Saccharin is a commonly used artificial sweetener in foodstuffs. However, for its carcinogenic dispute, it has been regulated by government bodies. In this study, isotope dilution mass spectrometry (ID-MS) was introduced for the accurate quantification of saccharin. To employ ID-LC/MS, we obtained its isotope analogue, $^{13}C_1$-sodium saccharin, by customized synthesis. Samples were spiked with $^{13}C_1$-sodium saccharin and analyzed with LC/MS in negative mode. Chromatographic conditions were optimized for the adequate chromatographic retention and separation of saccharin with a $C_{18}$ column. MS was operated with electrospray ionization by the selected ion monitoring (SIM) mode of $[M-H]^-$ for saccharin (m/z 182) and $[M-Na]^-$ for its isotope analogue (m/z 183). To validate the ID-LC/MS method for accurate measurement, we prepared a batch of a candidate material by sortifying quasi-tea-drinks with saccharin and analyzed samples gravimetrically fortified in various levels of concentration. The repeatability and reproducibility of this method was tested by analyzing the reference material. Result show that ID-LC/MS is a reliable method for the quantitative analysis of saccharin.
Inductively coupled plasma mass spectrometry combined with the isotope dilution method is used for the determination of lithium. The isotope dilution method is based on the addition of a known amount of enriched isotope (spike) to a sample. The analyte concentration is obtained by measuring the altered isotope ratio. The spike solution is calibrated through so called reverse isotope dilution with a primary standard. The spike calibration is an important step to minimize error in the determined concentration. It has been found essential to add spike to a sample and the primary standard so that the two isotope ratios should be as dose as possible. Since lithium is neither corrosive nor toxic, lithium is used as a chemical tracer in the nuclear power plants to measure feedwater flow rate. 99.9% $^7Li$ was injected into a feedwater line of an experimental system and sample were taken downstream to be spiked with 95% $^6Li$ for the isotope dilution measurements. Effects of uncertainties in the spike enrichment and isotope ratio measurement error at various spike-to-sample ratios are presented together with the flow rate measurement results in comparison with a vortex flow meter.
Glycated hemoglobin (HbA1c) is used as an index of mean glycemia over prolonged periods. This study describes an optimization of enzyme digestion conditions for quantification of non-glycated hemoglobin (HbA0) and HbA1c as diagnostic markers of diabetes mellitus. Both HbA0 and HbA1c were quantitatively determined followed by enzyme digestion using isotope dilution liquid chromatography-tandem mass spectrometry (ID-LC-MS/MS) with synthesized N-terminal hexapeptides as standards and synthesized isotope labeled hexapeptides as internal standards. Prior to quantification, each peptide was additionally quantified by amino acid composition analysis using ID-LC-MS/MS via acid hydrolysis. Each parameter was considered strictly as a means to improve digestion efficiency and repeatability. Digestion of hemoglobin was optimized when using 100 mM ammonium acetate (pH 4.2) and a Glu-C-to-HbA1c ratio of 1:50 at $37^{\circ}C$ for 20 h. Quantification was satisfactorily reproducible with a 2.6% relative standard deviation. These conditions were recommended for a primary reference method of HbA1c quantification and for the certification of HbA1c reference material.
Ibuprofen is one of the most popular analgesic and antipyretic drugs. An isotope dilution mass spectrometry method based on LC/MS was developed as a candidate reference method for the accurate determination of ibuprofen in pharmaceutical tablets. Isotope labelled ibuprofen, $ibuprofen-d_3$, was added as an internal standard into sample extracts. Ibuprofen and $ibuprofen-d_3$, was analysed by LC/MS in a selected ion monitoring (SIM) mode to detect ions at m/z 205 and 208, respectively. The repeatability and reproducibility of the developed ID-LC/MS method were tested for the validation and assessment of metrological quality of the method.
A determination method for $^{237}Np$ in spent nuclear fuel samples was developed using an isotope dilution method with $^{239}Np$ as a spike. In this method, inductively coupled plasma mass spectrometry (ICP-MS) was taken for the $^{237}Np$ instead of the previously used alpha spectrometry. $^{237}Np$ and $^{239}Np$ were measured by ICP-MS and gamma spectrometry, respectively. The recovery yield of $^{237}Np$ in synthetic samples was $95.9{\pm}9.7$% (1S, n=4). The $^{237}Np$ contents in the spent fuel samples were 0.15, 0.25, and $1.06{\mu}g/mgU$ and these values were compared with those from ORIGEN-2 code. A fairly good agreement between the measurements (m) and calculations (c) was obtained, giving ratios (m/c) of 0.93, 1.12 and 1.25 for the three PWR spent fuel samples with burnups of 16.7, 19.0, and 55.9 GWd/MtU, respectively.
사용후핵연료 내 U 및 동위원소 정량분석을 동위원소 희석 질량분석법 (isotope dilution mass spectrometry, IDMS)으로 수행하였다. 시료는 산화우라늄 사용후핵연료 시료를 $HNO_3$(1+1) 또는 이 용액과 14 M $HNO_3-0.05M$ HF 혼합용액으로 용해한 후 막 거르게 ($1.2{\mu}m$)로 여과하여 준비하였다. 시료 및 스파이크를 첨가한 시료 중의 U은 AG lX8 음이온교환 수지관에서 0.1 M HCl 용액으로 용리하였다. 시료 중의 총 U 량과 성분 동위원소 ($^{234}U$, $^{235}U$, $^{236}U$ 및 $^{238}U$)의 조성은 $^{233}U$을 스파이크로 이용하는 동위원소 희석 질량분석법으로 정량하였다. 제조한 U-233 스파이크 용액은 천연 및 감손 U을 이용한 역동위원소 희석 질량분석법 (reverse isotope dilution mass spectrometry, R-IDMS)으로 표정하였다. 동위원소 희석 질량분석법에 의한 핵연료시료 중의 총 U 량 측정결과를 전위차 적정으로 측정한 결과와 비교하였을 때 0.34% 평균 상대오차 범위에서 일치하였다.
Uniformly-doped silicon thin films were fabricated by ion beam sputter deposition. The thin films had four levels of copper dopant concentration ranging between 1 ${\times}$1019 and 1 ${\times}$ 1021 atoms/cm3 . Concentrations of Copper dopants were determined by the isotope dilution inductively coupled plasma mass spectrometry (ICP-MS) to provide certified reference data for the quantitative surface analysis by secondary ion mass spectrometry (SIMS). The copper-doped thin films were dissolved in a mixture of 1 M HF and 3 M HNO3 spiked with appropriate amounts of 65 Cu. For an accurate isotope ratio determination, both the detector dead time and the mass discrimination were appropriately corrected and isobaric interference from SiAr molecular ions was avoided by a careful sample pretreatment. An analyte recovery efficiency was obtained for the Cu spiked samples to evaluate accuracy of the method. Uncertainty of the determined copper concentrations, estimated following the EURACHEM Guide, was less than 4%, and detection limit of this method was 5.58 ${\times}$ 1016 atoms/cm3.
Cross reacting antibodies can cause an overestimation of the results of immunoassays. Therefore, alternative methods are needed for the accurate quantification of steroids. Gas chromatography combined with isotope-dilution mass spectrometry (GC-IDMS) is developed to quantify urinary active androgens, testosterone, epitestosterone and dihydrotestosterone, which are clinically relevant androgens to both hair-loss and prostate diseases. The method devised involves enzymatic hydrolysis with $\beta$-glucuronidase, solid-phase extraction, liquid-liquid extraction using methyl tert-butyl ether and subsequent conversion to pentafluorophenyldimethylsilyl-trimethylsilyl (flophemesyl-TMS) derivatives for sensitive and selective analysis in selected-ion monitoring mode. Flophemesyl-TMS derivatization not only eliminates matrix interference but also has a good peak resolution within a 6 min-run. A selective and sensitive GC technique with flophemesyl-TMS derivatives also allows accurate quantitative analysis of three active androgens when combined with IDMS. The limit of quantification of the three analytes was <50 pg/mL, and extraction recoveries ranged from 91.9 to 102.1%. The precision and accuracy were 1.2~6.5% and 89.0~106.7%, respectively. This GC-IDMS method can be useful for evaluating the drug efficacy and monitoring the biological processes responsible for male-pattern baldness and prostate diseases.
Malachite green (MG) has been used world-widely in aquaculture as a parasiticide or fungicide. Although MG performed successfully, it has not been permitted for use in aquaculture from European Union, USA, and Canada because of its carcinogenicity and mutagenicity. We developed a sensitive and specific method to determine MG and its principal metabolite, leucomalachite green (LMG), respectively by isotope dilution liquid chromatography mass spectrometry (ID-LC/MS). To enhance the extraction recovery of MG and LMG from fish tissue, an additional step, saponification, was introduced in sample preparation process to remove fat in sample extract, which hampered the performance of SPE columns. The residue of MG and LMG in fish was analyzed using liquid chromatography mass spectrometry in the selected ion monitoring (SIM) mode by monitoring at m/z 329 and 334 for MG and $d_5$-MG and at m/z 331 and 337 for LMG and $^{13}C_6$-LMG, respectively. This method was validated by comparing with the value of the reference material provided by Laboratory Government Chemistry (LGC). The results agreed within the measurement uncertainty and the accuracy was much improved than the provided reference value by LGC.
Thermal ionization mass spectrometry (TIMS) was used to determine the concentration and isotope ratio of uranium contained in samples of soil and groundwater collected from Korea. Quantification of uranium in ground water samples was performed by isotope dilution mass spectrometry. A series of chemical treatment processes, including chemical separation using extraction chromatography, was applied to the soil samples to extract the uranium. No treatments other than filtration were applied to the groundwater samples. Isotopic analyses by TIMS showed that the isotope ratios of uranium in both the soil and water samples were indistinguishable from those of naturally abundant uranium. The concentration of uranium in the groundwater samples was within the U.S. acceptable standards for drinking water. These results demonstrate the utility of TIMS for monitoring uranium in environmental samples with high analytical reliability.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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