The nucleotide-oligomerization domain (NOD) proteins are members of the NOD-like receptor (NLR) family, which are intracellular and cytoplasmic receptors. We analyzed the role of NODs for cytokine production by macrophages infected with intracellular pathogen M. leprae, the causative agent of leprosy. Production of pro-inflammatory cytokines such as IL-$1{\beta}$ and TNF-${\alpha}$ was inhibited in the presence of cytochalasin D, an agent blocking phagocytosis, suggesting that intracellular signaling was, partially, required for macrophage activation to M. leprae infection. Next, we investigated the role of NOD1 and NOD2 proteins on NF-${\kappa}B$ activation and cytokine expression. Treatment with M. leprae significantly increased NF-${\kappa}B$ activation and expression of TNF-${\alpha}$ and IL-$1{\beta}$ in NOD1- and NOD2-transfected cells. Interestingly, their activation and expression were inhibited by cytochalasin D, suggesting that stimulation of NOD proteins may be associated with the enhancement of cytokine production in host to M. leprae.
Toxoplasma gondii is an obligate intracellular protozoan parasite, which invades a wide range of hosts including humans. The exact mechanisms involved in its invasion are not fully understood. This study focused on the roles of $Ca^{2+}$ in host cell invasion and in T. gondii replication. We examined the invasion and replication of T. gondii pretreated with several calcium modulators, the conoid extrusion of tachyzoites. Calmodulin localization in T. gondii were observed using the immunogold method, and $Ca^{2+}$ levels in tachyzoites by confocal microscopy. In light microscopic observation, tachyzoites co-treated with A23187 and EGTA showed that host cell invasion and intracellular replication were decreased. The invasion of tachyzoites was slightly inhibited by the $Ca^{2+}$ channel blockers, bepridil and verapamil, and by the calmodulin antagonist, calmidazolium. We observed that calcium saline containing A23187 induced the extrusion of tachyzoite conoid. By immunoelectron microscopy, gold particles bound to anti-calmodulin or anti-actin mAb, were found to be localized on the anterior portion of tachyzoites. Remarkably reduced intracellular $Ca^{2+}$ was observed in tachyzoites treated with BAPTA/AM by confocal microscopy. These results suggest that host cell invasion and the intracellular replication of T. gondii tachyzoites are inhibited by the calcium ionophore, A23187, and by the extracellular calcium chelator, EGTA.
The extracellular and intracellular inulases from Kluyveromyces marxianus were purified and characterized. The maximum production of both inulases was achieved at stationary phase in a pH-controlled medium at pH 5 with yeast nitrogen base as organic nitrogen source. Each enzyme was concentrated by tannic acid precipitation and separated into two fractions by DEAF-cellulose chromatography. Electrophoretic analysis showed that the four fractions had three glycoprotein bards each. Only main glycoprotein band, however, had both inulase and invertase activities. There were no significant differences between two enzymes in the optimum pH and temperature. But the intracellular inulases had higher heat stability and less affinity toward inulin than the extracellular enzymes do. All the purified enzymes were considered to be exo-inulases using hydrolyzate analysis with TLC.
Platelet-activating factor(PAF) enhanced interleukin-1(IL-1) activity by the interaction with a specific receptor in rat alveolar macrophages. In this study, we investigated the role of endogenous arachidonate metabolites and intracellular calcium mobilization in the PAF-induced IL-1 activity. Alveolar macrophages were preincubated with 5-lipoxygenase and cyclooxygenase inhibitors 30 min before the addition of PAF and lipopolysaccharide(LPS). After 24h culture, IL-1 activity was measured in the supernate of sample using the thymocyte proliferation assay. Inhibition of 5-lipoxygenase by nordihydroguaiaretic acid and AA-861 completely blocked the PAF-induced enhancement of IL-1 activity with $IC_{50}\;of\;2\;{\mu}M\;and\;5\;{\mu}M$, respectively. In contrast, the inhibition of cyclooxygenase pathway by indomethacin and ibuprofen resulted in the potentiation in PAF-induced IL-1 activity with maximal effect at $1\;{\mu}M\;and\;5\;{\mu}M$, respectively. In addition, leukotriene $B_4$ and prostaglandin $E_2$ production were observed in PAF-stimulated alveolar macrophage culture. As could be expected, 5-lipoxygenase and cyclooxygenase inhibitors abolished PAF- stimulated leukotriene $B_4$ and prostaglandin $E_2$ production, respectively. The effects of PAF on intracellular calcium mobilization in alveolar macrophages were evaluated using the calcium-sensitive dye fura-2 at the single cell level. PAF at any dose between $10^{-16}\;and\;10^{-8}$ M did not increase intracellular calcium. Furthermore, there was no effective change of intracellular calcium level when PAF was added to alveolar macrophages in the presence of LPS or LPS+LTB4, and 4, 24 and 48h after treatment of these stimulants. Together, the results indicate that IL-1 activity induced by PAF is differently regulated through subsequent induction of endogenous 5-lipoxygenase and cyclooxygenase pathways, but not dependent on calcium signalling pathway.
The effect of diazoxide, a $K^{+}$channel opener, on apoptotic cell death was investigated in HepG2 human hepatoblastoma cells. Diazoxide induced apoptosis in a dose-dependent manner and this was evaluated by flow cytometric assays of annexin-V binding and hypodiploid nuclei stained with propidium iodide. Diazoxide did not alter intracellular $K^{+}$concentration, and various inhibitors of $K^{+}$channels had no influence on the diazoxide-induced apoptosis; this implies that $K^{+}$channels activated by diazoxide may be absent in the HepG2 cells. However, diazoxide induced a rapid and sustained increase in intracellular $Ca^{2+}$ concentration, and this was completely inhibited by the extracellular $Ca^{2+}$ chelation with EGTA, but not by blockers of intracellular $Ca^{2+}$ release (dantrolene and TMB-8). This result indicated that the diazoxide-induced increase of intracellular $Ca^{2+}$ might be due to the activation of a Ca2+ influx pathway. Diazoxide-induced $Ca^{2+}$ influx was not significantly inhibited by either voltage-operative $Ca^{2+}$ channel blockers (nifedipinen or verapamil), or by inhibitors of $Na^{+}$, $Ca^{2+}$-exchanger (bepridil and benzamil), but it was inhibited by flufenamic acid (FA), a $Ca^{2+}$-permeable nonselective cation channel blocker. A quantitative analysis of apoptosis by flow cytometry revealed that a treatment with either FA or BAPTA, an intracellular $Ca^{2+}$ chelator, significantly inhibited the diazoxide-induced apoptosis. Taken together, these results suggest that the observed diazoxide-induced apoptosis in the HepG2 cells may result from a $Ca^{2+}$ influx through the activation of $Ca^{2+}$-permeable non-selective cation channels. These results are very significant, and they lead us to further suggest that diazoxide may be valuable for the therapeutic intervention of human hepatomas.
Muhammad, Siti Nur Hasyila;Mokhtar, Noor Fatmawati;Yaacob, Nik Soriani
Asian Pacific Journal of Cancer Prevention
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v.17
no.7
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pp.3223-3228
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2016
Reports indicate that 15-deoxy-delta-12,14-prostaglandin-J2 (15d-PGJ2) has anticancer activities, but its mechanisms of action have yet to be fully elucidated. We therefore investigated the effects of 15d-PGJ2 on the human breast cancer cell lines, MCF-7 (estrogen receptor $ER{\alpha}+/ER{\beta}+$) and MDA-MB-231 ($ER{\alpha}-/ER{\beta}+$). Cellular proliferation and cytotoxicity were determined using the 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT) and lactate dehydrogenase (LDH) assays while apoptosis was determined by fluorescence microscopy and flow cytometry using annexin V-propidium iodide (PI) staining. ER expression was determined by Western blotting. Intracellular calcium was stained with Fluo-4 AM while intracellular caspase activities were detected with Caspase-$FLICA(R)$ and measured by flow cytometry. We showed that 15d-PGJ2 caused a significant increase in apoptosis in MCF-7 and MDA-MB-231 cells. $ER{\alpha}$ protein expression was reduced in treated MCF-7 cells but pre-incubation with the $ER{\alpha}$ inhibitor' ICI 182 780' did not affect the percentage of apoptotic cells. The expression of $ER{\beta}$ was unchanged in both cell lines. In addition, 15d-PGJ2 increased intracellular calcium ($Ca^{2+}$) staining and caspase 8, 9 and 3/7 activities. We therefore conclude that 15d-PGJ2 induces caspase-dependent apoptosis that is associated with an influx of intracellular $Ca^{2+}$ with no involvement of ER signaling.
Shim, Soojin;Im, Young Bin;Jung, Myunghwan;Park, Woo Bin;Yoo, Han Sang
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.28
no.10
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pp.1736-1748
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2018
Brucella abortus can survive and replicate within host macrophages, and great efforts have been made to demonstrate the genes involved in pathogenicity, such as internalization, in Brucella research. Here, intracellular responses were compared between THP-1 macrophage cells stimulated with B. abortus wild-type and four mutants (C1, C10, C27, and C32) using microarray to demonstrate the role of genes related to intracellular survival and replication. These mutants were generated by deleting genes encoding BAB_RS13225 (4-hydrobenzoate 3-monooxygenase, PHBH), BAB_RS00455 (heme exporter protein cytochrome C, CcmC), BAB_RS03675 (exopolyphosphatase, PPX), and BAB_RS13225 (peptidase M24). The results showed that mutants C1 and C10 induced significant suppression of survival levels and cytokine expression relative to wild-type in the THP-1 macrophage cells. These findings suggest that the BAB_RS13225 and BAB_RS00455 genes play important roles in survival within human macrophages. Conversely, mutants C27 and C32 induced significantly higher survival level than wild-type in the cells inhibiting cellular signal transduction. It is assumed that the BAB_RS03675 and BAB_RS13225 genes play a role in cellular resistance to B. abortus. Therefore, the disrupted genes are involved in B. abortus intracellular growth, and especially in its survival, and they could be effective targets for understanding the intracellular bacterium, B. abortus.
Although lovastatin, a competitive inhibitor of 3-hydroxy-3-methylglutaryl-coenzyme A (HMGCoA) reductase, has been shown to have anti-cancer actions, the effect on human hepatoma cells was not investigated. Moreover, the exact mechanism of this action is not fully understood. In this study we investigated the mechanism by which lovastatin induces apoptosis using HepG2 human hepatoblastoma cells. Lovastatin induced apoptotic cell death in a dose-dependent manner in the cells, assessed by the flow cytometric analysis. Treatment with mevalonic acid, a precursor of cholesterol, did not significantly suppress the lovastatin-induced apoptosis. Lovastatin induced a rapid and sustained increase in intracellular $Ca^{2+}$ concentration. Treatment with EGTA, an extracellular $Ca^{2+}$ chelator did not significantly alter the lovastatin-induced intracellular $Ca^{2+}$ increase and apoptosis, whereas intracellular $Ca^{2+}$ reduction with BAPTA/AM and intracellular $Ca^{2+}$ release blockers (dantrolene and TMB-8) completely blocked these actions of lovastatin. In addition, the lovastatin-induced apoptosis was significantly reduced by a calpain inhibitor, a broad spectrum caspase inhibitor z-VAD-fmk and inhibitors specific for caspase-9 and caspase-3 (z-LEHD-fmk and z-DEVD-fmk, respectively), but not by an inhibitor specific for caspase-8 (z-IETD-fmk). Collectively, these results suggest that lovastatin induced apoptosis of HepG2 hepatoma cells through intracellular $Ca^{2+}$ release and calpain activation, leading to triggering mitochondrial apoptotic pathway. These results further suggest that lovastatin may be valuable for the therapeutic management of human hepatoma.
Dynamin-related protein 2A (AtDRP2A, formally ADL6), a member of the dynamin family, is critical for protein trafficking from the TGN to the central vacuole. However, the mechanism controlling its activity is not well understood in plant cells. We isolated Arabidopsis sec13 homolog1 (AtSeh1) that interacts with AtDRP2A by a yeast two-hybrid screening. AtSeh1 has four WD40 motifs and amino acid sequence homology to Sec13, a component of COPII vesicles. Coimmunoprecipitation and protein pull-down experiments demonstrated specific interaction between AtSeh1 and AtDRP2A. AtSeh1 bound to the pleckstrin homology domain of AtDRP2A in competition with the C-terminal domain of the latter, and this resulted in inhibition of the interaction between AtDRP2A and PtdIns3P in vitro. AtSeh1 localized to multiple locations: the nucleus, the prevacuolar compartment and the Golgi complex. Based on these results we propose that AtSeh1 plays a role in regulating cycling of AtDRP2A between membrane-bound and soluble forms.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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