role of the substituted functional groups as an inducer or inhibitor for the nod gene expression. A functional ,group of 4'-OH on the B-ring and the double bond between 2-C and 3-C on the C ring were required to induce the nod gene expression in B. japonicum USDA 110. In the case of isoflavones, the 4'-methoxyl group, which blocks the open 4'-OH functional group, did not significantly lower inducing activity, as compared with isoflavones with 4'-OH. However, all flavonols tested, which have a 3-OH functional group on the C-ring, did not induce, but inhibited the nod gene expression. Flavone, 7-hydroxyflavone, and kaempferol (5,7,4'-trihydroxyflavonol) at $1\;{\mu}M$ concentration significantly inhibited the nod gene expression induced by 7,4'-dihydroxyflavone. However, 7-hydroxy-4'-methoxyflavone at $1\;{\mu}M$ concentration showed a synergistic effect with genistein and 7,4'-dihydroxyflavone on the induction activity.
The baculovirus egt gene encodes an ecdysteroid UDP-glucosyltransferase(EGT) which catalyzes the transfer of glucose from UDP-glucose to the insect moltion hormone ecdysteroid resulting in a functionally inactive ecdysteroid. In baculovirus-infected insect larvae, EGT has been shown block molting and pupation. In this study, we compared the development of 4th and 5th instar silkworm, Bombyx mori, larvae injected with either wild-type bombyx mori nucleopolyhedrovirus (BmNPV) or a mutant BmNPV(BmEGTZ) in which the egt gene was disrupted by the insertion of a lacZ gene cassette. Larvae injected with BmEGTZ died roughly 12 h more rapidly compared to indentical larvae infected with BmNPV. In addition, BmEGTZ- infected larvae prematurely stopped feeding and gain less weight compared to BmNPV-infected larvae. In order to investigate why BmEGTZ-infected larvae died more rapidly than BmNPV-infected larvae, the array of hemolymph proteins in BmEGTZ-or BmNPV-infected larvae were analyzed by SDS-PAGE. The hemolymph of BmEGTZ-infected larvae showed virus-specific proteins, including polyhedrin, about 12 h earlier than the hemolymph of BmNPV-infected larvae
The nar promoter of Escherichta coli, which is maximally induced under anaerobic conditions in the presence of nitrate, was characterized to see whether the nar promoter cloned onto pBR322 can be used as an expression promoter. The modified nar promoter, in which several bases in the -10 region was mutated to the consensus sequence by site-directed mutagenesis, was characterized in E. coli, on which chromosome the fnr gene affecting expression of the nar promoter according to dissolved oxygen level was mutated. The E. coli lacZ gene was used as a reporter gene. The following effects were investigated to find optimal conditions to induce the modified nar promoter: induction methods, optimal nitrate concentrations, the amount of ${\beta}$-galactosidase expressed at the different growth conditions, and induction characteristics. The following results were obtained from the experiments : expression of ${\beta}$-galactosidase from the modified nar promoter was not affected much by nitrate concentrations. The maximal specific ${\beta}$-galactosidase activity was obtained when E. coli was grown under aerobic conditions, and then the modified nar promoter was induced at OD600=2.2 under microaerobic conditions (DO=1∼2%), under which conditions the maximal specific ${\beta}$-galactosidase activity was 13,000 Miller units. However, the specific ${\beta}$-galactosidase activity was approximately 6,000 Miller units even before the modified nar promoter was induced. Therefore, the modified nar promoter seemed to be useful when the cloned gene wants to be expressed in E. coli constitutively.
In vivo expression technology (IVET) has been developed to study bacterial gene expression in Salmonella typhimurium during host infection. The expression of selected genes by IVET has been elevated in vivo but not in vitro. The selected genes turned out to be important for bacterial virulence and/or pathogenicity. IVET depends on a synthetic operon with a promoterless transcriptional fusion between a selection marker gene and a reporter gene. The IVET approach has been successfully adapted in other bacterial pathogens and plant-associated bacteria using different selection markers. Pseudomonas putida suppresses citrus root rot caused by Phytophthora parasitica and enhances citrus seedling growth. The WET strategy was adapted based on a transcriptional fusion, pyrBC'-lacZ, in P. putida to study the bacterial traits important far biocontrol activities. Several genes appeared to be induced on P. parasitica hyphae and were found to be related with metabolism and regulation of gene expression. It is likely that the biocontrol strain took a metabolic advantage from the plant pathogenic fungus and then suppressed citrus root rot effectively. The result was parallel with those from the adaptation of IVET in P. fluorescens, a plant growth promoting rhizobacteria (PGPR). Interestingly, genes encoding components for type III secretion system have been identified as rhizosphere-induced genes in the PGPR strain. The type III secretion system may play a certain role during interaction with its counterpart plants. Application of IVET has been demonstrated in a wide range of bacteria. It is an important strategy to genetically understand complicated bacterial traits in the environment.
The age-46.5 gene of Escherichia coli is induced by nitrate ion and regulated by Fnr, NarL, and NarP during anaerobic growth. aeg-46.5::lacZ fusion gene shows its maximum expression in narL host after two hours of aerobic to anaerobic switch in M9-Glc-nitrate medium. Fnr and NarP act as positive regulators, and NarL acts as a negative regulator. The control region of the aeg-46.5 was identified and the binding sites of regulator proteins have been predicted (Reznikoff and Choe (1993)). It has two symmetry regions. One is located at -52~-37 bp from the anaerobic mRNA 5'-end, which is the binding site of NarL and NarP. The other is located at +37~+56 bp from the 5'-end of mRNA. In this study, the downstream symmetry region from the mRNA 5'-end was investigated by site-directed mutagenesis. The destruction of the symmetry region increases the expression level of aeg-46.5. We propose that the symmetry region interferes with the expression of aeg-46.5 possibly by forming a stem-and-loop structure.
KIM DAE-SUN;PARK YONG-IL;LEE HYANG BURM;KIM YOUNGJUN
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.15
no.3
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pp.678-682
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2005
The promoter region of a carbon starvation gene isolated from Pseudomonas putida was cloned and analyzed for its potential use for in situ bioremediation and bioprocessing. We constructed a recombinant plasmid pMKD101 by cloning the 0.65 kb promoter region of the gene into the promoter proving vector, pMK301, which contains the lacZ for ${\beta}$-galactosidase activity as a reporter gene. pMKD101 was transformed into the wild-type P. putida MK1, resulting in P. putida RPD101, and analyzed for ${\beta}$-galactosidase activity under different culture conditions. When RPD101 was grown on the minimal medium plus $0.1\%$ glucose as a sole carbon source in batch cultures, ${\beta}$-galactosidase activity was found to be 3.2-fold higher during the stationary phase than during the exponential phase. In chemostat cultures, ${\beta}$-galactosidase activity was found to be 3.1-fold higher at the minimal growth rate (dilution rate=$0.05\;h^{-1}$) than at the maximal growth rate (dilution rate=$0.173;h^{-1}$). The results suggest that a carbon starvation promoter can be utilized to maximize the expression of a desired gene under nutrient limitation.
Development of expression vectors is important for the basic and applied researches on kimchi LAB (lactic acid bacteria). An expression vector, pSJE6c was constructed by inserting P6C promoter sequence from Lactococcus lactis into pSJE, a shuttle vector for E. coli and Leuconostoc species. To test the efficiency of pSJE6c, aga ($\alpha$-galactosidase) and lacZ ($\beta$-galactosidase) genes were expressed in Lactobacillus brevis 2.14. Compared to the pSJE, expression levels of both genes were increased, indicating P6C promoter was better than indigenous promoters. Enzyme activities of L. brevis cells harboring pSJE6caga (pSJE6c with aga) or pSJE6Z (pSJE6c with lacZ) were 1.5-2 fold higher than those with pSJEaga (pSJE with aga) or pSJEZ (pSJE with lacZ). More RNA transcripts were detected in cells harboring pSJE6c based recombinant plasmid. The results indicated that heterologous gene expressions in kimchi LAB could be improved significantly by use of efficient expression vectors.
As an opportunistic bacterial pathogen, Pseudomonas aeruginosa PAO1 contains two phenazine-producing gene operons, phzA1B1C1D1E1F1G1 (phz1) and phzA2B2C2D2E2F2G2 (phz2), each of which is independently capable of encoding all enzymes for biosynthesizing phenazines, including phenazine-1-carboxylic acid and its derivatives. Other previous study reported that the RpoS-deficient mutant SS24 overproduced pyocyanin, a derivative of phenazine-1-carboxylic acid. However, it is not known how RpoS mediates the expression of two phz operons and regulates pyocyanin biosynthesis in detail. In this study, with deletion of the rpoS gene in the $PA{\Delta}phz1$ mutant and the $PA{\Delta}phz2$ mutant respectively, we demonstrated that RpoS exerted opposite regulatory roles on the expression of the phz1and phz2 operons. We also confirmed that the phz1 operon played a critical role and especially biosynthesized much more phenazines than the phz2 operon when the rpoS gene was knocked out in P. aeruginosa. By constructing the translational reporter fusion vector lasR'-'lacZ and the chromosomal fusion mutant $PA{\Delta}lasR::lacZ$, we verified that RpoS deficiency caused increased expression of lasR, a transcription regulator gene in a first quorum sensing system (las) that activates overexpression of the phz1 operon, suggesting that in the absence of RpoS, LasR might act as an intermediate in overproduction of phenazine biosynthesis mediated by the phz1 operon in P. aeruginosa.
In the present study, we investigated devel-opmental ability and transgene expression of IVM/IVF derived porcine embryos following microinjection with SV40-LacZ. A total of 412 IVM/IVF derived embryos were used to examine developmental ability and transgene expression following DNA microinjection. After centrifugation, pronuclei were visible in 60.3% when examined between 18~21h after IVF. Development and transgene expression were assessed after 9 days in culture. The percentages of injected embryos reaching to the morula and blastocyst were significantly lower (P<0.05) than those of non-injected control embryos. However, the percentages of DNA microinjected embryos and non-injected embryos that developed to the blastocyst or hatched blastocyst stage in dual culture systems (NCSU23 and EMEM) were significantly higher (P<0.05) than those in NCSU23 medium alone. As the resuIt of X-gal staining, the proportion of positive embryos was 40~43% in morula and blastocyst stage embryos, however, mosaicism has been observed in the most putative transgenic morulae and blastocysts. In the PCR analysis, the percentages of embryos integrated gGH gene were 45.0 and 44.4% in morula and blastocyst stage, respectively. These results suggest that improved IVM /IVF system and culture condition increased the embryo viability and ex-pression of a microinjected transgene.
The effect of red ginseng saponins (total saponins, Rbl- and Rgl- fraction of saponins) on the induction of $\beta$-galactosidase in yeast, hccharomyces cereuisiae, was investigated to see that ginseng saponins would penetrate the cell membrane and have a function in a nucleus as steroid hormones do. To attain such a kind of purpose, a DNA fragment (685bp) containing GALI promoter was inserted into the sites of EcoRl and BamHl of polylinker region, upstream of lace gene of the plasmid YEp356 (7.966 Kb), and thus the resulting plasmid pGALl-lacZ is supposed to express $\beta$- galactosidase only in the presence of galactose. The plasmid pGALl -lacZ was introduced into yeast, Ky106 (a leu2 ura3 his3 trp 1 Iys2), and the growth of the transformed cells was much slower in the presence of galactose than glucose. The effects of saponins on the specific activity of P-galactosidase from transformed yeast cells were detected. No significant increase was observed in case of total saponins, but the Rbl- or Rgl- fraction of saponins gave much higher increase in the activity. Maximum increase was observed as 35% in 10-3% of Rbl and as 75% in 10-1% of Rgl. These data suggest that ginseng saponins might be able to enter the nucleus and stimulate transcription. However, further studies to find out the putative saponin receptor are needed to confirm this possibility. Key words : Red ginseng saponin, $\beta$-galactosidase induction, Saccharomyces cerevisiae.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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